<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">problendo</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Проблемы Эндокринологии</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Problems of Endocrinology</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">0375-9660</issn><issn pub-type="epub">2308-1430</issn><publisher><publisher-name>Endocrinology Research Centre</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.14341/probl11632</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">problendo-11632</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>Экспериментальная эндокринология</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>Experimental endocrinology</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Влияние метилирования ДНК на изменение структуры хроматина при тиреоидной патологии</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Effects of DNA methylation on the altered structure of chromatin in thyroid disease</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Кадырова</surname><given-names>Д. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Kadyrova</surname><given-names>D. A.</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">probl@endojournals.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Артыкбаева</surname><given-names>Г. М.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Artykbayeva</surname><given-names>G. M.</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">probl@endojournals.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Туракулов</surname><given-names>Я. X.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Turakulov</surname><given-names>Ya. Kh</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">probl@endojournals.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>&lt;p&gt;Институт биохимии АН Республики Узбекистан&lt;/p&gt;</institution><country>Узбекистан</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>&lt;p&gt;Institute of Biochemistry, Academy of Sciences of the Republic of Uzbekistan&lt;/p&gt;</institution><country>Uzbekistan</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2003</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>15</day><month>06</month><year>2003</year></pub-date><volume>49</volume><issue>3</issue><issue-title>ТОМ 49, №3 (2003)</issue-title><fpage>46</fpage><lpage>47</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Кадырова Д.А., Артыкбаева Г.М., Туракулов Я.X., 2003</copyright-statement><copyright-year>2003</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Кадырова Д.А., Артыкбаева Г.М., Туракулов Я.X.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Kadyrova D.A., Artykbayeva G.M., Turakulov Y.K.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.probl-endojournals.ru/jour/article/view/11632">https://www.probl-endojournals.ru/jour/article/view/11632</self-uri><abstract><p>При различных формах тиреоидной патологии наблюдается нарушение регуляции экспрессии гена тиреоглобулина (ТГ). Это нарушение лучше всего объясняется транскрипционными событиями, которые зависят не только от первичной последовательности нуклеотидов в структуре ДНК, но и от структурно-функциональных изменений в хроматине клеток щитовидной железы. Механизмом, регулирующим транскрипцию гена ТГ, является метилирование ДНК. Метилирование ДНК существенно влияет как на структуру самой ДНК, на ДНКазачувствительные участки, так и на взаимодействие ДНК с различными белками, включая РНК-полимеразу.</p><p>ДНКаза I-гиперчувствительность метилированного хроматина в ядрах клеток щитовидной железы при диффузном токсическом зобе по выходу гидролизованной ДНК из ядер составила 10%, в то время как ДНКаза 1-гиперчувствительность неметилированного хроматина в изолированных ядрах - 50%. При узловом эутиреоидном зобе ДНКаза /-гиперчувствительность метилированного хроматина составляла 7%, а неметилированного - 10%. Гиперчувствительность неметилированного хроматина в изолированных ядрах при врожденном зобе равна нулю.</p><p>Изучение РНК-полимеразной активности ядер из клеток щитовидной железы под влиянием метилирования показало значительное уменьшение синтеза РНК независимо от вида патологии.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Impaired regulation of thyroglobin (TG) gene expression is observed in various forms of thyroid pathology. The impairment in question can be explained by the transcription events that depend not only on the primary sequence of nucleotides in the DNA structure, but also on structural and functional alterations in the chromatin of thyroid cells. DNA methylation is the mechanism regulating TGgene transcription. It has a significant effect on the structure of DNA itself and on DNAase-sensitive sites, as well as on the interaction of DNA with various proteins including RNA polymerase.</p><p>In the context the yield of hydrolyzed DNA from the nuclei, DNAase I-hypersensitivity of methylated chromatin in the nuclei of thyroid cells was 10% while that of поп-methylated chromatin n isolated nuclei was 50%. In nodal euthyroid goiter, DNAase I-hypersensitivity of methylated chromatin was 7%&gt; and that of nonmethylated one was 10%. In congenital goiter, the hypersensivity of поп-methylated chromatin in the isolated nuclei was 0.</p><p>An investigation of the RNA-polymerase activity of thyroid cellular nuclei under the influence of methylation indicated a substantial decrease in RNA synthesis irrespective of the type of an abnormality.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>метилирования</kwd><kwd>структура хроматина</kwd><kwd>тиреоидная патология</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>methylation</kwd><kwd>structure of chromatin</kwd><kwd>thyroid disease</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><p>Выявление факторов, определяющих потенциально активное состояние генов и обеспечивающих активацию их транскрипции, чрезвычайно важно для понимания механизмов регуляции генов. В связи с этим необходимо выявление особенностей структуры функционально различных участков хроматина. В большинстве случаев нарушение регуляции экспрессии гена тиреоглобулина (ТГ) лучше всего объясняется транскрипционными событиями, которые зависят не только от первичной последовательности нуклеотидов в структуре ДНК, но и от структурно-функциональных изменений в хроматине клеток щитовидной железы. Механизмом, регулирующим транскрипцию гена ТГ, является метилирование ДНК. Метилирование ДНК существенно влияет как на структуру самой ДНК, на ДНКаза-чув- ствительные участки, так и на взаимодействие ДНК с различными белками, включая РНК-полимеразу.</p><p>Изменения структуры хроматина, выявляемые ДНКазой I, по-видимому, формируются вслед за изменением картины метилирования, т. е. опосредованное метилирование, связанное с изменением структуры хроматина 5'-области гена ТГ, возможно, делает его компетентным к транскрипции.</p><p>В данной статье было проведено изучение влияния метилирования на ДНКаза 1-гиперчувствительность и РНК-полиме- разную активность хроматина ядер клеток щитовидной железы при патологии.</p><p>Материалы и методы</p><p>Использовали щитовидные железы людей, удаленные во время операции в лаборатории тиреоидной патологии Института эндокринологии Минздрава Республики Узбекистан.</p><p>Ядра из клеток щитовидной железы выделяли осаждением их в 0,25 М сахарозе, содержащей 5 мМ MgCl2, 1 мМ дитиотрей- тола (ДТТ), 10 мМ трис-НС1 pH 7,5 (буфер А), и дальнейшей очисткой их путем наслоения на раствор 2 М сахарозы в буфере А (24 000 об/мин, 1 ч, ротор "SW-27 Beeman"). Во все буферные растворы добавляли фенилметилсульфонилфторид (ФМСФ) до концентрации 1 мМ. Ядра после плотной сахарозы отмывали буфером А.</p><p>Реакция гомологичного метилирования с использованием ДНК- метилаз содержала следующие компоненты: 25 мкг ядерной ДНК щитовидной железы, 100-200 мкг ДНК-метилазы, 7,5 мк/Ки 5 метил-’Н-аденозинметионина, 150-250 мкл инкубационного буфера, содержащего 10 мМ трис-НС1 pH 7,5, 5 мМ ЭДТА, 1 мМ ДТТ, 0,2 мМ ФМСФ, 10% глицерина. Объем инкубационной пробы составлял 0,3 мл. Смесь инкубировали 6 ч при 37‘С. По окончании реакции метилирования ДНК осаждали 5% ТХУК, осадок переносили на мембранный фильтр, промывали 5% ТХУК и этанолом, затем измеряли радиоактивность на счетчике "Магк-ПГ.</p><p>Для определения ДНКаза 1-чувствительности проводили обработку ядер ДНКазой I (2000 Ед/мг, "Serva”) в следующих условиях: ядра (1 мг ДНК) суспендировали в среде, содержащей 0,25 мМ сахарозы, 3 мМ MgCl2, 0,3 мМ СаС12, 10 мМ NaCl, 1 мМ ДТТ, 1 мМ ФМСФ, 10 мМ трис-НС1 pH 8,6, инкубировали при 4”С в течение 5 мин с различными концентрациями ДНКазы I (от 0,1 до 100 Ед/мл) или с фиксированной концентрацией фермента (20 Ед/мл) при 37*С в течение 15 мин. Гидролиз ДНК останавливали переводом проб в ледяную кислоту с добавлением ЭДТА до конечной концентрации 10 мМ. Смесь центрифугировали и в супернатанте определяли количество гидролизованной ДНК, а также величину ’Н-радиоактивности, просчитывая ее на счетчике "Mark". Концентрацию ДНК в ядрах определяли по Бартону 11 ], а также спектрофотометрически, принимая, что</p><p>ДНКаза-гиперчувствительность метилированного хроматина ядер клеток щитовидной железы.</p><p>/ - диффузный токсический зоб; 2 - узловой эутиреоидный зоб; 3 - врожденный зоб.</p><p>По оси ординат - гибридизуемость (в %); по оси абсцисс - время инкубации с ДНКазой I (в мин).</p><p>20 Ед Д2М в 0,1 % растворе додецилсульфата натрия соответствует 1 мг ДНК в 1 мл.</p><p>Общую РНК-полимеразную активность метилированных ядер определяли в среде, содержащей в объеме 0,25 мл следующие компоненты: 60 мМ трис-НС1 pH 7,5, 1 мМ MgCI2, 5 мМ МпС12, 1 мМ ДТТ, 200 мМ (NH)2SO4, АТФ, ГТФ, УТФ по 0,4 мМ, 0,01 мМ 3Н-ЦТФ (13,4 мкКи/моль) и суспензию клеточных ядер (100-150 мкгДНК). Время инкубирования при ЗО'С составляло 30 мин. Реакцию останавливали охлажденной 10% ТХУК. Осадки собирали на миллипоровые фильтры, промывали их небольшими порциями 5% ТХУК, 5% пирофосфата натрия, этанола и подсчитывали ’Н-радиоактивность.</p><p>Результаты и их обсуждение</p><p>Изучение особенностей метилирования гена ТГ показало, что модификации подвергается 5'-концевой цитозин и более длинные последовательности состава 5'-CCGG-3', и деметилирование этого участка коррелирует с экспрессией гена ТГ, т. е. между метилированием ДНК и экспрессией гена ТГ существует обратная корреляция. Появление в хроматине участков, гиперчувствительных к ДНКазе I, связано с транскрипционной активностью. В связи с этим было интересно изучить влияние метилирования ДНК на ДНКаза I-гиперчувствительность хроматина ядер клеток щитовидной железы при тиреоидной патологии.</p><p>ДНКаза 1-гиперчувствительность метилированного хроматина в ядрах клеток щитовидной железы при диффузном токсическом зобе по выходу гидролизованной ДНК из ядер составила 10%, в то время как ДНКаза I-гиперчувствительность неметилированного хроматина в изолированных ядрах - 50%. При узловом эутиреоидном зобе ДНКаза 1-гиперчувствительность метилированного хроматина составляла 7%, а неметилированного - 10%. Гиперчувствительность неметилированного хроматина в изолированных ядрах при врожденном зобе равна нулю (см. рисунок).</p><p>РНК-полимераза выполняет исключительно важную функцию: запускает процесс реализации генетической информации с соответствующих ДНК и осуществляет регуляцию активности генов на уровне транскрипции. Было изучено влияние метилирования ДНК на РНК-полимеразную активность ядер клеток щитовидной железы.</p><p>Общая РНК-полимеразная активность ядер из клеток щитовидной железы под влиянием метилирования была изучена</p><p>РНК-полимеразная активность изолированных ядер клеток щитовидной железы (М ± т)</p><table-wrap id="table-1"><table><tbody><tr><td>Патология</td><td>Нормальные ядра</td><td>Метилированные ядра</td><td>Нормальные ядра</td><td>Метилированные ядра</td></tr><tr><td></td><td>3Н-УМФ, имп/мин</td><td>%</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Диффузный ток</p><p>сический зоб   1800 ± 24 700 ± 12 100 ± 12                   40</p><p>Узловой эутирео</p><p>идный зоб     1000 ± 48 200 ± 26            82 ± 16          10,5 при узловом эутиреоидном и диффузном токсическом зобе. Результаты этих исследований представлены в таблице.</p><p>Из представленных данных видно, что под влиянием метилирования происходит значительное уменьшение биосинтеза РНК независимо от вида патологии. Нами показано уменьшение активности РНК-полимеразы ядер клеток щитовидной железы под влиянием метилирования.</p><p>Таким образом, показано наличие обратной корреляции между уровнем метилирования ДНК и генной активностью, т. е. повышение уровня метилирования ДНК сопровождается потерей сверхчувствительности к ДНКаза 1-участкам, уменьшением активности РНК-полимеразы и блоком транскрипции.</p><p>В хроматине ядер клеток щитовидной железы было обнаружено 2 района, гиперчувствительных к ДНКазе I, в 7 т. п. н. в сегменте 5'-фланкирующих последовательностей гена ТГ. ДНКаза-чувствительность может возникать вследствие взаимодействия с ДНК-связывающими факторами [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Однако другие механизмы также могут принимать участие в формировании этого измененного свойства хроматина. Среди них первое место занимают суперспирализация [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>] и метилирование |5]. При изучении взаимосвязи между экспрессией гена ТГ и его метилированием показано, что чувствительные к метилированию сайты, расположенные в 5'-фланкирующей области гена, гиперметилируются при раке щитовидной железы, в то время как при диффузном токсическом зобе наблюдается недометилирование этих сайтов [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>].</p><p>Деметилирование гена ТГ является сигналом, детерминирующим возможность его экспрессии. В целом это относится в основном к состоянию 5'-области гена. Последовательности ДНК, соответствующие ДНКаза 1-гиперчувствительным сайтам, демонстрируют свойства транскрипционного гена-усилителя. При гиперметилировании эти участки теряют свойства гена-усилителя. Метилирование и деметилирование обеспечивает стабильное изменение структуры гена и играет важную роль в регуляции генной активности.</p><p>Выводы</p></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Бартон К. Методы исследования нуклеиновых кислот. - М., 1970. - С. 7-9.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Бартон К. Методы исследования нуклеиновых кислот. - М., 1970. - С. 7-9.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Berlingier М. Т., Mosti А. М., Avvedimento V. Е. et al. // Exp. Cell. Res. - 1985. - Vol. 163. - P. 277-283.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Berlingier М. Т., Mosti А. М., Avvedimento V. Е. et al. // Exp. Cell. Res. - 1985. - Vol. 163. - P. 277-283.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hansen S., Christophe D., Vassart G. // Arch. Physiol. Biochem. - 1995. - Vol. 94, N 1. - P. 1322-1329.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hansen S., Christophe D., Vassart G. // Arch. Physiol. Biochem. - 1995. - Vol. 94, N 1. - P. 1322-1329.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Romanes T. // Rev. Biochem. - 1992. - Vol. 51. - P. 93- 121.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Romanes T. // Rev. Biochem. - 1992. - Vol. 51. - P. 93- 121.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Libert P., Vassart G. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1996. - Vol. 134. - P. 1109-1116.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Libert P., Vassart G. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1996. - Vol. 134. - P. 1109-1116.</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
