<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">problendo</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Проблемы Эндокринологии</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Problems of Endocrinology</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">0375-9660</issn><issn pub-type="epub">2308-1430</issn><publisher><publisher-name>Endocrinology Research Centre</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.14341/probl11948</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">problendo-11948</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>Экспериментальная эндокринология</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>Experimental endocrinology</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Влияние хорионического гонадотропина на формирование вторичного иммунного ответа</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>The effect of chorionic gonadotropin on the formation of a secondary immune response</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Ширшев</surname><given-names>С. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Ширшев</surname><given-names>S. V.</given-names></name></name-alternatives><email xlink:type="simple">probl@endojournals.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>&lt;p&gt;Пермский медицинский институт&lt;/p&gt;</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>&lt;p&gt;Perm Medical Institute&lt;/p&gt;</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>1993</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>15</day><month>12</month><year>1993</year></pub-date><volume>39</volume><issue>6</issue><issue-title>ТОМ 39, №6 (1993)</issue-title><fpage>41</fpage><lpage>43</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Ширшев С.В., 1993</copyright-statement><copyright-year>1993</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Ширшев С.В.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Ширшев S.V.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://www.probl-endojournals.ru/jour/article/view/11948">https://www.probl-endojournals.ru/jour/article/view/11948</self-uri><abstract><p>Хорионический гонадотропин (ХГ), синтезируемый плацентой человека, контролирует гормональные механизмы роста и развития фето- плацентраного комплекса с момента имплантации яйцеклетки до самых родов. Полуаллоген- ный плод и плацента распознаются лимфоцитами матери как чужеродный антигенный материал, но в силу ряда причин не отторгаются ими.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Chorionic gonadotropin (CG), synthesized by human placenta, controls the hormonal mechanisms of growth and development of the fetoplacental complex from the moment of implantation of the egg to the birth. A semi-allogenic fetus and placenta are recognized by the mother’s lymphocytes as foreign antigenic material, but for a number of reasons they are not rejected by them.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>иммунитет</kwd><kwd>иммунный ответ</kwd><kwd>хорионический гонадотропин</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>immunity</kwd><kwd>immune response</kwd><kwd>chorionic gonadotropin</kwd></kwd-group></article-meta></front><body><p>Хорионический гонадотропин (ХГ), синтезируемый плацентой человека, контролирует гормональные механизмы роста и развития фето- плацентраного комплекса с момента имплантации яйцеклетки до самых родов [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Полуаллоген- ный плод и плацента распознаются лимфоцитами матери как чужеродный антигенный материал, но в силу ряда причин не отторгаются ими [<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>]. Важную роль в этом играют гормоны беременности, оказывающие мощное иммунодепрессивное действие [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>].</p><p>ХГ — наиболее активный модулятор иммунных реакций. Показано, что гормон дозозависимо угнетает реакции клеточного [7, 11] и гуморального [2, 9] звеньев иммунного ответа. Однако эти сведения, как правило, относятся лишь к влиянию ХГ на первичный ответ иммунокомпетентных клеток. Взаимоотношение иммунной системы матери с фето-плацентарным комплексом включает в себя не только первичный, но и вторичный, т. е. анамнестический, иммунный ответ, который приобретает доминирующее значение при повторных беременностях. Именно реакции вторичного типа приводят к таким грозным заболеваниям, как гемолитическая болезнь новорожденных, невынашивание и прочие иммунопатологические состояния, осложняющие течение беременности [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>].</p><p>Целью настоящей работы было исследование иммуномодулирующих эффектов ХГ и половых стероидов яичников как его возможных посредников на процессы формирования анамнестического иммунного ответа.</p><p>Материалы и методы</p><p>Исследования проводились на мышах-самках линии СВА массой 18—22 г, полученных из питомника лаборатории животных РАМН «Рапполово&gt;. У части животных производилась операция двусторонней овариэктомии под эфирным наркозом. Такие мыши использовались в эксперименте после 1 мес реабилитации.</p><p>Схема индукции вторичного иммунного ответа включала в себя два этапа: 1-й этап — животных интраперитонеально иммунизировали эритроцитами барана (ЭБ) в дозе 2-10® клеток, 2-й этап — через 20 сут мышей вновь подвергали интраперитонеальной иммунизации такой же дозой ЭБ. Уровень вторичного иммунного ответа оценивался на 5-е сутки после реиммунизации методом локального гемолиза в геле агарозы по Ерне |8|. Определение антителообразующих клеток (АОК), продуцирующих IgG, проводили непрямым методом Ерне в модификации [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>]. Для этого использовали предварительно оттитрованную антисыворотку кролика против IgG мыши («Д1агностикум») в разведении 1:200.</p><p>ХГ («Profasi», Serano, Италия) инъецировался подкожно на следующий день после повторной иммунизации и через 1 день, т. е. на 1-е и 3-и сутки формирования анамнестического ответа. Гормон использовали в двух дозах, экстраполированных со средних концентраций ХГ в сыворотке крови беременных женщин в 1 и II—III триместрах, которые составили соответственно 200 и 40 ME [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. Для исключения опосредованности иммуномодулирующих эффектов ХГ через половые стероиды яичников использовали не только овариэктомированных самок, но и непосредственное воздействие гормона in vitro на клетки селезенки. Для этого использовали некастрированных мышей-самок, у которых был индуцирован только первичный иммунный ответ. Таких доноров забивали на 20-е сутки от момента первичной иммунизации и асептично полученные клетки селезенки инкубировали в течение 1 ч в термостате (37 °C) в питательной среде 199 с ХГ (40 или 200 ME на культуру). Использовали вариант макрокультуры — 2-107 ядросодержащих клеток (ЯСК) селезенки в 4 мл среды 199. Контролем служили спленоциты, инкубированные в питательной среде без гормона. После одночасовой инкубации клетки отмывали средой 199 и концентрировали таким образом, чтобы в 0,5 мл среды содержалось 2-10’ ЯСК. Затем эти клетки совместно с ЭБ (2-10®) переносили в хвостовую вену летально облученных (219,3 мКл/кг) сингенных мышей-реципиентов. Адоптивный вторичный иммунный ответ оценивали аналогично описанному выше. Жизнеспособность спленоцитов после культивирования, оцениваемая с помощью трипанового синего, составляла от 92 до 98 %.</p><p>Таким образом в экспериментах, проводимых в условиях культуры клеток, не только исключалась опосредованность иммуномодулирующего действия ХГ, но и оценивался эффект гормона на клетки, которые еще не получили второй антигенный сигнал.</p><p>Полученные данные подвергали статистической обработке с помощью критерия / Стьюдента. Во всех расчетах оперировали logio (lg) числа АОК.</p><p>Результаты и их обсуждение</p><p>Введение ХГ некастрированным мышам-самкам не оказывает статистически значимого влияния на уровень М- и G-АОК. В то же время инъекции высокой дозы (200 ME) ХГ достоверно угнетают количество ЯСК в селезенке (табл. 1). Соотношение М- и G-антителопродуцентов практически не изменяется, оставаясь постоянным — 1/10.</p><p>Овариэктомия практически не влияет на уровень М- и G-АОК, определяющих вторичный иммунный ответ. Клеточность селезенки также не изменяется. Введение ХГ в дозе, соответствующей концентрации гормона во II—III триместре беременности (40 ME), не в состоянии оказать какого-либо действия на процессы формирования анамнестического иммунного ответа (см. табл. 1). Сопоставление результатов, полученных у некастрированных животных, с результатами у овариэктомированных мышей также не выявило статистически достоверной разницы. По-видимо- му, ХГ в данной дозе не опосредует свои иммуномодулирующие эффекты через половые стероиды, как при действии на процессы формирования первичного иммунного ответа [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>].</p><p>Таблица I</p><p>Влияние ХГ на уровень вторичного иммунного ответа у некастрированных и овариэктомированных животных (М±т)</p><table-wrap id="table-1"><table><tbody><tr><td>Группа животных</td><td>Экспериментальное воздействие</td><td>ЯСК.-10~6</td><td>IgM-AOK</td><td>IgG-AOK</td></tr><tr><td>в селезенке</td></tr><tr><td>1 -Я</td><td>(контроль; n= 11)</td><td></td><td>232,7±15,8</td><td>3,703±0,084</td><td>4,683±0,090</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>(6138,0)</td><td>(58064,1)</td></tr><tr><td>2-я</td><td>(п=12)</td><td>40 ME ХГ</td><td>192,9± 15,3</td><td>3,730±0,100</td><td>4,758±0,071</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>(6926,5)</td><td>(64376,0)</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>P2_i&gt;0,05</td><td>р2_1&gt;0,05</td><td>Р2_ i&gt;0,05</td></tr><tr><td>3-я</td><td>(л=10)</td><td>200 ME ХГ</td><td>183,0± 11,1</td><td>3,591 ±0,059</td><td>4,652±0,095</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Рз_1&lt;0,02</td><td>(4263,8)</td><td>(53472,0)</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Pg 2 &gt;0,05</td><td>Рз_1&gt;0,05</td><td>Рз_1&gt;0,05</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Рз_2&gt;0,05</td><td>Рд 2-&gt;0,05</td></tr><tr><td>4-я</td><td>(контроль; п=9)</td><td>Овариэктомия</td><td>224,3±9,8</td><td>3,675±0,052</td><td>4,802±0,070</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>р4_1&gt;0,05</td><td>(5029,4)</td><td>(69438,9)</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>р4_1&gt;0,05</td><td>р4_ | &gt;0,05</td></tr><tr><td>5-я</td><td>(д=11)</td><td>Овариэктомия4-40 ME ХГ</td><td>225,1 ±16,0</td><td>3,649±0,063</td><td>4,822±0,072</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>р5_4&gt;0,05</td><td>(5029,8)</td><td>(76188,1)</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Р5-4&gt;0,05</td><td>р5_4&gt;0,05</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Р5_2&gt;0,05</td><td>р5_2&gt;0,05</td></tr><tr><td>6-я</td><td>0=12)</td><td>Овариэктомия-)-200 ME ХГ</td><td>156,0±6,8</td><td>3,536±0,044</td><td>4,601 ±0,038</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Рб_ 4&lt;0,001</td><td>(3651,5)</td><td>(41691,2)</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>р6__5&lt;0,001</td><td>Рб_4&gt;0,05</td><td>Рб—4&lt;0,02</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>Рб_ з&gt;0,05</td><td>Рб_в&gt;0,05</td><td>Рб—5&lt;0,02</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td>Рб_з&gt;0&gt;05</td><td>р6_3&gt;0,05</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>Примечание. Здесь и в табл. 2 — в качестве контроля использовали животных, которым инъецировали растворитель гормона — стерильный физиологический раствор; п — количество животных в группе; в скобках — абсолютное число АОК.</p><p>В дозе, экстраполированной с максимальной концентрации гормона в период беременности (7— 10 нед), ХГ, инъецируемый овариэктомированным животным, статистически достоверно угнетает не только клеточность селезенки, но и вторичный иммунный ответ. Следует отметить, что в данном случае угнетение АОК избирательно и связано лишь с G-антителопродуцентами. М-АОК не подвергаются иммунодепрессивному воздействию высокой дозы ХГ (см. табл. 1). Статистически достоверная разница в количестве G-АОК, формирующихся под влиянием 40 и 200 ME ХГ, свидетельствует о дозозависимости иммуносупрессивного эффекта гормона. Разницы между ова- риэктомированными и некастрированными животными, как и в случае с дозой 40 ME, не выявлено.</p><p>Таким образом, можно констатировать иммунодепрессивный эффект высокой дозы ХГ, избирательно угнетающей процессы формирования G-AOK — основных антителопродуцентов анамне-</p><p>Таблица 2</p><p>Влияние ХГ in vitro на способность спленоцнтов формировать адоптивный вторичный иммунный ответ (Л1±т)</p><table-wrap id="table-2"><table><tbody><tr><td>Группа животных</td><td>Доза ХГ. ME</td><td>IgM-AOK (2-I07)</td><td>IgG-AOK
(2-10’)</td></tr><tr><td>1-я (контроль; п = 21)</td><td>_</td><td>3,057±0,051</td><td>3,078±0,040</td></tr><tr><td></td><td></td><td>(1301,5)</td><td>(1301,8)</td></tr><tr><td>2-я (п=12)</td><td>40</td><td>3,019±0,104</td><td>3,118±0,072</td></tr><tr><td></td><td></td><td>(1399,8)</td><td>(1513,8)</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Р2_ | &gt;0,05</td><td>Р2_ |&gt;0,05</td></tr><tr><td>3-я (п=11)</td><td>200</td><td>2,814±0,073</td><td>2,917 ±0,082</td></tr><tr><td></td><td></td><td>(737,6)</td><td>(960,3)</td></tr><tr><td></td><td></td><td>р3_ |&lt;0,01</td><td>Рз | &gt;0,05</td></tr><tr><td></td><td></td><td>Рз_2&gt;0,05</td><td>Рд_ 2 &gt;*0,05</td></tr></tbody></table></table-wrap><p>стического иммунного ответа. Не исключено, что подобный эффект зависит от способности гормона в этой дозе снижать клеточность селезенки. Помимо этого, необходимо отметить неспособность половых стероидов, чей синтез индуцируется ХГ [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>], влиять на процессы формирования вторичного иммунного ответа.</p><p>Внесение гормона в культуру клеток селезенки в дозе 40 ME не оказывает значимого влияния на уровень М-АОК или G-АОК, формирующихся у облученных реципиентов. В то же время в дозе 200 ME ХГ достоверно угнетает способность иммунных спленоцитов формировать при вторичном контакте с антигеном анамнестический иммунный ответ. Однако в отличие от экспериментальной модели in vivo ХГ угнетает М-антителопродуценты in vitro (табл. 2). Это, по всей видимости, связано только с уровнем активации предшественников АОК (ПАОК). Если, в первой серии экспериментов ХГ воздействовал на ПАОК после их повторного контакта с антигеном, то в экспериментах in vitro гормон контактировал с клетками памяти, которые были сенсибилизированы, но не активированы антигеном. Из этого можно заключить, что ХГ-зависи- мая иммунодепрессия ассоциирована не только с дозой гормона, но и с уровнем активации лимфоидных клеток. Антиген, по-видимому, способен селекционировать иммунокомпетентные клетки для регуляторного действия ХГ.</p><p>Таким образом, можно говорить о реальной иммуносупрессии вторичного ответа гормоном беременности как на этапе сенсибилизации, так и на этапе формирования антителопродуцентов, но лишь в период его максимальной секреции — 7—10 нед. С позиции физиологии беременности данный эффект гормона и ограничение его по времени оправданны, так как именно в этот -период на клетках плода экспрессируются антигены главного комплекса гистосовместимости (HLA) [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. Однако, если говорить о патологической беременности, как в случае с гемолитической болезнью новорожденных, то простое сопоставление сроков появления фетальных эритроцитов в кровоток матери (15 нед беременности [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]) показывает, что процессы формирования вторичного иммунного ответа выходят за временные рамки действия высокой дозы ХГ. Можно предполагать, что такое несоответствие способствует при определенных условиях развитию иммунопатологического процесса.</p><p>Выводы</p><p>Иммуномодулирующее влияние ХГ на процессы формирования вторичного иммунного ответа не зависит от половых стероидов яичников.</p></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Димитров Д. Я. Хориальный гонадотропин человека: Пер. с болг,— М., 1979.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Димитров Д. Я. Хориальный гонадотропин человека: Пер. с болг,— М., 1979.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Кеворков Н. Н., Шир шее С. В., Князев Ю. А. // Пробл. эндокринол.— 1988.— № 6.— С. 79—83.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Кеворков Н. Н., Шир шее С. В., Князев Ю. А. // Пробл. эндокринол.— 1988.— № 6.— С. 79—83.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Милер И. Иммунитет человеческого плода и новорожденного.— 1-е изд,— Прага, 1983.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Милер И. Иммунитет человеческого плода и новорожденного.— 1-е изд,— Прага, 1983.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Трунова Д. А. Иммунология репродукции.— Новосибирск, 1984.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Трунова Д. А. Иммунология репродукции.— Новосибирск, 1984.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ширшев С. В., Кеворков Н. И. // Успехи соврем, биол.— 1991,— Т. 3, № 5.— С. 683—697.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ширшев С. В., Кеворков Н. И. // Успехи соврем, биол.— 1991,— Т. 3, № 5.— С. 683—697.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dresser D. W., Words Н. Н. // Nature.— 1965,— Vol. 208, N 5013.— Р. 859—861.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dresser D. W., Words Н. Н. // Nature.— 1965,— Vol. 208, N 5013.— Р. 859—861.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Han Т. // J. Immunol.— 1975.- Vol. 29, N 3,— Р. 509— 515.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Han Т. // J. Immunol.— 1975.- Vol. 29, N 3,— Р. 509— 515.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jerne N. К., Nordin А. А. // Science.— 1963.—Vol. 140, N 3365,— Р. 405—405.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jerne N. К., Nordin А. А. // Science.— 1963.—Vol. 140, N 3365,— Р. 405—405.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kevorkov N. N.. Shilov Ju. I., Shirshev S. V. // Brain Behav. Immun.— 1991.— Vol. 5.— P. 149—161.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kevorkov N. N.. Shilov Ju. I., Shirshev S. V. // Brain Behav. Immun.— 1991.— Vol. 5.— P. 149—161.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Seigler H. F„ Metzgar R. S. // Transplantation.— 1970.— Vol. 9,— P. 478—486.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Seigler H. F„ Metzgar R. S. // Transplantation.— 1970.— Vol. 9,— P. 478—486.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sulke A.. N., Jones D. B., Wood P. J. // J. Reprod. Immunol.— 1985.— Vol. 7, N 2,— P. 105—110.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sulke A.. N., Jones D. B., Wood P. J. // J. Reprod. Immunol.— 1985.— Vol. 7, N 2,— P. 105—110.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wide L. // Acta endocr. (Kbh.).— 1962.— Suppl. 70,— P. 1 — 100.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wide L. // Acta endocr. (Kbh.).— 1962.— Suppl. 70,— P. 1 — 100.</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
