Перейти к:
Процесс репарации трофических язв у больных сахарным диабетом
https://doi.org/10.14341/probl11391
Аннотация
В последние 30 лет отмечается резкий рост заболеваемости сахарным диабетом (СД), особенно в промышленно развитых странах, и распространенность его имеет тенденцию к дальнейшему увеличению [3]. Основной причиной инвалидизации и гибели больных являются поздние осложнения этого заболевания. Среди них особенно важно вы-делить развивающийся синдром диабетической стопы (СДС), который определяется как инфекция, язва и/или деструкция глубоких тканей, связанная с неврологическими нарушениями и снижением магистрального кровотока в артериях нижних конечностей различной степени тяжести (Международное соглашение по диабетической стопе, Нидерланды, 1999 г.)
Для цитирования:
Мыскина Н.А., Токмакова А.Ю., Анциферов М.Б. Процесс репарации трофических язв у больных сахарным диабетом. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):34-38. https://doi.org/10.14341/probl11391
For citation:
Myskina N.A., Tokmakova A.Yu., Antsiferov M.B. The process of repair of trophic ulcers in patients with diabetes mellitus. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):34-38. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11391
В последние 30 лет отмечается резкий рост заболеваемости сахарным диабетом (СД), особенно в промышленно развитых странах, и распространенность его имеет тенденцию к дальнейшему увеличению [3]. Основной причиной инвалидизации и гибели больных являются поздние осложнения этого заболевания. Среди них особенно важно выделить развивающийся синдром диабетической стопы (СДС), который определяется как инфекция, язва и/или деструкция глубоких тканей, связанная с неврологическими нарушениями и снижением магистрального кровотока в артериях нижних конечностей различной степени тяжести (Международное соглашение по диабетической стопе, Нидерланды, 1999 г.)
Распространенность язв при СД, по мнению разных авторов, составляет 4—15% [3, 4, 30], среди стационарных больных дефекты кожи нижних конечностей отмечаются в 6—20% случаев [12, 22, 28]. Их частота не зависит от типа диабета [2]. Хронические язвы стоп развиваются у 15 % больных в течение жизни [23]. Продолжительность пребывания в стационаре этих пациентов превышает таковую больных без язв и составляет 6—14 нед [46] , а затраты на лечение исчисляются десятками тысяч долларов.
Длительно незаживающие язвы в 85% случаев приводят к ампутациям из-за развития инфекции и гангрены, и у половины прооперированных больных через 5 лет имеются показания к проведению повторного оперативного вмешательства [10, 13, 46]. Известно, что трофические язвы склонны к ре- цидивированию, и частота рецидивов через 1, 3 и 5 лет составляет 44, 61 и 70% соответственно [8].
Необходимо подчеркнуть, что вовремя начатое лечение трофических язв в большинстве случаев позволяет предотвратить ампутацию [8, 10].
На процесс заживления язвенных дефектов при СД оказывает влияние множество факторов. Заболевания периферических сосудов и нейропатия являются основными причинами развития язв стоп и их замедленной эпителизации. Потеря чувствительности не только приводит к формированию язв, но и ухудшает заживление, поскольку пациенты не могут определить локализацию повреждения [5]. Нейропатия приводит к деформации стопы из- за дисбаланса между флексорами и экстензорами, что создает зоны повышенного давления на подошве. Известно, что у пациентов с СД имеются изменения в сосудах разного калибра, и это также вносит свой вклад в процесс замедления репарации ран. Высокий уровень гликемии, изменяя функцию лейкоцитов, способствует присоединению ин-
фекции [27], видимые симптомы которой могут отсутствовать при СД в силу имеющихся нейропатических изменений. Это ухудшает восприятие и оценку пациентом признаков инфекции. Снижение остроты зрения у большинства больных диабетом препятствует раннему обнаружению поврежденной кожи. Факторы роста, цитокины, синтез коллагена и другие факторы, участвующие в нормальном процессе заживления, при СД изменены.
К настоящему времени многое известно о факторах риска, механизмах возникновения и профилактике СДС, однако актуальными остаются вопросы изучения процесса репарации ран при СД на клеточном и биохимическом уровне.
Фазы репарации трофических язв
Заживление ран включает в себя процессы коагуляции, воспаления, матричного синтеза и депонирования, ангиогенез, фиброплазию, эпителиза- цию, сокращение раны и восстановление. Выделяют 3 фазы заживления: I — воспаления или экссудации, II — пролиферации, или грануляции, III — эпителизации. Процессы репарации протекают под контролем факторов роста, которые присутствуют в организме в небольших количествах, но оказывают значительное влияние на ход заживления ран [1, 6, 7, 18, 36].
Воспаление — это местная защитная реакция ткани в ответ на ее повреждение, направленная на удаление как повреждающего агента, так и поврежденных тканей. Как правило, острая фаза воспаления продолжается 4 дня с момента повреждения [4, 7, 18]. Возникающая сразу вазоконстрикция ограничивает кровотечение внутри раны (первые 5— 10 мин), а выделившиеся серотонин и тромбоксан усиливают ее для сохранения факторов заживления в зоне травмы [9, 50, 54]. Практически в это же время при участии гистамина и брадикинина происходит вазодилатация и повышается проницаемость капилляров, что способствует притоку и выходу элементов крови в рану.
Тромбоциты, участвующие в тромбообразова- нии и гемостазе, опосредуют высвобождение ряда биологически активных веществ, стимулирующих синтез компонентов внеклеточного матрикса (ВКМ) и, таким образом, запускающих последующие стадии репарации, в частности миграцию и пролиферацию клеток в области раны. К упомянутым выше веществам относятся тромбоцитарный фактор роста (PDGF), тромбоцитарный фактор 4 (PF4), трансформирующий фактор роста a (TGF- а) и трансформирующий фактор роста-p (TGF-p), фактор роста фибробластов (FGF), эпидермальный фактор роста (EGF), тромбоцитарный фактор ангиогенеза (PDAF), серотонин, простагландин, тромбоксан и гистамин. Дегрануляция тромбоцитов инициирует классический или альтернативный каскад образования комплемента, в результате чего продуцируются анафилотоксины СЗа и С5а, являющиеся хемокинами для нейтрофилов и моноцитов [6. 39]. Последние трансформируются в макрофаги, клетки поздней стадии воспаления. Показано, что гипергликемия ухудшает функцию комплемента in vitro [36]. Активированные нейтрофилы выделяют свободные радикалы и лизосомальные ферменты, включая протеазы, коллагеназы и эластазы, способствующие борьбе с инфекцией и очищению раны [51]. При диабете применяется функция полиморфно-ядерных лейкоцитов, что проявляется в аномальной миграции, фагоцитозе и хемотаксисе. Эти иммунологические нарушения напрямую связаны с метаболическими изменениями вследствие декомпенсации углеводного обмена. Отмечена корреляция между адекватным гликемическим контролем и частотой этих нарушений [8].
Достаточная оксигенация тканей является важным условием в борьбе с инфекцией [7, 49]. После ограничения бактериальной инфекции ослабленные нейтрофилы становятся частью тромба или фагоцитируются фибробластами или макрофагами. Последние контролируют и регулируют состояние раны посредством выработки факторов, таких, как PDGF [48], TGF-p [13], TGF-a [38], FGF ]16], интерлейкин-1 (IL-1), фактор некроза опухолей (TNF), играющих ключевую роль в миграции, активации фибробластов и координации процессов формирования грануляционной ткани [21]. Схематически это представлено на рисунке.
Фаза пролиферации, или образование грануляционной ткани, длится в течение следующих 10—14 сут. Процесс миграции и пролиферации фибробластов в место повреждения сопровождается синтезом и секрецией этими клетками компонентов ВКМ [4, 7, 18, 36]. ВКМ представлен различными протеинами в полисахаридном геле, состоящем из гликозаминогликанов и протеогликанов, и коллагеном. На процесс пролиферации фибробластов воздействуют ряд ростовых факторов (например, PDGF и EGF) [38], а также гипоксия в центре раны [32].
Образовавшийся фибронектин облегчаег адгезию фибробластов к ВКМ, стимулирует их миграцию, а также обеспечивает механическую опору для коллагена [53]. Было показано, что секреция клеточного фибронектина фибробластами в область раны и фрагменты фибронектина, образующиеся в результате распада соединительной ткани в местах острого повреждения, действуют как хемоаттрактанты для моноцитов, фибробластов и клеток эндотелия, причем как in vitro, так и in vivo [19]. В хронических же ранах небольшие фрагменты фибронектина увеличивают активность протеаз матрикса и подавляют заживление раны [30].
Фибриллярные коллагены составляют основную массу структурных белков всей соединительной ткани, причем в здоровой коже содержится около 80—90% коллагена 1 типа и 10—20% коллагена III типа [49]. Образование матрикса соединительной ткани происходит в определенной последовательности — фибронектин, коллаген III типа и коллаген I типа [14]. Таким образом, в течение первых нескольких дней репарации наблюдается тран- зиторное повышение содержания коллагена III типа относительно уровня коллагена I типа. В дальнейшем это соотношение меняется, и в конечном итоге коллаген I типа становится доминирующим. Накопление пучков коллагена I типа и изменение их межмолекулярных связей [15] обеспечивает нарастание эластичности рубца, а по мере отложения
Трофическая язва
(PDGF) (bFGF)
(RDGF)
Резистентность к инфекции ч- (О2)
I
Коагуляция -
Санация раны «<—
Тромбоциты - | (IL-1) Воспаление |
(TGFp (TDAF |
|
Лимфоциты |
(FGF) |
|
Макрофаги |
||
Гоанулоииты |
▼
> Фибробласты
Эпителий
(MMP/TIMP)
(EGF)
Деградация коллагена
Синтез коллагена
Ремоделирование
(IGF-1) (TGFP)
(FGF)
(IL-1)
(TNFa) ▼ V Ангиогенез
Синтез протеогликанов
▼
Сокращение раны
>• Заживление
Факторы активации и координации процессов формирования грануляционной ткани W. К. Stadelmann, 1998, переработано [49].
протеогликанов повышает антидеформационные свойства раны.
Ангиогенез протекает одновременно с фазой пролиферации. Грануляционная ткань, сформировавшаяся в пролиферативную фазу, характеризуется временно повышенной скоростью метаболизма и, следовательно, требует обильного кровоснабжения. В отсутствие последнего поступление макрофагов и фибробластов в ложе раны прекращается, отчасти вследствие дефицита кислорода и питательных веществ, что приводит к замедлению регенерации ткани.
Полагают, что процесс ангиогенеза в период репарации кожи является результатом действия различных ангиогенетических стимулов. Активированные макрофаги высвобождают мощные стимуляторы ангиогенеза, в частности FGF [25], TNFa [24] и IL-8 [35]. Пролиферацию эндотелиальных клеток стимулируют также молочная кислота [26, 31], биогенные амины [59] и низкое парциальное давление кислорода [34]. Тромбоцитарные факторы и фактор роста эндотелия [42, 58] вызывают миграцию и пролиферацию эндотелиоцитов. Ангиогенез является регулируемым процессом, однако его механизмы изучены крайне мало.
Ремоделирование коллагена зависит от взаимодействия процессов его синтеза и деградации, которые котролируются рядом коллагеназ, синтезируемых гранулоцитами, макрофагами, клетками эпидермиса и фибробластами. Тремя основными типами ферментов, обладающими способностью лизировать коллаген, являются бактериальные коллагеназы, лизосомальные протеазы и тканевые коллагеназы.
Первые 2 группы ферментов способны воздействовать лишь на фрагментированный коллаген. Последняя разновидность коллагеназ (тканевые) состоит из 3 матриксных металлопротеиназ (ММР): интерстициальной коллагеназы (ММР-1), обеспечивающей деградацию коллагена типов I, II, III, X и XIII; желатиназы (ММР-2), расщепляющей денатурированный коллаген любого типа и пептидный коллаген типов IV и V, и стромелизина (ММР-3), катализирующего распад коллагенов типов III, IV, VII и IX.
Продукцию коллагеназ фибробластами стимулируют несколько ростовых факторов, в том числе IL-1, PDGF и инсулиноподобный фактор роста-1 (IGF-1). Ростовые факторы также способны регулировать скорость деградации вновь образованного матрикса.
Прекращение коллагенолитической активности в коже, как было показано, зависит от действия естественных ингибиторов, присутствующих в соединительной ткани всех органов человека, в том числе тканевых ингибиторов металлопротеиназ (TIMP) [17].
Фаза эпителизации развивается только после завершения стадии грануляции и представляет собой миграцию, митоз и дифференцировку эпидермальных клеток. Скорость миграции зависит от парциального давления кислорода в тканях и от относительной влажности раны — скорость миграции пропорциональна влажности. При СД отмечена более низкая скорость эпителизации.
Точная картина миграции, посредством которой осуществляется регенерация эпидермиса, не выяснена.
Конечным этапом, длящимся в течение нескольких месяцев, является фаза ремоделирования, во время которой дерма отвечает на повреждение продолжающимся синтезом и распадом коллагена, а также деваскуляризацией грануляционной ткани по мере созревания рубцовой, содержащей меньшее количество сосудов.
Роль ММР и их ингибиторов
ММР относятся к семейству Zn-зависимых эндопептидаз, которые обеспечивают деградацию белковых компонентов межклеточного матрикса и базальных мембран. В настоящее время описано, включая данные о первичной структуре, более 20 различных ММР человека. На основании первичной структуры, субстратной специфичности и клеточной локализации эти ферменты делят на 4 основные подсемейства: коллагеназы, желатиназы, стромелизины и мембранно-связанные ММР. Однако некоторые недавно описанные ферменты, такие как металлоэластазы макрофагов ММР-2, ММР-7, стромелизин-3, ММР-18, ММР-19,
ММР-20, ММР-23, не могут быть отнесены ни к одному из этих подсемейств [11]. Подсемейство коллагеназ включает в себя интерстициальную коллагеназу (ММР-1), коллагеназу нейтрофилов (ММР-8) и коллагеназу-3 (ММР-13). Эти ферменты разрушают нативные фибриллярные интерстициальные коллагены, разрывая единственную пептидную связь в a-цепях, при этом образуются фрагменты длиной приблизительно 1/4 и 1/3 длины интактной молекулы [33, 41, 55]. Вместе с тем коллагеназы могут гидролизировать и другие субстраты, но способность разрушать фибриллярные коллагены в основном свойственна только им. Коллагеназа нейтрофилов предпочтительно расщепляет коллаген I типа, тогда как интерстициальная коллагеназа — коллаген III типа [41].
К подсемейству желатиназ относятся желатиназа А (ММР-2) и желатиназа В (ММР-9). Они могут расщеплять коллагены IV, V типов и эластин в составе базальных мембран, а также денатурированный коллаген (желатин). Последнее позволяет желатиназам дополнять коллагеназы в процессах деградации фибриллярных коллагенов [50, 56]. Кроме того, желатиназы гидролизируют коллагены других типов, а также ряд белков соединительнотканного матрикса.
Стромелизин-1 (ММР-3), стромелизин-2
(ММР-10) из подсемейства стромелизинов и мат- рилизин (ММР-7) отличаются низкой субстратной специфичностью и участвуют в деградации многих белков ВКМ, включая протеогликаны и гликопротеины, такие как ламинин и фибронектин.
Мембранно-связанные ММР имеют более высокую субстратную специфичность [29] и лизируют коллагены I, II и III типов [44], фибронектин, ламинин, витронектин и дерматансульфат протеогликан [45].
Все ММР синтезируются в виде профермента, многие из них секретируются клетками в латентной форме. Механизм активации профермента до конца не выяснен.
Тканевые ингибиторы ММР регулируют ферментативную активность ММР и их активацию in vivo [20, 26, 43]. Нормальным условием протекания физиологических процессов в ране является поддержание равновесия между активностью ММР и их ингибиторов [26]. Нарушение этого равновесия может оказывать глубокое воздействие на состав межклеточного матрикса и влиять на различные функции клеток, включая адгезию, миграцию и дифференциацию [20, 26, 43]. Работы, посвященные структуре и функциям TIMP, подробно рассматриваются в обзоре D. Gomes и соавт. [26]. В настоящее время известно 4 члена семейства TIMP.
Большая часть сведений о свойствах ММР, накопленных к настоящему времени, особенно касающихся механизмов активации и ингибирования этих ферментов, получена в экспериментах in vitro или с использованием рекомбинантных ММР и TIMP.
К настоящему времени имеется мало данных об уровне активности ММР в хронических и острых ранах. Проводились исследования содержания ММР в биопсийном материале области язв [47] и раневом экссудате [37, 54]. Показано, что у больных с хроническими трофическими нарушениями нижних конечностей (при СД, варикозной болезни, компрессионных язвах) уровень ММР был выше, чем в острых ранах, и что активность ММР снижалась при заживлении ран. В работе A. Rogers и соавт. [47] показано, что соотношение ММР/ TIMP у больных с диабетическими язвами такое же, как и при варикозных язвах, и что в обоих случаях отмечается повышение содержания ММР и TIMP по сравнению с уровнем ферментов в здоровой коже.
- N. Trengove и соавт. [54] продемонстрировали снижение уровня активности ММР на 90% при применении ингибитора ММР и отметили значительное снижение повышенного уровня ММР в хронических ранах при заживлении. Эти же процессы наблюдаются и при нормальном заживлении острых ран. Также показано, что использование факторов роста в лечении 15 больных с венозными
язвами приводит к увеличению содержания ингибиторов протеаз. J. Wright и соавт [57], применявшие перевязочные средства с микрокристаллическим серебром, отметили неравномерное снижение уровня ММР и положительную динамику в состоянии язвенных дефектов у больных с венозными язвами. В. Jvlast и G. Schultz [40], R. Tamuzzer и соавт. [52] утверждают, что в хронических ранах, повторных травмах, при ишемии и наличии инфекции повышен уровень ММР, снижены уровни TIMP и факторов роста, что приводит к нарушению фаз репарации и изменению процессов регенерации.
Таким образом, на основании данных, полученных в последнее время, можно предположить, что изменение уровня ММР и их ингибиторов может служить прогностическим фактором и быть косвенным показателем эффективности проводимой терапии. ММР и TIMP можно рассматривать в качестве биохимических маркеров, позволяющих количественно оценивать процесс регенерации трофических язв при СД. Изучение роли этих протеиназ и возможности влиять на их активность будет способствовать созданию новых технологий в лечении ран.
Список литературы
1. Аничков Н. Н., Волкова К. Г., Гаршин В. Г. // Морфология заживления ран. — М., 1951. — С. 98-127.
2. Анциферов М. Б., Галстян Г. Р., Токмакова А. Ю., Дедов И. И. // Сахарный диабет. — 2001. — № 2. — С. 2-8.
3. Балаболкин М. И. // Диабетология. — М., 2000. — С. 8-14.
4. Булынин В. В., Глухов А. А., Мошуров И. П. // Лечение ран. — Воронеж, 1998. — С. 12—19; 65-69.
5. Ким А. Ю., Гольдберг О. А., Морозов Ю. И. // Хирургия. —1998- № 5. - С. 46-47.
6. Ковальчук Л. В., Ганковская Л. В. // Система цитокинов.М., 1999. - С. 7-24; 28-50.
7. Кузин М. И., Костюченок Б. М. // Раны и раневая инфек¬ция. - М., 1990. - С. 38-96; 212-221.
8. Международное соглашение по диабетической стопе. —1999- С. 20-24.
9. Стручков В. И., Гостшцев В. К., Стручков Ю. В. Руково¬дство по гнойной хирургии. — М., 1984. — С. 30-47.
10. Удовиченко О. В., Токмакова А. Ю., Анциферов М. Б. и др. // Сахарный диабет. — 2001. — № 2. — С. 20-23.
11. Хасигов П. 3., Подобед О. В., Кцоева С. А. и др. // Биохи¬мия. — 2001. — Т. 66, вып. 2. — С. 167-179.
12. Albrant D. Н. // Am. J. Pharm. Assos. — 2000. — Vol. 40, N 4. - P. 467-474.
13. Assoian В. K, Fleurdelys В. E., Stevenson H. C. et al. // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. - 1987. - Vol. 84. - P. 6020-6024.
14. Ausprunk D. K., Boudreau C. L., Nelson D. A. // Am. J. Pathol. - 1981. - Vol. 103. - P. 367-375.
15. Bailey A. J., Bazin S., Sims T. J. et al. // Biochim. Biophys. Acta. - 1975. - Vol. 405. - P. 412-421.
16. Baird A., Mormede P., Bohlen P. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 1985. - Vol. 126. - P. 358-364.
17. Brenner C. A., Adler R. R., Rappolee D. A. et al. // Genes Dev.1989. - Vol. 3. - P. 848-859.
18. Calvin Melissa. // Wounds. — 1998. — Vol. 10, N 1. — P. 12-32.
19. Clark R. A. F. // Biochemistry and Physiology of the Skin. — Oxford, 1990. - P. 576-601.
20. Denhardt D. T, Feng B. et al. // J. Pharmacol. Exp. Ther. — 1993. - Vol. 59. - P. 329-341.
21. Dielgelman R. F, Cohen I. K. // Plast. Reconstr. Surg. — 1981. - Vol. 68. - P. 107-113.
22. Epstein D. A., Corson J. D. // Wounds. — 2001. — Vol. 13, N 2. - P. 59-65.
23. Finch P. M., Hvder E. // The Foot. — 1999. — Vol. 9. — P. 156-163.
24. Folkman J., Shing T. // J. Biol. Chem. — 1992. — Vol. 267. — P. 10931-10934.
25. Folkman T, Lansbur M. // Science. — 1987. — Vol. 235. — p. 442-447.
26. Gomes D. E., Alonso D. F. et al. // Eur. J. Cell Biol. — 1997.Vol. 74. - P. 111-122.
27. Паи T, Pham, Rich J. // Wounds. — 2000. — Vol. 12, N 4. — P. 79-81.
28. Hegary Dr. S. // Diabetes Care. — 1999. — Vol. 22. — P. 1354-1360.
29. Hepper K. J., Matrisian L. M., Jensen R. A., Rodgers H. // Am. J. Pathol. - 1996. - Vol. 149. - P. 273-282.
30. Hynes R. // Annu. Rev. Cell Biol. — 1985. — Vol. 1. — P. 67-71.
31. Imre G. // Br. J. Ophthalmol. — 1964. — Vol. 48. — P. 75— 82.
32. Kirsner R. S., Eaglstein W. H. // Dermatol. Clin. — 1993. — Vol. 11, N 4. - P. 629-640.
33. Knauper V., Will H., Lopez-Otin C. et al. // J. Biol. Chem. — 1996. - Vol. 271. - P. 17124-17131.
34. Knighton D. R., Hunt T. K. et al. // Science. — 1983. — Vol. 221. - P. 1283-1285.
35. Koch A. E., Polverini P. J., Kunkel S. L. et al. // Science — 1992. - Vol. 258. - P. 1798-1801.
36. Levin M. E., O’Neal’s // The Diabetic Foot. — 6-th Ed. —1998- P. 395-403.
37. Lobman R. et al. // Diabetologia. — 2000. — Vol. 43. — Sup¬pl. 1. A(15).
38. Madtes D. K, Raines E. W., Sakariassen K. S. et al. // Cell. — 1988. - Vol. 53. - P. 285-293.
39. Marder S. R., Chenoweth D. E., Goldstein I. M. et al. // J. Im¬munol. - 1985. - Vol. 134. - P. 3325-3331.
40. Mast B. A., Schultz G. S. // Wound Rep. Reg. — 1996. — Vol. 4. - P. 411-420.
41. Matrisian L. M. // Bio Essays. — 1992. — Vol. 14. — P. 455-465.
42. Moulin V. /1 Eur. J. Cell Biol. - 1995. - Vol. 68, N 1. - P. 1-7.
43. Murphy G., Docherty A. L. // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. — 1992. - Vol. 7. - P. 120-125.
44. Ohuchi E., Imai K. et al. // J. Biol. Chem. — 1997. — Vol. 272. - P. 2446-2451.
45. Pei D., Weiss 5. J. // J. Biol. Chem. - 1996. - Vol. 271. - P. 9135-9140.
46. Pickup J. C., Williams G. // Textbook of Diabetes — London; Vienna, 1991. - P. 641-644.
47. Rogers A. A., Peschen M. et al. // Acta Derm. Venereol. — 2000. - Vol. 80. - P. 162-166.
48. Shimokado K., Raines E. W., Madles D. K. et al. // Cell. - 1985. - Vol. 43. - P. 277-286.
49. Stadelmann W. K., Digenis A. G., Tobin G. R. // Am. J. Surg.1998. - Vol. 176, N 2A. - P. 28-38.
50. Steed D. L. 11 Basic Science Review for Surgeons. — Philadel¬phia, 1992. - P. 12-29.
51. Steed D. L. Ц Surg. Clin. N. Am. - 1997. - Vol. 77, N 3. — P. 575-586.
52. Tarnuzzer R. W., Macauly S. P. et al. // Growth Factors Wound Heal. — New York, 1997. — P. 206-228.
53. Thomas D. W., O’Neill I. D., Harding K. G. et al. // J. Oral Maxillofac. Surg. — 1995. — Vol. 53. — P. 442-447.
54. Trengove N. S., Stacey M. S. et al. // Wound Rep. Reg. — 1999. - Vol. 7, N 6. - P. 442-452.
55. Welgus H. G., Heffrey J. J., Eisen A. Z. // J. Biol. Chem. — 1981. - Vol. 256. - P. 9511-9515.
56. Wilheim S. M., Collier I. E., Marmer B. L. et al. // J. Biol. Chem. - 1989. - Vol. 246. - P. 17213-17221.
57. Wright J. B., Orsted H. L., Burrell R. E. // 11-th Conference of the Eur. Wound Manag. Assoc. — Dublin, 2001. — P. 35.
58. Yang E. Y, Moses H. L. // J. Cell Biol. - 1990. - Vol. 111.P. 731-741.
59. Zauberman H., Michaelson I. C., Bergmann F. et al. // Exp. Eye Res. - 1969. - Vol. 8. - P. 77-83.
Об авторах
Н. А. МыскинаЭндокринологический научный центр РАМН
Россия
А. Ю. Токмакова
Эндокринологический научный центр РАМН
Россия
М. Б. Анциферов
Эндокринологический научный центр РАМН
Россия
Рецензия
Для цитирования:
Мыскина Н.А., Токмакова А.Ю., Анциферов М.Б. Процесс репарации трофических язв у больных сахарным диабетом. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):34-38. https://doi.org/10.14341/probl11391
For citation:
Myskina N.A., Tokmakova A.Yu., Antsiferov M.B. The process of repair of trophic ulcers in patients with diabetes mellitus. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):34-38. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11391

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).