Перейти к:
Гликозаминогликаны и диабетическая нефропатия
https://doi.org/10.14341/probl11392
Аннотация
Диабетическая нефропатия (ДН) занимает одно из ведущих мест в структуре летальности больных сахарным диабетом (СД) в России и за рубежом. Несмотря на интенсивное изучение, причины и механизмы развития этого осложнения окончательно не ясны. Чаще всего диабетическое поражение почек рассматривается как результат сложного взаимодействия обменных, гемодинамических, генетических и иных механизмов. При этом ведущую роль большинство исследователей отводят гипергликемии и запускаемым ею метаболическим расстройствам. К последним относят интенсификацию процессов неферментативного гликирования, активацию протеинкиназы С и полиолового шунта, окислительный и карбонильный стресс, гиперлипидемию, дисбаланс факторов транскрипции и цитокинов, нарушения обмена коллагена. Роль этих факторов в формировании ДН нашла отражение в ряде недавних обзоров
Для цитирования:
Бондарь И.А., Климонтов В.В. Гликозаминогликаны и диабетическая нефропатия. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):29-34. https://doi.org/10.14341/probl11392
For citation:
Bondar' I.A., Klimontov V.V. Glycosaminoglycans and diabetic nephropathy. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):29-34. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11392
Диабетическая нефропатия (ДН) занимает одно из ведущих мест в структуре летальности больных сахарным диабетом (СД) в России и за рубежом. Несмотря на интенсивное изучение, причины и механизмы развития этого осложнения окончательно не ясны. Чаще всего диабетическое поражение почек рассматривается как результат сложного взаимодействия обменных, гемодинамических, генетических и иных механизмов. При этом ведущую роль большинство исследователей отводят гипергликемии и запускаемым ею метаболическим расстройствам. К последним относят интенсификацию процессов неферментативного гликирования, активацию протеинкиназы С и полиолового шунта, окислительный и карбонильный стресс, гиперлипидемию, дисбаланс факторов транскрипции и цитокинов, нарушения обмена коллагена. Роль этих факторов в формировании ДН нашла отражение в ряде недавних обзоров (16, 22].
Еще одна метаболическая поломка, вероятно, не менее важная для развития ДН, затрагивает биосинтез и распад гликозаминогликанов (ГАГ). ГАГ — это углеводные биополимеры, состоящие из чередующихся остатков аминосахаров и уроновых кислот (или галактозы). Существует несколько типов ГАГ: гиалуроновая кислота, хондроитинсульфат, дерматансульфат, гепарин, гепарансульфат и кератансульфат. Различия между ними касаются структуры, клеточной и органной локализации и выполняемых функций. Комплексные соединения ГАГ с белками называют протеогликанами.
Основными видами сульфатированных ГАГ в почках являются гепарансульфат, хондроитинсульфат и дерматансульфат. Гепарансульфатсодержа- щие протеогликаны (перлеканы и др.) входят в состав базальных мембран (БМ), хондроитинсуль- фат- и дерматансульфатсодержащие протеогликаны (версиканы, декорины и др.) локализованы в мезангии и интерстиции. Почечные протеогликаны выполняют 3 основные функции: 1) структурную: являются одними из основных структурных элементов БМ, мезангиального матрикса и интер- стиция; 2) барьерную: обеспечивают нормальную зарядоселективность и проницаемость почечного фильтра; 3) регуляторную: участвуют в межклеточных взаимодействиях, регуляции роста и пролиферации разных типов клеток [39, 78]. Помимо традиционных продуцентов ГАГ, таких как фибробласты, синтез почечных ГАГ осуществляют эпителиальные и мезангиальные клетки [66, 69].
Данные, полученные в последние годы, показали важную роль нарушений обмена ГАГ в формировании ДН и позволили определить новые подходы к лечению этого осложнения.
- Роль нарушений обмена ГАГ в патогенезе ДН
Протеогликаны наряду с коллагеном IV типа и ламинином относят к главным компонентам БМ почечных клубочков. В начале 80-х годов прошлого века появились сообщения о том, что в гломерулярной БМ больных СД людей и лабораторных животных понижено содержание гепарансульфата [56, 59]. В дальнейших исследованиях эти данные получили неоднократное подтверждение [23, 71, 77]. Такая находка не могла не привлечь внимания, поскольку известно, что гепарансульфатсодержа- щие протеогликаны являются основным компонентом БМ клубочков, создающим ее отрицательный заряд. Последний препятствует прохождению через почечный фильтр небольших негативно заряженных молекул, в том числе альбумина. Оказалось, что плотность анионных сайтов в клубочковой БМ при диабете действительно снижается при увеличении альбуминурии [77], и это снижение связано с редукцией гепарансульфатсодержащих протеогликанов [31]. Повышенную экскрецию с мочой альбуминов и других белков при СД стали объяснять снижением содержания гепарансульфата в гломерулярной БМ.
Вместе с тем оказалось, что количество гепарансульфата понижено не только в БМ клубочков, но и в БМ капилляров других органов: скелетных мышц [83], кожи [73], сетчатки глаза [6]. Отметим, что гепарансульфат сосудистой стенки выполняет несколько важных функций: участвует в создании отрицательного заряда эндотелия, обеспечивает антикоагулянтные свойства сосудистой стенки, регулирует пролиферацию гладкомышечных клеток [39]. Хорошо известно, что развитие ДН часто сопровождается прогрессированием других микроангиопатий и атеросклероза. Снижение содержания гепарансульфата в различных участках микроцир- куляторного русла может объяснить генерализованный характер микроангиопатий при СД.
Причины снижения содержания гепарансульфата в почках <и микроциркуляторном русле больных СД остаются загадкой до настоящего времени. Существует несколько версий, объясняющих появление подобной аномалии. Одна из них связывает снижение содержания гепарансульфата в БМ с уменьшением биосинтеза этого вещества. Предполагают, что причиной может быть снижение активности N-деацетилазы — фермента, участвующего в образование гепарансульфата [21]. Возможно, что снижение синтеза гепарансульфата при СД имеет генетическую природу. В гене гепарансульфатпро- теогликана описан полиморфный участок BamHI [41], который оказался ассоциированным с развитием ДН у больных СД типа 1 в европейской популяции [35]. Исследования, проведенные в Японии, не выявили ассоциации между полиморфизмом этого гена и развитием нефропатии при СД типа 2 [24]. Образование гепарансульфата при диабете может быть подвержено и метаболическим влияниям. Показано, что синтез этого вида ГАГ эпителиальными клетками клубочков тормозится в условиях гипергликемии [75] и под действием поздних продуктов гликации [7]. Гипергликемия снижает экспрессию агрина — основного белка ге- парансульфатсодержащих протеогликанов в подоцитах [81].
Другая гипотеза состоит в том, что при СД синтезируется аномальный ("дефектный") гепарансульфат, измененные физико-химические свойства которого затрудняют взаимодействие с другими молекулами и встраивание в состав БМ. О наличии качественных аномалий биосинтеза свидетельствуют недавно описанные структурные изменения полисахаридных цепей гепарансульфата в почках больных диабетом [23]. Показано, что протеогликаны, синтезируемые мезангиальными клетками в условиях гипергликемии, имеют меньший по сравнению с нормой отрицательный заряд [61]. Вероятно, это связано с нарушением сульфатирования гепарансульфата, которое наблюдается при повышенном уровне глюкозы [75].
Наконец, возможно, что потеря гепарансульфата является следствием ускоренного распада протеогликановых комплексов БМ. В пользу последнего предположения свидетельствует обнаруженное нами [2] и другими исследователями [47, 60] высокое содержание гепарансульфата в моче больных СД с начальной и выраженной нефропатией. Не исключено, что триггером гиперкатаболизма протеогликанов при диабете выступает повышенный уровень циркулирующих лизосомальных гликозидаз. По нашим данным, повышенная экскреция ГАГ с мочой у больных с ДН взаимосвязана с высокой сывороточной активностью лизосомальных ферментов [42].
Помимо снижения количества гепарансульфата, в составе БМ при диабете происходят и другие изменения. В частности, у крыс с диабетом в гломерулярной БМ обнаруживаются хондроитинсуль- фатсодержашие протеогликаны, которые в норме присутствуют в ней лишь на этапе формирования почек [17]. Хондроитинсульфат при этом откладывается в субэндотелии клубочковых капилляров в зонах утолщения БМ и повреждения эндотелиальной выстилки [48]. Аккумуляция хондроитинсульфата в участках утолщения гломерулярной БМ обнаружена и у больных с ДН [31]. Вероятно, эти нарушения усугубляют изменения заряда и проницаемости клубочковой БМ и, следовательно, способствуют развитию протеинурии.
Наряду с БМ значительные изменения при нефропатии претерпевает мезангий, где обнаруживаются гиперпролиферация мезангиальных клеток и расширение матрикса. Изменениям мезангия придают важнейшую роль в формировании диабетического гломерулосклероза [53]. Как известно, для развития склеротических процессов характерна аккумуляция ГАГ, в частности хондроитин- и дерматансульфата. Именно эти виды ГАГ накапливаются в почках при СД [10]. Оказалось, что мезангиоциты крыс с диабетом продуцируют намного больше ГАГ, особенно дерматансульфата, чем клетки здоровых животных [33], а клубочковые клетки усиливают синтез гиалуроновой кислоты [44]. По-видимому, эти изменения не связаны непосредственно с гипергликемией: культивирование мезангиальных клеток в среде с повышенной концентрацией глюкозы не приводит к усилению синтеза ГАГ [33, 61]. Вместе с тем имеются данные о том, что продукцию ГАГ мезангиальными клетками могут запускать цитокины и липопротеиды низкой плотности [13, 18] Вероятно, нарушения баланса цитокинов и гиперлипидемия, часто наблюдаемые при СД, усугубляют дисфункцию мезангиоцитов и стимулируют гиперпродукцию компонентов мезангиального матрикса.
В отличие от других типов ГАГ содержание гепарансульфата в мезангиальном матриксе при ДН понижено [45]. Синтез гепарансульфата клетками мезангия в условиях гипергликемии снижается [51]. При этом известно, что гепарансульфат способен тормозить пролиферативную активность мезангиальных клеток (хондроитинсульфат дает противоположный эффект) [32]. Следовательно, дефицит гепарансульфата в мезангии может способствовать гиперпролиферации мезангиоцитов и ускоренному развитию гломерулосклероза [19].
Таким образом, накопленные к настоящему времени данные свидетельствуют о значительных качественных и количественных изменениях состава ГАГ и протеогликанов в почках при СД. Эти изменения могут играть непосредственную роль в развитии ДН.
- Исследование экскреции ГАГ с мочой в диагностике ДН
Показано, что нарушения метаболизма протеогликанов сопровождаются изменениями количества и состава ГАГ, экскретируемых с мочой. О механизмах экскреции известно немного. Предполагают, что в норме ГАГ попадают в мочу только путем фильтрации; секреции и реабсорбции этих веществ не установлено. Исследование уровня ГАГ в моче нашло применение в диагностике ряда заболеваний, прежде всего лизосомальных болезней накопления (мукополисахаридозов), при которых имеется генетический дефект ферментов лизосом, расщепляющих ГАГ [9]. Изменения гликозаминогли- канурии характерны также для системных заболеваний, связанных с нарушением метаболизма соединительной ткани [20]. Считается, что сдвиги в экскреции ГАГ при патологии почек связаны с нарушениями состава протеогликанов БМ и других почечных структур [10]. В связи с этим исследование гликозаминогликанурии предложено в качестве теста для диагностики и мониторинга ряда заболеваний почек. Изменение экскреции ГАГ обнаружено при гломерулонефритах, амилоидозе почек, хроническом пиелонефрите [3, 67].
зо
Достаточно подробно изучена экскреция ГАГ при экспериментальном и клиническом СД. При этом в большинстве исследований выявлено повышение экскреции ГАГ [34, 40, 47, 62] и лишь в единичных — ее снижение [10, 70]. Показано, что повышенная гликозаминогликанурии выявляется даже при отсутствии явных признаков ДН [62], однако наибольшей выраженности она достигает по мере развития диабетической ретинопатии и ДН [34, 40]. У больных СД установлена взаимосвязь между выделением ГАГ и экскрецией альбумина с мочой (ЭАМ) [2, 47].
Ценность изучения гликозаминогликанурии повышается, когда определение суммарной концентрации ГАГ дополняется исследованием их фракционного состава. Для идентификации отдельных фракций ГАГ используют электрофоретические, хроматографические, иммунологические методы. В норме основным видом ГАГ мочи является хондроитинсульфат, в качестве минорной фракции может присутствовать гепарансульфат [2]. При патологии почек нормальное соотношение между фракциями меняется. При повреждениях почечной ткани, например, в первые часы после трансплантации почки, в моче увеличивается содержание гепарансульфата [65]. Гиперэкскреция этого вида ГАГ закономерно обнаруживается при заболеваниях почек, протекающих с протеинурией. Так, повышение соотношения гепарансульфат/хондрои- тинсульфат, коррелирующее с величиной альбуминурии, наблюдается при различных видах нефротического синдрома [38]. При СД также обнаружена взаимосвязь между ЭАМ и гиперэкскрецией гепарансульфата. Наши исследования показали, что, начиная со стадии микроальбуминурии, развитие ДН у больных СД типов 1 и 2 сопровождается увеличением доли гепарансульфата и реже дерматансульфата в составе экскретируемых фракций [2]. Об увеличении количества гепарансульфата в моче при ДН сообщают и другие авторы [47]. Имеются данные о том, что гиперэкскреция ГАГ может указывать на скрытую дисфункцию почечного фильтра даже у больных с нормоальбуминурией. G. Gam- baro и соавт. обнаружили патологическое увеличение ЭАМ в ходе провокационного теста с лизином у пациентов с СД, имевших нормальную базальную экскрецию альбумина, но повышенную экскрецию ГАГ [26]. Очевидно, необходимы дальнейшие проспективные исследования для установления прогностической значимости обнаружения повышенного выделения ГАГ при СД.
Таким образом, исследование экскреции ГАГ с мочой у больных СД может быть дополнительным неинвазивным тестом в ранней диагностике ДН. Выявление повышенного содержания ГАГ и особенно доли гепарансульфата в составе экскретируемых фракций является достаточно чувствительным, хотя и неспецифичным признаком диабетического поражения почек.
- Препараты ГАГ в лечении ДН
Опыт применения ГАГ в клинической практике насчитывает уже несколько десятилетий. Прежде наиболее часто используемым препаратом был нефракционированный гепарин, в настоящее время предпочтение отдается его низкомолекулярным формам, а также комбинированным препаратам ГАГ (сулодексид, данапароид натрия).
Гепарины. Многообразие фармакологических эффектов гепарина, а также его структурное сходство с гепарансульфатом послужили основой для исследования эффективности тепаринотерапии при ДН. Установлено, что как нефракционированный, так и низкомолекулярный гепарин (НМГ) уменьшает ЭАМ у пациентов с СД и микроальбуминурией [49]. Имеются данные о том, что НМГ снижает ЭАМ и у больных с выраженной ДН [66]. Экспериментальные данные свидетельствуют о том, что ГАГ могут тормозить развитие морфологических изменений в почках при СД [27], хотя развитие гипертрофии почек гепаринотерапия не предупреждает [46, 55]. Показано, что гепарин предупреждает характерное для диабета утолщение клубочковых БМ [29, 46, 55]. Этот эффект свойствен как НМГ, так и нефракционированному гепарину. Кроме того, гепарины могут снижать синтез коллагена IV типа гломерулярными клетками и его отложение в мезангии [12, 29], а также уменьшать экспансию мезангиального матрикса [46]. Эти данные свидетельствуют о том, что гепарины тормозят формирование диабетического гломерулосклероза.
Нефропротективное действие гепаринов объясняют несколькими механизмами. Во-первых, гепарины способны уменьшать дисфункцию и гиперпролиферацию мезангиальных клеток, свойственную СД. НМГ повышает синтез гепарансульфата и уменьшает синтез хондроитинсульфата [И], а также тормозит образование коллагена IV типа мезангиальными клетками [12]. Показано, что НМГ предотвращает вызываемую гипергликемией активацию гена трансформирующего фактора роста р в мезангиоцитах [83]. Последний является одним из ключевых медиаторов развития ДН: с гиперэкспрессией трансформирующего фактора роста р связан повышенный синтез компонентов гломерулярного матрикса, таких как коллаген IV типа, фибронектин и протеогликаны (кроме гепаран- сульфатсодержащих) [82]. Во-вторых, гепарины повышают зарядоселективность клубочковой БМ. делая ее менее проницаемой для молекул белка. Доказано, что гепарин предотвращает потерю анионных сайтов в гломерулярной БМ, возникающую при СД [27, 52]. В-третьих, гепарины повышают
отрицательный заряд эндотелиальных клеток и предупреждают тем самым развитие микротромбозов во внутрипочечных сосудах. Возможно, это свойство связано со способностью гепаринов повышать синтез гепарансульфата в клетках эндотелия [39].
Недавние исследования обнаружили новые механизмы нефропротективного эффекта гепаринов. Оказалось, что гепарин может уменьшать апоптоз (запрограммированную гибель) различных типов клубочковых клеток [37]. Кроме того, обнаружена способность гепаринов уменьшать выраженность оксидативного стресса в клубочках [14].
Возможно также, что нефропротективное действие гепаринов при СД связано с их гиполипиде- мическим эффектом. Роль гиперлипидемии в прогрессировании ДН в последние годы четко установлена. Показано, что модифицированные (окисленные и гликированные) липиды при СД накапливаются в сосудистой стенке и мезангии, что приводит к ускоренному формированию атеро- и гломерулосклероза. Гиполипидемическая активность гепаринов у больных СД изучена недостаточно. В одном из недавних исследований показано, что 6- месячная терапия фраксипарином у находящихся на гемодиализе больных СД типа 2 с гиперлипидемией приводит к снижению уровня триглицеридов (в среднем на 34%) и липопротеидов низкой плотности (в среднем на 26%) [80]. Другие авторы не подтверждают гиполипидемический эффект гепаринов при СД [50].
Гепарины не оказывают неблагоприятного влияния на углеводный обмен, а также на гемодинамику в почках [66]. Однако имеются данные о том, что частота геморрагических осложнений на фоне лечения гепаринами выше у больных с почечной недостаточностью [30]. Кроме того, следует помнить, что гепарин снижает синтез альдостерона и может вызвать гиперкалиемию у пациентов с выраженной ДН [54]. У больных СД, находящихся на гемодиализе и получающих гепарин, возможно развитие выраженных кожных некрозов [43].
Несмотря на то что не существует четких доказательств того, что терапия НМГ при ДН более эффективна, чем лечение обычным (нефракциониро- ванным) гепарином, использование НМГ представляется более предпочтительным из соображений безопасности и удобства применения. По обобщенным данным 3. С. Баркагана и соавт. [1], НМГ по сравнению с обычным гепарином реже вызывает серьезные геморрагические осложнения и гепариновую тромботическую тромбоцитопению, практически не оказывает активирующего влияния на тромбоциты, малые дозы НМГ оказывают более выраженное блокирующее действие на пусковые механизмы свертывания крови. НМГ выгодно отличает простота подкожного введения (1— 2 раза в сутки), а также возможность применения в амбулаторных и домашних условиях. В большинстве случаев НМГ в качестве профилактического антитромботического средства применяют в дозах, не превышающих 4000—6000 анти-Ха-ЕД в сутки. Доза НМГ, обеспечивающая антипротеинуриче- ский эффект при СД, составляет 4000 анти-Ха-ЕД в сутки [49, 66]. Общепризнано, что при использовании таких доз проводить лабораторный мониторинг гипокоагуляционного действия НМГ не требуется.
Из препаратов НМГ в нашей стране нашли применение эноксапарин (клексан), далтепарин (фрагмин), надропарин (фраксипарин).
Сулодексид. Впервые на фармацевтическом рынке сулодексид появился в 1974 г. и с тех пор нашел широкое применение как антитромботиче- ский препарат. Сулодексид представляет собой ГАГ высокой степени очистки, на 80% состоящий из высокоподвижной гепариноподобной фракции и на 20% из дерматансульфата. Гепариноподобная фракция сулодексида по сравнению с нефракцио- нированным гепарином имеет средненизкую молекулярную массу, меньшую степень сульфатирования и проявляет пониженную антикоагуляционную активность. Дерматансульфат обеспечивает антитромботическую активность препарата. Присутствие в составе гепариноподобной фракции и дерматансульфата дает синергический эффект, обеспечивающий высокий антитромботический потенциал при меньшем по сравнению с гепарином риске кровотечения [8, 36].
Изначально в диабетологии сулодексид (Vessel Due F) нашел применение как средство для лечения сосудистых поражений нижних конечностей и лишь затем привлекли внимание его нефропротек- тивные свойства. Эксперименты показали, что введение сулодексида животным с СД предупреждает утолщение клубочковой БМ, потерю ею отрицательного заряда, рост альбуминурии. При этом влияния на метаболический контроль и скорость клубочковой фильтрации препарат не оказывает [27]. Многочисленные клинические исследования подтвердили, что сулодексид уменьшает ЭАМ у больных СД типов 1 и 2 с микро- и макроальбуминурией [4, 5, 63, 64, 76].
Механизмы антипротеинурического действия препарата аналогичны таковым гепарина. Помимо снижения альбуминурии, сулодексид дает гиполипидемический эффект. Результаты исследований у больных СД с поражениями периферических артерий показали, что сулодексид достоверно снижает уровень триглицеридов и повышает уровень холестерина липопротеидов высокой плотности, а также снижает содержание фибриногена и вязкость крови [25]. В экспериментальных условиях продемонстрированы антиоксидантные свойства сулодексида [57]. Показанием к назначению препарата при СД, помимо нефропатии, могут быть макросо- судистые осложнения: макроангиопатия нижних конечностей [25], ишемическая болезнь сердца и перенесенный инфаркт миокарда [15].
Важным преимуществом сулодексида по сравнению с гепаринами является его эффективность не только при парентеральном введении, но и при приеме внутрь. Общепринятой схемы лечения не существует. Обычно рекомендуется назначать препарат внутримышечно в дозе 600—1200 ЛЕ в течение 15—20 дней, а затем перорально в дозе 1000 ЛЕ/сут на протяжении 1—6 мес. В исследованиях сулодексида у больных с ДН дозы варьировали от 600 ЛЕ/сут [63, 64] до 1500 ЛЕ/сут [5], а длительность применения — от 3 нед [63] до 6 мес [76].
яя
Имеются данные о возможности более длительного применения сулодексида [15].
В последние годы в мире накапливается опыт использования и других препаратов ГАГ. Одним из комбинированных препаратов является дана- пароид натрия (Orgaran), представляющий собой смесь ГАГ, содержащую 84% гепарансульфата, 12% дерматансульфата и 4% хондроитинсульфата. Показано, что данный препарат оказывает отчетливое антипротеинурическое влияние у больных СД типа 1 [72].
В заключение можно отметить, что ГАГ являются новым и весьма перспективным классом препаратов для лечения больных с ДН. Однако, несмотря на многочисленные благоприятные эффекты, многие вопросы, связанные с клиническим применением ГАГ при СД, остаются нерешенными. Прежде всего неясно, способна ли терапия препаратами ГАГ приостановить или хотя бы замедлить темпы прогрессирования нефропатии у больных СД. Ответ на этот вопрос может быть получен лишь в клинических исследованиях с достаточно длительным сроком наблюдения, в которых бы оценивали не только суррогатные точки (ЭАМ, протеинурию и т. д.), но и клинические исходы (частоту развития почечной недостаточности, смертность от уремии и др.). Окончательно не решен вопрос о длительности и схемах лечения. В проведенных исследованиях длительность терапии не превышала 6 мес, что не позволяет оценить долгосрочные эффекты лечения. Наконец, не определены возможности и преимущества сочетания ГАГ с другими нефропро- тективными препаратами (ингибиторами АПФ, блокаторами рецепторов ангиотензина II, дезагре- гантами). Последнее представляется весьма интересным в свете недавно полученных данных о том, что ангиотензин II ингибирует продукцию гепарансульфата мезангиальными клетками [74], а эналаприл нормализует синтез гепарансульфата в клубочках и предотвращает потерю гепарансульфата с мочой [58]. Решение перечисленных вопросов — предмет будущих исследований.
Список литературы
1. Бар каган 3. С., Цывкина Л. П., Момот А. П., Шилова А. Н. // Клин, фармакол. тер. — 2002. — Т. 11, № 1. — С. 78-83.
2. Бондарь И. А., Климонтов В. В., Пауль Г. А. и др. // Пробл. эндокринол. — 2001. — Т. 47, № 4. — С. 35-38.
3. Павлов С. Б. // Клин. мед. — 1998. — Т. 76, № 2. — С. 41-43.
4. Петеркова В. А., Мишина И. И., Щербачева Л. И., Князева А. П. // Сахарный диабет. — 1999. — № 3. — С. 31-33.
5. Чугунова Л. А., Шестакова М. В., Шамхалова М. Ш. // Са¬харный диабет. — 1999. — № 3. — С. 34-35.
6. Bollineni J. S., Alluru I., Reddi A. S. // Cun-. Eye Res. — 1997. - Vol. 16, N 2. - P. 127-130.
7. Borrebaek J., Prydz K, Fjeldstad K. et al. // Diabetologia. — 2001. - Vol. 44. N 4. - P. 488-494.
8. Buchanan M. R., Liao P., Smith L. J., Ofosu F. A. // Thromb. Res. - 1994. - Vol. 74, N 5. - P. 463-475.
9. Bvers S., Rozaklis T., Brumfield L. K. et al. // Mol. Genet. Metab. - 1998. - Vol. 65, N 4. - P. 282-290.
10. Cadaval R., Kohlman O., Michelacci Y. // Glycobiology. —2000- Vol. 10, N 2. - P. 185-192.
11. Caenazzo C., Garbisa S., Ceol M. et al. // Nephrol. Dial. Transplant. — 1995. — Vol. 10, N 2. — P. 175-184.
12. Ceol M., Nerlich A., Baggio B. et al. // Lab. Invest. — 1996. — Vol. 74, N 2. - P. 484-495.
13. Chana R. S., Wheeler D. C., Thomas G. J. et al. // Nephrol. Dial. Transplant. — 2000. — Vol. 15, N 2. — P. 167-172.
14. Chen H. C., Guh J. Y., Shin S. J. et al. // Kidney. Int. —2001- Vol. 78. - Suppl. - P. S124-S127.
15. Condorelli M., Chiariello M., Dagianti A. et al. // J. Am. Coll. Cardiol. - 1994. - Vol. 23, N 1. - P. 27-34.
16. Cooper M. E. // Diabetologia. - 2001. — Vol. 44, N 11. - P. 1957-1972.
17. Couchman J. R., Abrahamson D. R., McCarthy K. J. // Kidney Int. - 1993. - Vol. 43, N 1. - P. 79-84.
18. Davies M., Thomas G. J., Shewring L. D., Mason R. M. // J. Am. Soc. Nephrol. — 1992. — Vol. 2, N 10. — Suppl. — P. S88-S94.
19. Davies M., Kastner S., Thomas G. J. // Kidney Int. — 1996. — Vol. 49. - Suppl. 54. - P. S55-S60.
20. De Muro P., Faedda R., Formato M. et al. // Clin. Exp. Rheu¬matol. - 2001. - Vol. 19, N 2. - P. 125-130.
21. Deckert T, Feltd-Rasmussen B., Kofoed-Enevolsen A. // Diabe¬tologia. - 1989. - Vol. 32, N 3. - P. 219-226.
22. Di Mario U., Pugliese G. // Diabetologia. — 2001. — Vol. 44, N 6. - P. 674-692.
23. Edge A. S. B., Spiro R. G. // Diabetologia. — 2000. — Vol. 43, N 8. - P. 1056-1059.
24. Fujita H., Narita T, Meguro H. et al. // Ren. Fail. — 1999. — Vol. 21, N 6. - P. 659-664.
25. Gaddi A., Galetti C., Illuminati B., Nascetti S. // J. Int. Med. Res. - 1996. - Vol. 24, N 5. - P. 389-406.
26. Gambaro G., Cicerello E., Mastrosimone S. et al. // Metabo¬lism. - 1989. - Vol. 38, N 5. - P. 419-420.
27. Gambaro G., Cavazzana A. O., Luzi P. et al. // Kidney Int. —1992- Vol. 42, N 2. - P. 285-291.
28. Gambaro G., Venturini A. P., Noonan D. M. et al. // Kidney Int. - 1994. - Vol. 46, N 3. - P. 797-806.
29. Gambaro G., D’Angelo A., Del Prete D. et al. // Am. J. Neph¬rol. - 1999. - Vol. 19, N 4. - P. 530-534.
30. Gerlach A. T., Pickworth К. K., Seth S. K. et al. // Pharmaco¬therapy. - 2000. - Vol. 20, N 7. - P. 771-775.
31. Goode N. P., Shires M., Crellin D. M. et al. // Diabetologia. — 1995. - Vol. 38, N 12. - P. 1455-1465.
32. Groggel G. C, Hughes M. L. // Nephron. — 1995. — Vol. 71, N 2. - P. 197-202.
33. Hadad S. J., Michelacci Y. M., Schor N. // Biocltim. Biophys. Acta. - 1996. - Vol 21, N 1. - P. 18-28.
34. Hansen C., Irmscher A. K, Kuhlemann K. et al. // Horm. Me¬tab. Res. - 1995. — Vol. 27, N 12. — P. 555-558.
35. Hansen P. M., Chowdhury T., Deckert T. et al. // Diabetes. — 1997. - Vol. 46, N 10. - P. 1658-1659.
36. lacoviello L., D’Adamo M. C., Pawlak K. et al. // Thromb. Haemostas. — 1996. — Vol. 76, N 6. — P. 1102-1107.
37. Ishikawa Y.. Kitamura M. // Kidney Int. — 1999. — Vol. 56, N 3. - P. 954-963.
38. Jadresic L. P., Filler G., Barratt T. M. // Kidney Int. — 1991.Vol. 40, N 2. - P. 280-284.
39. Jensen T. // Diabetes. — 1997. — Vol. 46. — Suppl. 2. — P. S98-S100.
40. Kahaly G., Hansen C., Otto E. et al. // Exp. Clin. Endocrinol. Diabetes. - 1997. - Vol. 105, N 3. - P. 145-151.
41. Kallunki P., Eddy R. L., Byers M. G. et al. // Genomics. —1991- Vol. 11, N 2. - P. 389-396.
42. Klimontov V., Bondar I., Paul G., Pupvshev A. // Diabetologia.2001. - Vol. 44. — Suppl. 1. - P. A269.
43. Leblanc M., Roy L. E, Legault L. et al. // Nephron. — 1994.Vol. 68, N 1. - P. 133-137.
44. Mahadevan P., Larkins R. G., Fraser J. R. et al. // Diabetolo¬gia. - 1995. - Vol. 38, N 3. - P. 298-305.
45. Makino H., Ikeda S., Haramoto T, Ota Z. // Nephron. —1991- Vol. 61, N 4. - P. 415-421.
46. Marshall S. M., Hansen К. И<, Osterby R. et al. // Am. J. Physiol. - 1996. - Vol. 271, N 2, Pt 1. - P. E326-E332.
47. McAuliffe A. V., Fisher E. J., McLennan S. V. et al. // Diabct. Med. - 1996. - Vol. 13, N 8. - P. 758-763.
48. McCarthy K. J., Abrahamson D. R., Bynum K. R. et al. // Kid¬ney Int. - 2000. - Vol. 58, N 6. - P. 2592-2593.
49. Myrup B., Hansen P. M., Jensen T. et al. // Lancet. — 1995. — N 345. - P. 421-422.
50. Myrup B., Jensen T., Gram J. et al. // Diabetes Care. — 1997.Vol. 20, N 10. - P. 1615-1619.
51. Olgemoller B., Schwaabe S., Gerbitz K. D., Schleicher E. D. // Diabetologia. — 1992. — Vol. 35, N 2. — P. 183-186.
52. Oshima Y., Isogai S., Mogami K. et al. // Diabetes Res. Clin. Pract. - 1994. - Vol. 25, N 2. - P. 83-89.
53. Osrerby R. // Diabetologia. — 1992. — Vol. 35, N 7. — Р. 803-812.
54. Oster J. R., Singer I., Fishman L. M. // Am. J. Med. — 1995.Vol. 98, N 6. - P. 575-586.
55. Oturai P. S., Rasch R., Hasselager E. et al. // APMIS. — 1996.Vol. 104, N 4. - P. 259-264.
56. Parthasarathy N., Spiro R. G. // Diabetes. — 1982. — Vol.31, N 8, Pt 1. - P. 738-741.
57. Rajtar G., Matvhi E., de Gaetano G., Cerletti C. // Biochem. Pharmacol. - 1993. - Vol. 46, N 5. - P. 958-960.
58. Reddi A. S., Ramamurthi R., Miller M. et al. // Biochem. Med. Metab. Biol. - 1991. - Vol. 45, N 1. - P. 119-131.
59. Rohrbach D. H., Wagner C. W., Star К L. et al. // J. Biol. Chem. - 1983. - Vol. 258, N 19. - P. 11672-11677.
60. Shield J. P., Carradus M., Stone J. E. et al. // Ann. Clin. Bio¬chem. - 1995. - Vol. 32, Pt 6. - P. 557-560.
61. Silbiger S., Crowley S., Shan Z. et al. 11 Kidney Int. — 1993.Vol. 43, N 4. - P. 853-864.
62. Sindelka G., Skrha J., Stibor V., Stolba P. // Sbom. Lek. —1991- Vol. 94, N 1. - P. 77-80.
63. Skrha J., Perusicova J., Pont’uch P., Oksa A. // Diabetes Res. Clin. Pract. - 1997. - Vol. 38, N 1. - P. 25-31.
64. Sorrenti G., Grimaldi M., Canova N. et al. // J. Int. Med. Res.1997. - Vol. 25, N 2. - P. 81-86.
65. Stefanidis I., Heintz B., Stocker G. et al. // J. Am. Soc. Neph¬rol. - 1996. - Vol. 7, N 12. - P. 2670-2676.
66. Tamsma J. T, van der Woude F. J., Lemkes H. H. // Nephrol. Dial. Transplant. — 1996. — Vol. 11, N 1. — P. 182-185.
67. Tencer J., Torffvit O., Grubb A. et al. // Nephrol. Dial. Trans¬plant. - 1997. - Vol. 12, N 6. - P. 1161-1166.
68. Thomas G. J., Jenner L., Mason R. M., Davies M. // Arch. Bi¬ochem. - 1990. - Vol. 278, N 1. - P. 11-20.
69. Thomas G. J., Mason R. M., Davies M. // Biochem. J. — 1991. - Vol. 277. Pt 1. - P. 81—88.
70. Torffvit O., Rippe B. // Nephron. — 1999. — Vol. 83, N 4. — P. 301-307.
71. Van den Bom J., van Kraats A. A., Bakker M. A. et al. // Dia¬betologia. — 1995. — Vol. 38, N 10. — P 1169-1175.
72. Van der Fiji J. W., van der Woude F. J., Geelhoed-Duijvestyn P. H. et al. // J. Am. Soc. Nephrol. — 1997. — Vol. 8, N 3. — P. 456-462.
73. Van der Pijl J. W., Daha M. R., van den Bom J. et al. // Dia¬betologia. - 1998. - Vol. 41, N 7. - P. 791-798.
74. Van Det N. F., Tamsma J. T., van den Born J. et al. // J. Am. Soc. Nephrol. — 1996. — Vol. 7, N 7. — P. 1015-1023.
75. Van Det N. F., van den Bom J., Tamsma J. T. et al. // Kidney Int. - 1996. - Vol. 49, N 4. - P. 1079-1089.
76. Velussi M., Cemigoi A. M.. Dapas F., De Monte A. // Diabet. Nutr. Metab. — 1996. — Vol. 9, N 1. — P. 53-54.
77. Vernier R. L., Steffes M. W., Sisson-Ross S., Mauer S. M. // Kidney Int. - 1992. — Vol. 41, N 4. — P. 1070-1080.
78. Wang A., Fan M. K, Templeton D. M. // J. Cell. Physiol. —1991- Vol. 159, N 2. - P. 295-310.
79. Weigert C., Brodbeck K., Haring H. U. et al. // Kidney Int. — 2001. - Vol. 60, N 3. - P. 935-943.
80. Yang C., Wu T, Huang C. // Am. J. Nephrol. - 1998. - Vol. 18, N 5. - P. 384-390.
81. Yard B. A., Kahlert S., Engelleiter R. et al. // Exp. Nephrol. — 2001. — Vol. 9, N 3. — P. 214-222.
82. Yokoyama H., Deckert T. // Diabet. Med. — 1996. — Vol. 13, N 4. - P. 313-320.
83. Yokoyama H., Hoyer P. E., Hansen P. M. et al. // Diabetes. —1997- Vol. 46, N 11. — P. 1875-1880.
Об авторах
И. А. БондарьНовосибирская государственная медицинская академия
Россия
В. В. Климонтов
Новосибирская государственная медицинская академия
Россия
Рецензия
Для цитирования:
Бондарь И.А., Климонтов В.В. Гликозаминогликаны и диабетическая нефропатия. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):29-34. https://doi.org/10.14341/probl11392
For citation:
Bondar' I.A., Klimontov V.V. Glycosaminoglycans and diabetic nephropathy. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):29-34. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11392

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).