Preview

Проблемы Эндокринологии

Расширенный поиск

Состояние вазопрессин-, окситоцин- и кортиколиберинсинтезирующих структур гипоталамуса при экспериментальном сахарном диабете у крыс различного пола

https://doi.org/10.14341/probl11909

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Эндокринный статус поджелудочной железы и нейросекреторных ядер гипоталамуса изучали радиоиммунологическим, иммуноцитохимическим, морфометрическим и гистохимическим методами у крыс линии Вистар обоего пола с экспериментальным сахарным диабетом. Развитие сахарного диабета характеризовалось разрушением бета-клеток и снижением концентрации инсулина в этих клетках и крови, повышением уровня глюкагона и соматостатина в альфа - и дельта-клетках соответственно, а также ростом концентрации этих веществ в периферической крови. Эти изменения сопровождались активацией вазопрессин -, окситоцин-и кортиколиберин-синтезирующих нейронов паравентрикулярного и супраоптического ядер гипоталамуса, о чем свидетельствуют морфометрические данные и повышение концентрации вазопрессина и кортиколиберина в крови и уровня окситоцина в гипоталамусе. Установлено, что экспериментальный сахарный диабет характеризуется активацией гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой системы. Показаны функциональные различия вклада вазопрессин - и окситоцин-синтезирующих нейронов ядер гипоталамуса в патогенез заболевания, а также их полоспецифические реакции.

Для цитирования:


Колесник Ю.М., Орестенко Ю.Н., Абрамов А.В. Состояние вазопрессин-, окситоцин- и кортиколиберинсинтезирующих структур гипоталамуса при экспериментальном сахарном диабете у крыс различного пола. Проблемы Эндокринологии. 1993;39(1):45-48. https://doi.org/10.14341/probl11909

For citation:


Kolesnik Yu.M., Orestenko Yu.N., Abramov A.V. Vasopressin, oxitocin, and corticoliberin-synthesizing hypothalamic structures in rats of both sexes with induced diabetes mellitus. Problems of Endocrinology. 1993;39(1):45-48. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11909

Применение современных методов исследования позволило установить, что основным местом синтеза кортикотропин-рилизинг-гормона (КРГ) является медиальное мелкоклеточное (ММ) субъядро паравентрикулярного ядра гипоталамуса (ПВЯГ), на долю которого приходится более 80 % всей продукции гормона [5]. Вазопрессинсинтезирую- щие структуры представлены прежде всего супраоптическим ядром гипоталамуса (СОЯГ) и латеральным крупноклеточным (ЛК) субъядром ПВЯГ, а окситоцинсинтезирующие — передним и медиальным крупноклеточными (ПК и МК соответственно) субъядрами ПВЯГ, а также нейросекреторными клетками СОЯГ [18, 19]. В последнее время появляется все больше работ, показывающих важную роль вазопрессина, окситоцина и КРГ в регуляции углеводного обмена, секреции инсулина, глюкагона и соматостатина [2, 8, 13, 21], пищевого поведения [6, 17], а следовательно, в патогенезе сахарного диабета. Исходя из этого, целью настоящего исследования было комплексное изучение состояния вазопрессин-, окситоцин- и КРГ-синтезирующих структур гипоталамуса и эндокринной части поджелудочной железы при экспериментальном сахарном диабете.

Материалы и методы

Исследование проведено на 60 крысах линии Вистар обоего пола, находившихся на стандартном пищевом рационе в условиях естественной оснащенности. Все животные были разделены на 2 экспериментальные группы: 1-я — интактные животные (контроль), 2-я — животные, у которых сахарный диабет моделировали внутрибрюшинным введением стреп- тозотоцина в дозе 50 мг/кг или подкожным введением суспензии букарбана в дозе 6 г/кг (решение о выдаче авторского свидетельства от 23.10.91 по заявке № 4910365/14 от 12.02.91).

Для характеристики состояния эндокринной части поджелудочной железы в крови радиоиммунологическим методом определяли инсулин (РИО-ИНС-|3|1, СССР), глюкагон (Biodata, Италия) и соматостатин (Incstar, США), а на гистологических срезах толщиной 4 мкм проводили количественное иммуноцитохимическое определение этих же гормонов наборами фирмы «Amersham» (Англия) в (3, а и А-клетках островков Лангерганса методом непрямой иммунофлюоресценции. Концентрацию глюкозы в периферической крови определяли ортотолуидиновым методом и кроме того проводили тест на толерантность к глюкозе (глюкоза 4 г/кг внутрибрюшинно).

О состоянии КРГ- и вазопрессинсинтезирующих нейронов гипоталамуса судили по морфометрическим (объемы клеток, их цитоплазмы, ядер и ядрышек), гистохимическим (содержание РНК, определяемое цитофотометрически на срезах, окрашенных по Эйнарсону галлоцианин-хромо- выми квасцами) показателям, а также по концентрации этих гормонов в периферической крови, определяемой радиоиммунологическим методом с помощью наборов «Peninsula laboratories Inc.» (США) и «Buhlmann laboratories» (Швейцария). Кроме того, в периферической крови определяли концентрацию АКТГ (CIS International», Франция) и кортизола («Стерон-К-|3|1-М», СССР). Для характеристики оксито- цинсинтезирующих нейронов дополнительно проводили иммуноцитохимическое выявление окситоцина в нейронах ПВЯГ и СОЯГ, а также в срединном возвышении гипоталамуса на срезах толщиной 10 мкм методом непрямой иммунофлюоресценции. Для взятия крови, извлечения мозга и поджелудочных желез животных через 2 и 5 нед после введения диабетогенных препаратов декапитировали, после чего органы

Концентрация глюкозы и гормонов поджелудочной железы крыс в периферической крови и эндокринных клетках островков Лангерганса (М±т)

Серия экспериментов

Глюкоза, ммоль/л

Инсулин

Глюкагон

Соматостатин

сыворотка, мкЕД/мл

клетки, усл. мкЕД

плазма, пг/мл

а-клетки, усл. мкЕД

плазма, пг/мл

Д-клетки, усл. мкЕД

Контроль

4,62±0,24

34,7±3,6

1560,7+21,5

67,8+3,0

1284,4+11,5

18,5+1,5

789,6+19,3

4,90+0,11

31,5+4,7

1585,7+16,7

75,8+14,3

1174,2+12,1

700,6+12,1

Диабет 2 нед

6,36+0,34**

15,4+4,2**

727,9+16,2***

66,8+9,9

1057,1 + 11,8***

19,5+1,9

1068,9+17,1***

6,09+0,52*

13,8+3,7**

879,2+16,5***

122,4+21,3

1282,4+14,7**

979,5+16,8***

Диабет 5 нед

8,78+0,59***

11,3+3,8**

618,7±16,8***

90,6+7,6*

1485,1 + 13,3***

24,4+2,1*

1075,0+20,6***

7,59+0,88**

12,3+1,1**

758,5+12,9***

150,2+22,3*

1390,4 + 11,6***

—.

1135,0+19,3***

Примечание. В числителе — показатели у самцов, в знаменателе — у самок. Концентрация соматостатина у самок не определялась. Одна звездочка — р<0,05, две — р<0,01, три —‘ р<0,001.

фиксировали в жидкости Буэна или Карнуа. Перед забоем животные на протяжении 16 ч не получали пищу.

Концентрацию гормонов в крови определяли на бета-счетчике, их содержание в клетках и срединном возвышении на цитофлюориметре «Люмам-И2» (объектив Х40, фотометрируе- мая площадь 125 мкм, длина волны 490 нм, характерная для FITC). РНК в нейронах и их ядрышках на срезах толщиной 4 мкм определяли на микроскопе «Люмам-И2» фотометрической колонкой ФМЭЛ-1А в монохроматическом свете (длина волны 550 нм, объектив Х40, фотометрируемая площадь 125 мкм для клетки и 5 мкм для ядрышка). Содержание гормонов и РНК выражали в условных микроединицах. Все данные подвергали статистической обработке на ПЭВМ «Atari 130 ХЕ» с использованием /-критерия Стью- дента.

Результаты и их обсуждение

Следует отметить, что изменения изучаемых показателей имели примерно одинаковую направленность при обеих моделях сахарного диабета. В поджелудочной железе выявлялись изменения, характерные для заболевания. Концентрация глюкозы увеличивалась (табл. 1), изменялся тест толерантности по диабетическому типу (через 2 ч после введения глюкозы уровень гликемии был достоверно выше исходного, а в контроле — ниже). Концентрация инсулина в крови и его содержание в р-клетках снижались (см. табл. 1), отмечалась деструкция части островков, особенно к концу исследования. Концентрация глюкагона в плазме увеличивалась. Содержание же его в а-клет- ках вначале снижалось, что, по-видимому, связано с его усиленным выведением, а затем значительно нарастало, причем в большей степени у самок, отражая процесс активации биосинтеза и секреции глюкагона. Концентрация соматостатина в плазме увеличивалась, так же как и его содержание в Д-клетках.

В этих условиях наблюдалась выраженная реакция гипоталамических структур. В СОЯГ через 2 нед по данным морфогистохимических исследований наблюдалась значительная активация нейросекреторных клеток, однако через 5 нед происходило некоторое уменьшение морфометрических показателей при одновременном нарастании количества РНК по сравнению с первым сроком (табл. 2). В ЛК-субъядре ПВЯГ изучаемые показатели увеличивались, постигая максимума к концу исследования (см. табл. 2). Таким образом, в реакции вазопрессинсинтезирующих нейросекреторных клеток, представленных СОЯГ и ЛК-субъ- ядром ПВЯГ, отмечались определенные различия, связанные, по-видимому, с особенностями их афферентных и эфферентных проекций. Известно, что СОЯГ и ПВЯГ, развиваясь из единого преоп- тического ядра [3], сохраняют некоторую общность афферентной иннервации [19]. Эфферентные же проекции их различны. Так, нейросекрет из СОЯГ по аксонам поступает во внутреннюю зону срединного возвышения и далее через нейрогипофиз — в общий кровоток [19]. Нейросекрет же ПВЯГ поступает преимущественно в наружную зону, а далее через портальную капиллярную сеть в аденогипофиз [19], оказывая стимулирующее влияние на секрецию АКТГ и соответственно глюкокортикоидов [9]. В наших исследованиях максимальная активация ЛК происходила к концу исследования, когда отмечалось увеличение в крови концентрации АКТГ и кортизола, что соответствует данным литературы о ведущей роли вазопрессина ПВЯГ в контроле аденогипофизарного гормонопоэза [9]. Это предположение согласуется с данными о том, что разрушение ПВЯГ приводит лишь к 10 % снижению концентрации вазопрессина в портальном кровотоке [6], что подчеркивает различие вазопрессинсин- тезирующей системы ПВЯГ и СОЯГ. Следует отметить, что активация вазопрессинсинтезирующей системы гипоталамуса подтверждалась увеличением в периферической крови концентрации вазопрессина (8,80+1,28 пг/мл против 5,53+ +0,49 пг/мл в контроле; р<0,05). Таким образом, наблюдалась прямая корреляция между морфогистохимическими показателями и уровнем гормона в плазме.

Со стороны окситоцинсинтезирующих нейронов ПК и МК отмечены признаки их активации по данным морфогистохимических исследований (см. табл. 2). Концентрация иммунореактивного окситоцина в нейронах ПВЯГ и ОСЯГ у самцов вначале увеличивалась, а именно: 1006,0+23,3 мкЕД против 737,2+21,7 мкЕД в ПВЯГ (р<0,001) и 919,4+20,0 мкЕД против 706,8+27,2 мкЕД в СОЯГ (р<0,001), а затем несколько снижалась (860,1 ±33,9 мкЕД в ПВЯГ, 619,5+20,1 мкЕД в СОЯГ). При этом концентрация гормона в срединном возвышении вначале несколько снижалась (1194,0+23,8 мкЕД против 1300,8+27,8 мкЕД в контроле; р<0,001), а затем увеличивалась (1644,4+33,5 мкЕД против 1300,8+27,7 мкЕД в контроле; р<0,001), что свидетельствовало об активации биосинтеза и секреции гормона. У са-

Морфогистохимические показатели нейросекреторных клеток гипоталамуса крыс (М±т)

Ядра гипоталамуса

Контроль

Диабет (2 нед)

Диабет (5 нед)

самцы

самки

самцы

самки

самцы

самки

к

683,5+24,9

789,3+28,7

1129,6+53,8*

11'435,^+42,3*

919,2+24,7*

880,7+28,1 *

1^i^^,(^=t34,3

1376,0+26,5

1658,6+9,4*

1593,9+ 16,2*

СОЯГ

я

9,55+0,53

9,62±0,43

13,41 ±0,30*

14,98+0,62*

12,51 ±0,34*

12,93+0,34*

104,6:+ 1,87

92,3+1,08

136,2+2)17*

138,4 ±2,19*

111,8+0,61 *

173,7 + 1,70*

к

595,7=+18,2

627;6±14,7

797,5+28,2*

719,4± 18,8*

828,8+21,0*

921,4 +27,4*

1167,3=Ь25,4

1205,4±19,0

1152,9+18,9*

1299,8+ 13,5*

1147,7+ 11,8*

лк

я

5,34+0,38

6,38+0,25

7,11 ' ±0,47*

12,42+0,38*

12,70+0,31 *

14,57+0,33*

76,1 +3,4

98,1 + 1,39

107,3+2,71 *

121,11 ±1,79*

142,0+ 1,02*

124,9 ± 1,27*

к

650,2+24,1

738,1 +34,9

678,5+26,9

725,4+41,6

827,9±30,3*

959,2+41,5*

1057^,^7+24,4

138(^,<5=fc31,0

1361,1 +22,8

1172,9+18,2*

1442,2+23,6

ПК

я

8,96+0,67

7,00+0,55

5,37+0,45*

9,95+0,91*

10,09±0,57

11,60+0,73*

84,7+ 1,55

95,8+ 1,82

86,8+1,99

91,3+ 1,59

76Дт^0,^6*

128,5472,22*

к

58^,^^31.6

750,9+ 18,5

824,5+32,1*

647,4+19,9*

806,5+26,9*

95(0.5^Ь24,3*

1Ж,7±39Л

1126,1 + 18.8

1242,9+33,3*

1125,8+ 13,5

1340,9+33,1

1535,4 + 15,2*

мк

я

8,01+0,52

5,17+0,24

8,33+0,67

12,99±0,32*

11,99+0,34*

13,75+0,25*

98,8+2,63

88,7 + 1,36

96,4+2,94

96,3+1,49*

133,19+2,13*

164,8+ 1,94*

к

338,2+10,5

402,4+ 11,57

405,9+ 13,3*

425,5± 18,5

433,2 ± 12,2*

472,9+15,7*

738,4 +13,15

940,4+ 16,34

778,4+ 15,1

743,7+12,9*

1035,,+13,0*

858,5+15,6*

мм

я

2,94+0,25

2,89+0,18

3,633:0),34*

4,41 ±0,33*

4,75±0,4'1*

7,95+0,47*

75,0+1,13

65,4+0,87

68,9+1,59*

70,8 + 1,40*

91,1 ±1,07*

81,8+1,58*

Примечание. В числителе — объемы клеток (К) и ядрышек (Я), в знаменателе — содержание РНК (в уел. мкЕД). Звездочка — р<0,01 по сравнению с контролем.

мок изменения концентрации окситоцина имели следующую динамику: вначале происходило ее снижение в ПВЯГ (639,77+29,0 мкЕД против 765,2+23,1 мкЕД в контроле; р<0,01) и срединном возвышении (1559,9+23,1 мкЕД против 1699,9^+35,9 мкЕД в контроле; р<0,01), а затем увеличение (1091,6+22,56 мкЕД в ПВЯГ и 1^11,9^7+31,9 мкЕД в срединном возвышении). В СОЯГ концентрация окситоцина у самок была снижена (572,5+20,5 мкЕД через 2 нед и 656,5+ +25,0 мкЕД через 5 нед против 749,3+ + 17,2 мкЕД в контроле; р<00,001 и р<0,01 соответственно) . Следует также отметить более высокую концентрацию окситоцина в срединном возвышении у самок.

В ММ-субъядре ПВЯГ отмечалась гипертрофия нейронов и их ядрышек, а изменение содержания РНК, как и градиент увеличения морфометрических показателей, имели свою специфику в зависимости от пола животных (см. табл. 2). Концентрация КРГ в плазме возрастала (21,51 + +0,49 пг/мл против 19,81 ±0,62 пг/мл в контроле; р<0,05), прямо коррелируя с морфометрическими показателями, как и концентрация АКТГ (144,6+ +32,8 пг/мл против 58,9+7,6 пг/мл в контроле; р<0,05) и кортизола (14,86+0,88 пг/мл против 9,95+1,17 пг/мл в контроле; р<0,01). Следовательно, в условиях развития экспериментального сахарного диабета имела место активация гипота- ламо-гипофизарно-надпочечниковой системы (ГГНС). Повышение уровня в крови глюкокортикоидов при диабете отмечено и другими авторами как в экспериментальных, так и в клинических условиях [10, 20].

Выявленные нами изменения в нейросекреторной системе гипоталамуса имеют определенное биологическое значение. Так, рядом авторов отмечено повышение концентрации вазопрессина в крови больных сахарным диабетом [16], усиление биосинтеза нонапептидных гормонов при экспериментальном диабете [7], что связывают с активацией гипоталамо-нейрогипофизарной системы в этих условиях [12]. Известно, что вазопрессия обладает способностью стимулировать синтез и секрецию инсулина при концентрации глюкозы более 7 ммоль/л [8], что наблюдалось и в наших исследованиях. Этот же эффект характерен и для окситоцина, который, помимо прочего, влияет на секреторную активность а-клеток и стимулирует гликолиз в печени [2, 21]. Кроме того, вазопрессин и окситоцин дают гипергликемический эффект [2], что имеет значение, так как в условиях дефицита инсулина клетки испытывают недостаток глюкозы. Но это лишь один патогенетический механизм, связанный с ГГНС. Известны и другие, не менее важные механизмы, связанные с КРГ, секреция которого зависит от концентрации глюкозы [15]. КРГ стимулирует секрецию гипоталамического соматостатина [14], тем самым способствуя снижению уровня СТГ, являющегося диабетогенным фактором, а также инсулина, опосредуя свое действие через п. vagus [11, 15]. Кроме того, активация ММ и соответственно усиление синтеза КРГ и повышение его концентрации в гипоталамусе оказывают влияние на пищевой центр, расположенный вблизи ПВЯГ, что приводит к снижению потребления пищи и уровня гли-

кемии [6, 17]. На важность этого механизма указывает И. Г. Акмаев [1]. Таким образом, КРГ в условиях экспериментального сахарного диабета, так же как и вазопрессин и окситоцин, дает ряд эффектов, реализуемых как на уровне гипоталамуса и гипофиза, так и на периферии, что подчеркивает его важное значение в патогенезе заболевания. Кроме того, выявленная специфика состояния изучаемых нами структур гипоталамуса у самцов и самок хорошо согласуется с данными литературы [1, 4] о том, что ПВЯГ принадлежит к сексзависимым структурам мозга, внося свою специфику в регуляцию углеводного обмена в зависимости от пола.

Выводы

  1. При экспериментальном сахарном диабете наблюдается тесная взаимосвязь состояния эндокринной части поджелудочной железы и нейросекреторных ядер гипоталамуса, синтезирующих вазопрессин, окситоцин и кортиколиберин.
  2. Активация вазопрессин-, кортиколиберин- и окситоцинсинтезирующих нейронов субъядер ПВЯГ и СОЯГ по данным морфогистохимических исследований сопровождается увеличением в крови концентрации вазопрессина, кортиколибе- рина, АКТГ и кортизола, а также окситоцина в срединном возвышении гипоталамуса.

Список литературы

1. Акмаев И. Г. // Пробл. эндокринол.— 1990.— Т. 36, №4.— С. 12—18.

2. Папсуевич О. С., Чипенс Г. И., Михайлова С. В. Нейрогипофизарные гормоны.— Рига, 1986.

3. Поленов А. Л. Гипоталамическая нейросекреция.— Л., 1968.

4. Резников А. Г., Акмаев И. Г., Фиделина О. Ф. и др. // Пробл. эндокринол.— 1990.— Т. 36, № 3.— С. 57—61.

5. Antoni F. A., Fink G., Shevard W. J. // J. Endocr.— 1990.— Vol. 125, N 2,— P. 175—183.

6. Arose K.. Shargill N. S., Bray G. A. // Amer. J. Physiol.— 1989 — Vol. 256, N 3,— P. R751—R756.

7. Fernstrom J. D., Fernstrom M. H., Kwok R. P. S. // Ibid.— 1990 — Vol. 258, N 4, Pt 7,— P. E661—E666.

8. Gao Z. Y., Drews G., Menguin M. el al. //J. biol. Chem.— 1990,— Vol. 265, N 26,— P. 15 724—15 730.

9. Gibbs D. M. // Psychoneuroendocrinology.— 1986.— Vol. 11,— P. 131 — 139.

10. Giullaume-Gentil C., Rohner—Jeanrenaud F., Jeanre— naud B. // Diabetologia.— 1989.— Vol. 32, N 7.— P. 494A.

11. Landgraf R., Malkinson T., Horn T. et al. // Amer. J. Physiol.— 1990,— Vol. 258, N 1, Pt 2,— P. R155—R159.

12. Loesch A., Lincoln J., Burnstock G. // Acta neuropath. (Berl.).— 1988,— Vol. 75, N 4,— P. 391—401.

13. Mac Leod R. M., Judd A. M., Jarvis W. D., Login I. S. // Acta endocr. (Kbh.).— 1986.— Suppl. 276.— P. 9—20.

14. Mitsugi N.. Arita J., Kimura F. // Neuroendocrinology.—1990 —Vol. 61, N 1,—P. 93—96.

15. Rohner-Jeanrenaud F., Jeanrenaud B. // Ibid.— Vol. 52, N 1,— P. 52—56.

16. Saito T., Ishicawa S. E., Okado K., Kuzuja T. // Recent Progress Posterior Pituitary Hormones.— Amsterdam, 1983. p. 387—394.

17. Shimizu H., Bray G. A. // Neurosci. Lett.— 1989.— Vol. 103, N 1,— P. 74—80.

18. Silverman A. J., Zimmerman E. A. // Ann. Rev. Neurosci.— 1983,— Vol. 6,— P. 357—380.

19. Swanson L. W., Sawchenko P. E. // Ibid.— P. 269—324.

20. Tsigos C., Crosby S., Gybson S. et al. // Diabetologia.— 1989,— Vol. 32, N 7,— P. 550A.

21. Widmaier E. P., Shah P. R., Lee G. // Regul. Peptid.—1991 — Vol. 34, N 3,— P. 235—249.


Об авторах

Ю. М. Колесник

Запорожский медицинскй институт Минздрава Украины


Украина


Ю. Н. Орестенко

Запорожский медицинскй институт Минздрава Украины


Украина


А. В. Абрамов

Запорожский медицинскй институт Минздрава Украины


Украина


Рецензия

Для цитирования:


Колесник Ю.М., Орестенко Ю.Н., Абрамов А.В. Состояние вазопрессин-, окситоцин- и кортиколиберинсинтезирующих структур гипоталамуса при экспериментальном сахарном диабете у крыс различного пола. Проблемы Эндокринологии. 1993;39(1):45-48. https://doi.org/10.14341/probl11909

For citation:


Kolesnik Yu.M., Orestenko Yu.N., Abramov A.V. Vasopressin, oxitocin, and corticoliberin-synthesizing hypothalamic structures in rats of both sexes with induced diabetes mellitus. Problems of Endocrinology. 1993;39(1):45-48. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11909

Просмотров: 3039


ISSN 0375-9660 (Print)
ISSN 2308-1430 (Online)