Молекулярно-генетические аномалии в кортикотропных опухолях гипофиза: фундаментальные исследования и перспективы использования в клинической практике

ВВЕДЕНИЕ

За последние годы был достигнут значительный прогресс в понимании молекулярно-биологических аномалий в кортикотропиномах и других опухолях гипофиза. К ним относят генетические и эпигенетические факторы, драйверные соматические мутации, вариабельность количества нуклеотидов в составе хромосом, метилирование генов, регуляции микроРНК и факторов транскрипции.

Болезнь Иценко-Кушига — это тяжелое многосимптомное заболевание гипоталамо-гипофизарного происхождения, вызванное АКТГ-секретирующей опухолью гипофиза (кортикотропиномой), которая стимулирует избыточную секрецию гормонов коры надпочечников. Среди всех опухолей гипофиза кортикотропиномы составляют 10–15%. Методом выбора лечения является нейрохирургическое удаление опухоли. Кортикотропиномы — это одна из наиболее часто встречаемых опухолей гипофиза в операционном материале. По данным отдела фундаментальной патоморфологии ГНЦ НМИЦ эндокринологии, на долю АКТГ-секретирующих опухолей гипофиза приходится до 39,4% случаев у взрослых и 62,5% у детей. Это позволяет использовать как образцы нефиксированной формалином ткани опухоли, так и из парафиновых блоков в совокупности с исследованием крови для выполнения молекулярно-генетического тестирования.

Использование знаний в отношении генетических аномалий у пациентов с кортикотропиномами начинает входить в клиническую практику. На сегодняшний день наиболее изучены герминальные мутации в опухолях гипофиза, развивающиеся как наследственные заболевания в составе синдромов (различные варианты синдрома множественных эндокринных неоплазий (МЭН), комплекс Карни, синдром МакКьюна-Олбрайта, 3Р ассоциации: феохромоцитома\параганглиома\опухоль гипофиза, DICER1, семейные изолированные опухоли гипофиза). Однако группа этих опухолей достаточно малочисленна и составляет всего 5% от всех новообразований аденогипофиза. Большая часть представлена спорадическими опухолями с наличием соматических мутаций в различных генах и менее изучена по сравнению с аденомами гипофиза, развившихся в составе указанных синдромов.

Рецензируемые исследовательские статьи были взяты из Национального центра биотехнологий «Информационная база данных» (https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/, за 2018-2022 гг). Основная цель анализа литературы — всесторонний поиск молекулярно-генетических маркеров в отношении гормонально активных и гормонально неактивных кортикотропином из исследований, проведенных в предыдущие годы, поэтому для статей не было установлено ограничений по дате. Ключевые слова для статей по геномике включали: «генетика кортикотропином/аденом гипофиза/нейроэндокринных опухолей гипофиза, семейных кортикотропином/аденом гипофиза/нейроэндокринных опухолей гипофиза», «секвенирование кортикотропином/аденом гипофиза/нейроэндокринных опухолей гипофиза». Для статей по транскриптомике ключевыми словами являлись «транскриптом кортикотропином/аденом гипофиза/нейроэндокринных опухолей гипофиза»», а также «секвенирование РНК кортикотропином/аденом гипофиза/нейроэндокринных опухолей гипофиза». Для классификации различных подтипов нейроэндокринных опухолей гипофиза и выделения среди них вариантов кортикотропином в обзоре использовалась классификация опухолей эндокринных органов Всемирной организации здравоохранения (ВОЗ) от 2022 г.

Цель данной работы — представить результаты комплексного анализа полного экзома и транскриптома гормонально активных и неактивных кортикотропином, а также данные современных технологий, посвященные изучению микроРНКома, ДНК метилома. В то же время в нашей работе мы попытались проследить, каким образом фундаментальные исследования позволяют определить ключевые механизмы патогенеза и биомаркеры кортикотропином, и как возможно использовать эти показатели в клинической практике для скрининга и более ранней диагностики наследственных синдромов и изолированных кортикотропином, дифференциальной диагностики различных форм эндогенного гиперкортицизма, чувствительности к уже существующим и потенциальным видам терапии, определении персонализированного исхода гормонально активных и неактивных кортикотропином.

Наследственные синдромы с герминальными мутациями

Среди наследственных синдромов для кортикотропином описаны синдромы МЭН1, 2А, 2Б и 4, DICER1, а также синдром семейных изолированных опухолей гипофиза (FIPA), комплекс Карни и синдром Линча.

Синдром множественных эндокринных неоплазий (МЭН)

Синдром множественных эндокринных неоплазий 1 типа (МЭН1) наследуется по аутосомно-доминантному типу с распространенностью около 1:10 000–1:100 000 населения. Опухоли гипофиза развиваются у 30–40% таких пациентов, тогда как гиперплазия или опухоли околощитовидных желез и нейроэндокринные опухоли желудочно-кишечного тракта возникают гораздо чаще (до 90 и 60% соответственно). Среди опухолей гипофиза в составе синдрома МЭН1 кортикотропиномы развиваются достаточно редко. По данным Vergès B и соавт., их доля составляет около 4%. Наиболее часто диагностируют пролактиномы (40–60%), далее следуют гормонально неактивные опухоли гипофиза (15–40%) и соматотропиномы (5–10%). Клинически такие опухоли характеризуются крупными размерами, чаще поражают молодых пациентов, могут быть множественными или способны секретировать 2 и более гормонов аденогипофиза [1].

У 90% пациентов с МЭН1 синдромом определяется герминальная гетерозиготная мутация в гене MEN1, который расположен на длинном плече 11 хромосомы (11q13) и является геном-супрессором. MEN1 кодирует синтез белка менина, который располагается в ядре клетки и участвует в регуляции клеточной транскрипции, делении и пролиферации клеток, поддержании геномной стабильности. Последние годы появились коммерческие антитела к менину для выполнения иммуногистохимического исследования в ткани опухоли с целью скрининга данной мутации [2].

В литературе описаны единичные случаи кортикотропином (1 у взрослого и 1 у ребенка), развившихся в рамках синдромов МЭН 2А и 2В. Данные синдромы связаны с мутацией онкогена RET. Он кодирует трансмембранный рецептор, связанный с активностью тирозинкиназы, которая действует как протоонкоген [3][4].

Синдром МЭН4 — это редкое генетическое заболевание, которое развивается у 1,5–3% пациентов при отсутствии мутаций в гене MEN1. Патология вызвана мутацией в гене CDKN1B, который расположен в хромосоме 12q13 и кодирует циклин-зависимую киназу р27. Этот фермент регулирует клеточный цикл от G1 до S фазы митоза. В литературе описаны единичные случаи таких пациентов с АКТГ-секретирующими опухолями [5].

DICER1 синдром — это редкое, аутосомно доминантное заболевание, обусловленное герминальной гетерозиготной мутацией в гене DICER1. Синдром включает в себя различные доброкачественные и злокачественные опухоли: плеврально-легочная бластома, опухоли яичников из клеток стромы полового тяжа (сертоликлеточные и лейдигоклеточные), кистозная нефрома, узловая гиперплазия и злокачественные дифференцированные опухоли щитовидной железы, бластома гипофиза, назальная хондромезенхимальная гамартома, медуллоэпителиома реснитчатого тела, почечная саркома, эмбриональная рабдомиосаркома и пинеалобластома. Бластома гипофиза впервые описана в 2008 г. [6], гистологически представлена Ратке-подобными эпителиальными клетками, формирующими розетки или железисто-подобные структуры; среди них имеются АКТГ-позитивные клетки (реже — клетки с экспрессией гормона роста). В составе DICER1 синдрома бластомы гипофиза диагностируют редко (менее 1%). Они характеризуются крупными размерами и тяжелым течением БИК у детей с медианой возраста 8 месяцев (в диапазоне от 7 до 24 месяцев), смертность достигает 40%. Мутация в гене DICER1 является патогномоничной для данного синдрома. Ген расположен на длинном плече 14 хромосомы (14q32.13), кодирует цитоплазматическую эндорибонуклеазу, которая отвечает за созревание и модуляцию экспрессии микроРНК на посттранскрипционном уровне. Недавно в литературе описан DICER1 синдром у молодого взрослого пациента, обусловленный герминальной гетерозиготной мутацией в гене DICER1 [7].

Синдром семейных изолированных аденом гипофиза (FIPA)

Герминальная мутация в гене AIP, который кодирует белок, взаимодействующий с арилуглеводородным рецептором, может быть причиной возникновения опухолей гипофиза в 15–30% семей с синдромом семейных изолированных аденом гипофиза. Мутация в данном гене чаще описана у пациентов в пораженных семьях с акрогигантизмом, реже — с пролактиномами или в опухолях со смешанной секрецией гормона роста и пролактина. Для этих новообразований характерны крупные размеры, они резистентные к медикаментозной терапии, поражают молодых людей. Крайне редко такие мутации возникают у пациентов с БИК: в литературе описаны единичные случаи у детей и взрослых. В исследование L. Cazabat [8] были включены 443 пациента, у которых определяли наличие мутаций в гене AIP. Среди них выявили 44 пациента с БИК (10%), у троих из которых обнаружили данную мутацию. Эти пациенты были моложе 40 лет (на момент манифестации заболевания возраст составил 13, 21 и 39 лет). Среди пациентов с кортикотропиномами преобладали те, у которых фиксировались микроаденомы (2 микро- и 1 макроаденома), в отличие от больных с другими гистологическими типами макроаденом гипофиза. Были обнаружены нуклеотидные замены по типу миссенс-мутаций (n=2) и сдвигу рамки считывания (n=1) в гене AIP.

Исследованы и описаны несколько механизмов, приводящих к резистентности к аналогам соматостатина у таких пациентов. К ним относят снижение экспрессии ингибирующего G-протеина, фосфодиэстеразы, а также нарушения сигнального пути протеинкиназы А и ZAC1.

Существуют еще 2 наследственных синдрома, в рамках которых отмечают пациентов с кортикотропиномами. Это комплекс Карни и синдром Линча. Комплекс Карни — это наследственный синдром, обусловленный инактивирующими мутациями в гене PRKAR1A, который кодирует альфа-регуляторную субъединицу цАМФ-зависимой протеинкиназы А. В составе комплекса Карни, кроме шванном, миксом и пигментации кожи, диагностируют кортикостеромы. За последние годы также появились упоминания о единичных кортикотропиномах [9].

Синдром Линча развивается в результате герминальных мутаций в так называемых генах репарации ДНК (MSH2, MLH1, MSH6, PMS2 и EPCAM) и ассоциируется с наследственной предрасположенностью к развитию карцином различной локализации. В литературе описаны случаи пациентов с синдромом Линча с наличием инвазивных макрокортикотропином или кортикотрофной карциномой, у которых обнаружили герминальные мутации в генах MLH1 и MSH2 [10][11].

Таким образом, пациенты с кортикотропиномами молодого (менее 30 лет) и детского возраста могут являться кандидатами для молекулярного тестирования с целью идентификации наследственных синдромов. В качестве скрининга возможно проводить иммуногистохимическое исследование на образцах ткани опухоли с антителами к менину (синдром МЭН1), р27 (синдром МЭН4), MSH2, MLH1, MSH6, PMS2 (синдром Линча).

Соматические мутации в спорадических кортикотропиномах

Наиболее изученными и распространенными среди спорадических АКТГ-секретирующих опухолей гипофиза являются соматические мутации в генах убиквитин-специфической протеазы 8 (USP8), убиквитин-специфической протеазы 48 (USP 48), BRAFV600E, ATRX.

Полное секвенирование экзома выявило, что 20–60% кортикотропином являются носителями соматической мутации в гене USP8. Данная мутация является специфичной для кортикотропином и не обнаружена в других типах опухолей аденогипофиза или АКТГ-эктопических опухолей негипофизарной локализации.

«Горячая точка» гена USP8 расположена в 14 экзоне связывающего домена 14-3-3. В белке USP8 дикого типа в домене 14-3-3 происходят конформационные изменения, которые позволяют USP8 блокировать его собственную каталитическую активность. Потеря связывающего участка 14-3-3 при наличии мутации в гене USP8 повышает их деубиквитиназную активность и обеспечивает доступ к протеазам, которые расщепляют его до С-концевого фрагмента длиной 40 кДА с высокой каталитической способностью. Этот процесс нарушает деградацию EGFR (рецептор эпидермального фактора роста), стимулирует транскрипцию проопиомеланокортина (ПОМК) и синтеза АКТГ в опухоли. Надо отметить, что выраженная стимуляция митотической активности и, как следствие, высокая пролиферативная активность в опухолевых кортикотрофных клетках не обнаружена [12].

Кортикотропиномы, содержащие мутации в гене USP8, чаще возникают у женщин, меньше по размеру и неинвазивные. Уровни секреции АКТГ до операции выше по сравнению с показателями пациентов, у которых кортикотропиномы не обладали мутацией в гене USP8. С другой стороны, случаи с наличием соматических мутаций в гене USP8 сопровождаются более высокими уровнями кортизола после удаления опухоли и как следствие рецидивом или продолженным ростом новообразования. Эти данные подтверждаются наличием указанной мутации у 50% пациентов с продолженным ростом кортикотропином при синдроме Нельсона. В то же время показано, что опухоли без мутаций в гене USP8 обладают более крупными размерами с инвазивным ростом в сфеноидальный синус, ремиссия развивается реже [13].

Что касается детей с наличием БИК, то, по данным Faucz FR [14], кортикотропиномы, несущие соматические мутации в гене USP8, обнаружены у 13 из 45 пациентов (28%). Однако в литературе описан клинический случай кортикотропиномы у 16-летней девушки с наличием гетерозиготной герминальной мутации в гене USP8 [15].

Кортикотропиномы, содержащие мутации в гене USP8, обладают высоким уровнем экспрессии рецепторов соматостатина 5 подтипа и О6-метилгуанин ДНК метилтрансферазы (MGMT), следовательно, чувствительны к терапии пазиреотидом (лиганд к рецепторам соматостатина 5 подтипа) и темозоламидом соответственно.

Мутация в гене USP8 может являться мишенью для лечения с помощью низкомолекулярных ингибиторов, демонстрирующих антипролиферативную и антисекреторную эффективность in vitro. В качестве ингибитора EGFR может использоваться гефитиниб для терапии пациентов с кортикотропиномами, содержащими мутации в гене USP8. Показано прямое ингибирование EGFR в первичных культурах клеток кортикотропином, содержащих мутацию в указанном гене, с последующим ослаблением высвобождения АКТГ [16][17].

Среди кортикотропином с помощью секвенирования следующего поколения (NGS) была выявлена вторая «горячая точка» в гене, кодирующем другую деубиквитиназу, — USP48. Мутация в гене USP48 наблюдаются в 4–23% случаев кортикотропином (без мутаций в гене USP8) и является миссенс-мутацией, включающей M415I/V субституцию. Мутантный ген усиливает транскрипционную активность гена POMC, предшественника АКТГ, за счет митоген-активируемой протеинкиназы (MAPK). Для кортикотропином, несущих мутацию в гене USP48, характерны меньшие размеры и более высокая чувствительность к стимуляции кортикотропин-рилизинг гормона (КРГ-физиологического стимулятора синтеза и секреции АКТГ в кортикотрофных клетках). In vitro на модели клеток кортикотропином (MET415lle) с наличием мутации в гене USP48 определялось умеренное повышение секреции АКТГ. На фоне стимуляции КРГ уровни ПОМК и АКТГ были значительно выше базальных значений, секретируемые клетками кортикотропином с наличием мутации в гене USP48, по сравнению с клетками без мутаций в данном гене (р<0,01). На основании этих данных можно предположить, что мутация в гене USP48 может индуцировать онкогенез кортикотропином за счет высокой чувствительности к стимулу КРГ со стороны гипоталамуса. В экспериментах также было показано значение Gli1 (глиома-ассоциированный онкоген), медиатора сигнального пути Sonic Hedgehog (SHH). Gli1 считается ключевым фактором, который влияет на процесс убиквитинирования и потенцирует синтез АКТГ за счет активации сигнального пути SHH в кортикотропиномах, содержащих мутации в гене USP48. Предполагается подобное действие Gli1/SHH сигнального пути и в кортикотропиномах с наличием мутации в гене USP8 [18][19].

Около 16% случаев кортикотропином содержат мутацию в гене BRAF V600E при отсутствии мутаций в генах USP8 и USP48. Данная мутация усиливает действие протоонкогена с тирозин-киназной активностью, что запускает MAPK-сигнальный путь и активирует транскрипцию гена POMC и синтез АКТГ.

На сегодняшний день существует проблема определения прогноза течения БИК. Анализ совокупности данных об особенностях клинического течения, МРТ (размер опухоли и/или инвазивный рост), гистологические варианты кортикотропином (плотно- и редкогранулированные опухоли, из Круковских клеток), показатели пролиферативной активности (количество митозов и индекс метки Ki-67, экспрессия Р53) могут не соответствовать характеру течения заболевания (ремиссия, персистирующий гиперкортицизм или рецидив заболевания). В исследовании Uzilov V [20] изучали наличие мутации в генах USP8 и TP53 в кортикотропиномах, в том числе и в когорте опухолей с агрессивным течением. В результате было показано, что одновременное содержание указанных мутаций в одной и той же кортикотропиноме исключалось. Это подтверждает независимую работу данных драйверных генов. Многочисленные исследования доказывают наличие мутации в гене ТР 53 во многих карциномах различной локализации. Среди АКТГ-секретирующих новообразований гипофиза обнаружены случаи с инактивирующей соматической драйверной мутацией в гене ТР53. Группа этих опухолей (n=5 из 22) была представлена инвазивными макроаденомами с персистирующим или рецидивирующим течением заболевания. Опухоли были позитивны к P53 (при иммуногистохимическом исследовании) и обладали высоким пролиферативным индексом Ki-67 (более 3%). В 3 случаях диагностировали синдром Нельсона, у 1 пациента выявлена карцинома. На основании этих данных авторы определили взаимосвязь между наличием мутации в гене ТР53 и агрессивным течением БИК, также предположили, что позитивная иммуноэкспрессия Р53 ассоциирована с инвазивным и агрессивным характером роста опухолей. Однако необходимо дальнейшее изучение взаимосвязи между наличием мутации в гене ТР53, позитивной иммуноэкспрессией Р53 в клетках опухоли и агрессивным течением БИК.

Данное исследование также продемонстрировало, что кортикотропиномы, несущие соматические мутации в гене USP8, были более генетически стабильны по сравнению с опухолями без мутаций в этом гене и обладали благоприятным течением БИК. Часть опухолей (22,7%) содержали мутацию в гене TP53 и обладали высоким уровнем хромосомной нестабильности. В этих случаях наблюдалось персистирующее или рецидивирующее течение заболевания.

В ряде работ показана связь с наличием мутации в гене ATRX (alpha thalassemia/mental retardation syndrome X-linked — синдром альфа-таласемии и умственной отсталости X-сцепленного типа), регулирующий ремоделирование хроматина и поддержание структуры и функции теломеры. Инактивация гена ATRX в опухолях приводит к дестабилизации теломеры и стимулирует процесс альтернативного удлинения теломер, что запускает состояние бессмертия опухолевых клеток. Соматические мутации в гене ATRX ассоциируются с астроцитомами у взрослых и такими нейроэндокринными опухолями (НЭО), как НЭО поджелудочной железы, феохромоцитомы/параганглиомы, нейробластомы. Предполагается, что аномалии в структуре гена ATRX являются предикторами агрессивного поведения указанных новообразований [21][22][23][24][25].

В работах Casar-Borota O. и соавт. [26][27], посвященных изучению иммуноэкспрессии белка ATRX при иммуногистохимическом исследовании и мутации гена ATRX (при NGS) в различных опухолях гипофиза, показано выпадение иммуноэкспрессии этого белка именно в опухолях с агрессивным течением (13%) или в карциномах (28%). Причем большинство были представлены кортикотропными опухолями (32%) по сравнению с Pit-1-позитивными новообразованиями (8%) (соматотропиномы, пролактиномы, тиреотропиномы). Отсутствие экспрессии ATRX было подтверждено наличием молекулярных дефектов гена ATRX по типу потери функции (нонсенс-мутации, вставки со смещением рамки считывания, крупными интрагенными делециями практически всего гена — 22-28 экзонов из 36). В результате авторы предложили использовать белок ATRX как иммуногистохимический маркер — предиктор высокоагрессивных или потенциально метастазирующих кортикотропных опухолей гипофиза.

Таким образом, на сегодняшний день актуальным является изучение особенностей клинического течения, гистологических вариантов и прогноза течения заболевания у пациентов с кортикотропиномами, несущими мутации в генах USP8, USP48, BRAF V600E, ТР 53, ATRX. Изучение молекулярно-генетических аномалий приведет к более глубокому пониманию онкогенеза кортикотропином, выявлению дополнительных свойств опухолей, ассоциированных с неблагоприятным течением БИК. Это будет способствовать активному наблюдению за пациентами — носителями мутаций в генах USP8, USP48 и BRAF и своевременному назначению более агрессивной терапии, а белки-продукты мутаций в указанных генах будут являться мишенями для ингибиторов EGFR и BRAF.

Эпигенетические маркеры кортикотропином

За последнее десятилетие накоплено немало доказательств в отношении нарушения регуляции экспрессии микроРНК (миРНК), участвующей в развитии и прогрессии опухолей гипофиза. МиРНК являются некодирующими РНК молекулами длиной 18-24 нуклеотидов, которые регулируют экспрессию генов на посттранскрипционном уровне и контролируют такие процессы, как дифференцировка, пролиферация и апоптоз в клетке. МиРНК влияют на стабильность и трансляцию матричной РНК (мРНК) при помощи связывания с регуляторными элементами, расположенными в 3`нетранслируемых регионах подконтрольных транскриптов. Эти молекулы существуют как внутри клетки, так и за ее пределами в различных биологических жидкостях (плазма, сыворотка, моча, слюна, семенная жидкость, ликвор и др.). Доступность указанных биологических сред позволяет использовать миРНК, как неинвазивные биомаркеры различных заболеваний, в том числе опухолей. Для каждого вида опухолей гипофиза характерен свой специфический профиль экспрессии миРНК. В ряде исследований показано, что аберрантная экспрессия определенных миРНК ассоциируется с размером опухоли, наличием инвазивного роста и чувствительности к различным видам терапии.

В исследовании Sh. Vetrivel и соавт. [28] изучалась экспрессия миРНК для дифференциальной диагностики БИК и СИК, БИК и АКТГ-эктопического синдрома.

Профили циркулирующих миРНК изучались в образцах сыворотки у пациентов с СИК, БИК и контрольной группы. В результате была идентифицирована миРНК 182-5p в качестве потенциального неинвазивного маркера БИК, которая может использоваться для дифференциальной диагностики различных форм эндогенного гиперкортицизма.

В работе Малыгиной А.А. и соавт. [29] проводился поиск миРНК, специфичных для различных форм АКТГ-зависимого гиперкортицизма (БИК и АКТГ-эктопического синдрома). В результате выявлены возможные кандидаты миРНК (miR-383-3p, miR-1229-3p, miR-1203, miR-639, miR-4290, miR-6717-5p, miR-302c-3p), которые предполагается использовать в качестве инструмента в дополнение к уже известным и широко применяемым методам (МРТ головного мозга и селективный забор крови из нижних каменистых синусов) для дифференциальной диагностики форм АКТГ-зависимого гиперкортицизма [30].

Важно отметить исследование F. Garbicz и соавт. [31], в котором определялась иммуноэкспрессия MCM7 (белок 7 для поддержания мини-хромосом участвует в инициации репликации генома эукариот) и экспрессия кластера миРНК miR-106b~25 (miR-106b-5p, miR-93-5p, miR-93-3p and miR-25-3p) при помощи количественной ПЦР в реальном времени в ткани кортикотропином. МСМ7 является геном-мишенью для кластера миРНК miR-106b~25. В АКТГ-секретирующих опухолях, по данным МРТ, определяли степень инвазивного роста по шкале Knosp. При помощи иммуногистохимического исследования выделяли гистологические варианты кортикотропином (плотногранулированные, редкогранулированные и опухоли из круковских клеток), проводили анализ индекса метки Ki-67 и p53. В результате была выявлена повышенная экспрессия МСМ7 и высокий индекс метки Ki-67 в инвазивных кортикотропиномах и в кортикотропиномах из круковских клеток. Экспрессия miR-93-5p была значительно повышена в инвазивных опухолях по сравнению с неинвазивными. Кроме того, все четыре миРНК из кластера miR-106b~25 продемонстрировали гиперэкспрессию в аденомах из круковских клеток. Примечательно, что MCM7 и miR-106b-5p коррелировали со степенью инвазивного роста, оцененного по шкале Knosp. Комбинация экспрессии MCM7, Ki-67 и кластера miR-106b~25 точно дифференцирует инвазивные опухоли от неинвазивных и обладает значительной дискриминационной способностью прогнозировать послеоперационный рецидив/прогрессирование опухоли.

Таким образом, эпигенетические маркеры обладают специфическими характеристиками, которые позволяют дифференцировать формы эндогенного гиперкортицизма (АКТГ-зависимые и АКТГ-независимые) и являются прогностическими биомаркерами.

Пангеномная классификация кортикотропином

Ранее в исследованиях использовался моноомиксный подход, основанный на анализируемых клинических или патоморфологических критериях. Последние годы ученые предлагают применять так называемые мультиомиксные методы исследования, которые включают в себя исследование полного экзома и транскриптома. Все эти исследования выполняются при помощи секвенирования следующего поколения (NGS). Т.е. используются комбинации «омиксных» методов с учетом клинической картины, патоморфологических особенностей, характера течения заболеваний (индолентный или агрессивный), чувствительности к различным видам терапии. Мультиомиксный подход в изучении опухолей гипофиза в целом и кортикотропином в частности предполагает детальное понимание онкогенеза. Анализ полного экзома демонстрирует наличие наследственных или соматических драйверных мутаций, хромосомных аномалий. Транскриптом является частью генома, который транскрибируется на РНК с последующей регуляцией генов и синтеза их продуктов (набор белков). МиРНКом представлен гипер- или гипоэкспрессией миРНК. Транскриптом и миРНКом отражает различные свойства опухолей, например происхождение или способность к прогрессии. ДНКметилом демонстрирует уровень гипер- или гипометилирования различных генов, характерных для определенных типов опухолей гипофиза [32].

В исследовании M. Neou [33] проводился совокупный анализ типа секреции опухолей гипофиза, иммунофенотипа, наличие ремиссии или персистенции заболевания, полного экзома и РНК последовательностей, а также эпигенетического профиля и ДНК метилирования. В данной работе на основании комплексного анализа генома опухолей гипофиза было введено такое понятие, как пангеномная классификация. В результате показано, что кортикотропиномы без мутаций в гене USP8 обладали более агрессивным течением с преобладанием инвазивного роста в сфеноидальный синус по сравнению опухолями, содержащими мутацию в гене USP8. Отличия в отношении инвазивного роста в кавернозный синус и уровня индекса метки Ki-67 в этих группах не обнаружены. Инвазивный рост кортикотропиномы без мутации в гене USP8 ассоциировался со способностью этих опухолей к эпителиально-мезенхимальному транзиту (снижению степени дифференцировки). Среди кортикотропином с наличием мутации в гене USP8 выявлен более высокий уровень экспрессии рецепторов соматостатина 5 подтипа по сравнению с опухолями без мутаций в этом гене, тем самым подтверждая потенциальную значимость USP8 статуса в отношении чувствительности к пазиреотиду. При анализе структуры хромосом нарушения в виде потери или увеличения участков были более выражены в гормонально активных кортикотропиномах по сравнению с «немыми» новообразованиями. В данной работе хромосомные нарушения не ассоциировались ни с иммунофенотипом опухоли, ни с агрессивным течением. Профили миРНК и метилирование ДНК коррелировали с секреторными типами опухолей, и кортикотропиномы обладали своим уникальным набором экспрессии этих молекул. Кортикотропиномы продемонстрировали обратную корреляцию между уровнем метилирования и хромосомными аномалиями. Такие характеристики транскриптома, как низкий уровень оксидативного фосфорилирования, воспаления и эпителиально-мезенхимального транзита, значительно отличались между различными типами кортикотропином в зависимости от USP8 статуса. При изучении транскриптома в клинически гормонально неактивных кортикотропиномах были выявлены черты, характерные как для кортикотропином, так и гонадотропином. Эти свойства были подтверждены наличием коэкспрессии иммуногистохимических маркеров, которые выявляются как в гонадотропиномах, так и в кортикотропиномах (АКТГ, TPIT, GATA3). В исследовании Salomon M.P. и соавт. [34] были выявлены особенности в метиломе кортикотропином: определены участки гипометилирования промоторов гена POMC. В то же время проводилось сравнение уровней экспрессии POMC и метилирования промотора гена POMC среди кортикотропином с мутациями и без в гене USP8. В результате разница по указанным показателям в зависимости от USP8 статуса не обнаружена и сделан вывод о том, что ДНК метилирование промотора POMC и последующая его экспрессия и синтез АКТГ происходят независимо от указанного состояния. Совокупность современных молекулярных методов для изучения кортикотропином с учетом использования типов нуклеиновых кислот или РНК молекул, а также существующие дизайны исследований, представлены на рисунке 1.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Таким образом, многочисленные результаты фундаментальных как моно-, так и мультиомиксных исследований кортикотропином представляют комплексный детальный анализ и позволяют определить новые, ранее не описанные молекулярные варианты опухолей, способствуют более глубокому пониманию биологических механизмов. Это потенциально приведет к усовершенствованию диагностики и лечения пациентов с болезнью Иценко-Кушинга в клинической практике.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Источники финансирования. Грант Минобрнауки, соглашение №075-15-2022-310 от 20.04.2022.

Конфликт интересов. Автор декларирует отсутствие явных и потенциальных конфликтов интересов, связанных с публикацией настоящей статьи.

Участие авторов. Автор одобрил финальную версию статьи перед публикацией, выразил согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.