Preview

Проблемы Эндокринологии

Расширенный поиск

Роль лептина в развитии патологии эндометрия: литературный обзор

https://doi.org/10.14341/probl13397

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Лептин является не только главным регулятором энергетического баланса в организме, но также оказывает влияние на репродуктивную и иммунную систему. Лептин и его рецепторы экспрессируются в эндометрии, активно участвуя в процессе имплантации эмбриона. По данным многочисленных исследований, изменение экспрессии и уровня лептина ассоциировано с развитием воспалительных и аутоиммунных заболеваний, в том числе эндометриоза и хронического эндометрита. Гиперпластические и воспалительные заболевания матки сопровождаются нарушением рецептивности эндометрия за счет дисрегуляции множества факторов, участвующих в процессах пролиферации, васкуляризации и децидуализации клеток. Функциональная активность большинства из этих факторов обусловлена действием лептина, однако к настоящему моменту отсутствуют исследования прямой роли лептина в патогенезе нарушений функционального состояния эндометрия при гиперпластических и воспалительных заболеваниях органов малого таза.

Таким образом, цель настоящего литературного обзора — описать предполагаемые молекулярные механизмы влияния лептина на развитие патологии эндометрия.

Литературный поиск проводился в период с 20.03.2023 по 11.05.2023 с использованием баз научной литературы: NCBI PubMed, Google Scholar (зарубежные источники), Киберленинка, Elibrary (отечественные источники), анализировались литературные источники за период 1995-2023 гг. Для поиска использовались следующие ключевые слова: лептин, эндометриальная дисфункция, эндометриальная рецептивность, воспаление, воспалительные заболевания органов малого таза.

Для цитирования:


Иевлева К.Д., Данусевич И.Н., Сутурина Л.В. Роль лептина в развитии патологии эндометрия: литературный обзор. Проблемы Эндокринологии. 2024;70(5):106-114. https://doi.org/10.14341/probl13397

For citation:


Ievleva K.D., Danusevich I.N., Suturina L.V. The role of leptin in endometrium disorders: literature review. Problems of Endocrinology. 2024;70(5):106-114. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl13397

Введение

Лептин представляет собой полипептидный гормон длинной 16 кДа, кодирующийся геном LEP и в большинстве случаев продуцируемый в жировой ткани. Главная роль лептина в организме — регуляция энергетического баланса через влияние на клеточный метаболизм и аппетит [1][2]. Рецепторы к лептину по строению гомологичны первому классу семейства цитокиновых рецепторов [3]. Существует 6 изоформ рецептора к лептину [4], но непосредственно сигнальную функцию выполняет длинная изоформа OBR1 [3], которая экспрессируется в гипоталамусе [5], а также в периферических органах и тканях [5][6]. Так, например, OBR экспрессируется на адипоцитах, иммунных клетках, в тканях яичника и эндометрия [7].

Помимо регуляции энергетического гомеостаза, лептин необходим для инициации пубертатного периода и оказывает влияние на функционирование гипоталамо-гипофизарно-яичниковой системы [8]. При этом лептин воздействует на органы и ткани не только через центральные механизмы, но и напрямую, участвуя в регуляции метаболизма, репродуктивной функции и гемопоэза [9–11]. Так, например, в жировой ткани лептин стимулирует окисление липидов и регулирует клеточный гомеостаз триглицеридов [12]. В яичниках прямое воздействие лептина стимулирует выработку стероидных гормонов, а присутствие лептина в эндометрии необходимо для нормальной реализации процессов имплантации [13][14]. Кроме того, лептин обеспечивает активность иммунной системы, стимулирует пролиферацию иммунных клеток, а также участвует в развитии воспаления [15–17].

В многочисленных исследованиях показана ассоциация уровня лептина с развитием различных хронических воспалительных заболеваний, в том числе аутоиммунных, а также с наличием заболеваний репродуктивной системы (синдром поликистозных яичников (СПКЯ), эндометриоз, хронический эндометрит), в патогенезе которых также играет роль воспаление [18–21].

Таким образом, лептин является гормоном, который играет важную роль не только в регуляции метаболизма, но также необходим для нормального функционирования иммунной системы и адекватного воспалительного ответа. Кроме того, лептин является активным участником регуляции репродуктивной функции, что позволяет предположить его роль в развитии патологии эндометрия. Целью настоящего литературного обзора явилось описать предполагаемые молекулярные механизмы влияния лептина на развитие патологии эндометрия.

Литературный поиск проводился в период с 20.03.2023 по 11.05.2023 с использованием баз научной литературы: NCBI PubMed, Google Scholar (зарубежные источники), Киберленинка, Elibrary (отечественные источники), анализировались литературные источники за период 1995–2023 гг. Для поиска использовались следующие ключевые слова: лептин, эндометриальная дисфункция, эндометриальная рецептивность, воспаление, воспалительные заболевания органов малого таза.

Нормальный уровень лептина у женщин репродуктивного возраста

Концентрация лептина в крови человека зависит не только от количества жировой ткани, но и от пола. Так, у женщин с нормальной массой тела (18,5 ≤ индекс массы тела (ИМТ)≤ 5 кг/м2) уровень лептина в сыворотке крови составляет 23,5±1,5 нг/мл с пределами колебаний 4,7–46 нг/мл, а у мужчин с нормальной массой тела — 9±0,83 нг/мл (2,65–20,7 нг/мл) [22]. Имеющиеся различия объясняются уровнем стероидных гормонов, так как эстрогены стимулируют секрецию лептина из жировой ткани, тогда как андрогены, наоборот ингибируют [23].

В течение менструального цикла концентрация лептина изменяется в пределах от 14,9 нг/мл в раннюю фолликулярную фазу до 20,4 нг/мл в середине лютеиновой фазы с максимальным уровнем в период пика лютеинизирующего гормона (ЛГ) 21,7 нг/мл [24][25]. Имеются исследования, указывающие на синхронизацию ночной концентрации лептина с пиками ЛГ у нормально менструирующих женщин [26][27], что совпадает с результатами исследований на животных. Так, сывороточная концентрация лептина, а также уровень его экспрессии в жировой ткани, повышается в период овуляции у самок крыс [28]. Данная синхронизация концентраций лептина, ЛГ и эстрадиола лучше всего устанавливается при определении в ночные часы, что, предположительно, подтверждает гипотезу о том, что лептин регулирует колебания уровней ЛГ и эстрадиола. Максимальный уровень концентрации лептина ассоциирован с пиками концентрации эстрадиола, прогестерона, тестостерона, ЛГ при овуляции и низкими концентрациями фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) [27][29].

Таким образом, у женщин уровень лептина выше, чем у мужчин, и зависит от фазы менструального цикла. Кроме того, уровень лептина коррелирует с концентрациями ЛГ, эстрадиола, прогестерона и тестостерона, что подтверждает его влияние на регуляцию репродуктивной функции у женщин.

Физиологическое действие лептина на эндометрий

Впервые влияние лептина на репродуктивную функцию установили в исследованиях на мышах с делецией гена лептина (ob/ob), где выявили, что отсутствие продукции лептина обуславливало развитие у животных бесплодия, которое корректировалось введением экзогенного лептина [30]. Лептин может воздействовать на репродуктивную функцию через центральные механизмы (соматотропный релизинг-фактор) и периферические механизмы (прямое воздействие на яичники и эндометрий) [31].

Лептин и его рецепторы экспрессируются в клетках яичников и матки, при этом наибольшая экспрессия матричной рибонуклиеновой кислоты (мРНК) рецепторов к лептину обнаружена в яичниках [32], а именно в гранулезных клетках и в клетках теки [33], где они участвуют в стимуляции продукции стероидов клетками [13]. Так, лептин в низкой концентрации стимулирует, а в высокой концентрации ингибирует экспрессию ферментов, участвующих в синтезе прогестерона [34]. Также низкие дозы лептина стимулируют секрецию прогестерона, тогда как высокие концентрации, наоборот, ингибируют этот процесс [35]. Таким образом, через регуляцию выработки гормонов яичников лептин может оказывать влияние на функциональное состояние эндометрия.

Рецепторы к лептину экспрессируются непосредственно в эндометриальных клетках. Обнаружено, что снижение экспрессии данных рецепторов приводит к снижению фертильности [36] за счет их участия в регуляции процессов имплантации [37].

Уровень экспрессии лептина в эндометрии зависит от фазы менструального цикла. В исследовании эндометрия здоровых женщин репродуктивного возраста Kitawaki et al. (2000 г.) установили экспрессию рецептора к лептину, но не самого гена лептина в клетках слизистой оболочки матки. При этом наименьший уровень экспрессии лептиновых рецепторов регистрировали в середину секреторной фазы менструального цикла [36]. Однако в другом исследовании показано, что экспрессия лептина в эндометрии регистрируется только в стадию инвазии бластоцисты в эндометрий в преимплантационный период [38].

Kaplanoğlu et al. (2019 г.) провели in vitro исследование кокультивирования эмбриональных и эндометриальных клеток, по результатам которого обнаружили увеличение экспрессии рецепторов к лептину на поверхности эндометриальных клеток [39], что подтверждает необходимость присутствия лептина для реализации имплантации. В исследовании на мышах с недостаточностью лептина и бесплодием введение рекомбинантного лептина в течение восьми дней приводило к наступлению беременности. При этом беременность не наступала, если лептин прекращали вводить через 0,5–3,5 дня после спаривания, но регистрировалась, если лептин прекращали вводить через 6,5–14,5 дней после спаривания [40]. Исходя из того, что у мышей имплантация происходит на пятый день после спаривания, можно сделать вывод, что лептин необходим для этой стадии беременности [38]. Кроме того, к нарушению процессов имплантации приводило блокирование рецепторов к лептину на третий день беременности [41].

Дальнейшие исследования механизмов влияния лептина на процесс имплантации обнаружили, что лептин способен стимулировать пролиферацию и апоптоз эндометриальных эпителиальных клеток, влиять на эндометриальную рецептивность, иммунную систему матки и децидуализацию клеток эндометрия [42–44].

Так, Tanaka et al. (2008 г.) в исследовании in vitro на эндометриальных эпителиальных клетках установили, что инкубация клеточной культуры с лептином в концентрации, соответствующей физиологической норме, обуславливала пролиферацию эндометриальных клеток. Кроме того, лептин стимулировал экспрессию рецепторов к эстрогенам и прогестерону, а также функционального Fas-антигена, который является активатором клеточного апоптоза [42]. В эксперименте на человеческих эндометриальных клетках установили, что лептин влияет на децидуализацию стимулированных эпителиальных клеток эндометрия путем ингибирования секреции в них пролактина. Авторы предположили, что высокие концентрации лептина могут ингибировать апоптоз в ткани эндометрия, что в свою очередь будет тормозить децидуализацию ткани и может приводить к развитию бесплодия [43].

Yang et al. обнаружили, что лептин стимулирует экспрессию αv- и β3-интегрина в мышиных эпителиальных клетках матки, что обуславливает его действие на рецептивность эндометрия [44]. Стимулируя выработку β3-интегрина, лептин повышает адгезию бластоцисты к эндометрию [44]. Установлено, что в клетках эндометрия лептин дозозависимо стимулирует экспрессию β3-интегрина, а также матричной металлопротеиназы (MMP) 9, связывающегося с гепарином EGF-подобного фактора роста (HB-EGF) и интерлейкина (IL) 1β, остеопонтина и фактора ингибирования лейкемии (LIF), которые являются важными факторами рецептивности эндометрия [46].

Благодаря своим провоспалительным свойствам лептин также стимулирует экспрессию некоторых цитокинов: IL-6 и IL-8, регулирующего роста онкогена α (GROα), моноцитарного хемоаттрактантного белка 1 (MCP-1) и макрофагального воспалительного белка 3α (MIP3α) в эндометриальных эпителиальных и стромальных клетках [40]. Данные провоспалительные цитокины в свою очередь принимают участие в процессе имплантации эмбриона.

Таким образом, главной функцией лептина в эндометрии является регуляция процесса имплантации, которую лептин обеспечивает через влияние на факторы рецептивности эндометрия.

Влияние лептина на иммунный ответ и развитие воспаления

Так как для лептина установлена ассоциация с развитием заболеваний, в патогенезе которых участвует воспаление [16], в том числе заболевания репродуктивной системы [19], а также нарушение иммунного ответа [21], ниже нами представлены имеющие сведения о влиянии лептина на данные процессы.

Лептин обладает плейотропным действием на клетки иммунной системы. В моноцитах и макрофагах лептин стимулирует фагоцитарную активность, пролиферацию моноцитов, оксидативный стресс, хемотаксис и индуцирование провоспалительных цитокинов (фактор некроза опухоли α (TNF-α), IL-6, IL-12), приводящие к воспалительной инфильтрации [16]. В нейтрофилах лептин оказывает стимулирующее воздействие на выработку свободных радикалов, а также поддерживает секрецию IL-1β, внутриклеточной молекулы адгезии 1 (ICAM-1) и хемокинов, которые обеспечивают процесс хемотаксиса [17]. В эозинофилах и базофилах лептин является активатором хемотаксиса, выброса цитокинов и клеточного выживания [47]. В клетках натуральных киллерах данный адипокин активирует созревание, дифференцировку, активацию и цитотоксичность, а также секрецию IL-2, IL-12, фактора роста клеток киллеров и перфорина [48].

Лептин может действовать как провоспалительный цитокин благодаря структурной схожести с IL-6. В этом случае лептин повышает экспрессию TNF-α и IL-6 [49]. Провоспалительные цитокины в свою очередь также способны регулировать уровень лептина. В исследовании in vitro на клеточной линии мышиных адипоцитов 3T3-L1 установили, что TNF-α и IL-1β зависимо от дозы и времени снижали продукцию и секрецию лептина клетками [50]. Однако в другом исследовании TNF-α снижал экспрессию лептина в клетках 3T3-L1 и жировой ткани мышей, кроме того, уровень мРНК лептина была значимо ниже у мышей с недостаточностью TNF-α в сравнении с обычными мышами [51][52]. По результатам острого эксперимента установили, что IL-1β может индуцировать повышение уровня лептина в плазме и экспрессию его гена в жировой ткани [50][53], а также в клетках эндометрия. При этом в другом исследовании на клетках 3T3-L1 инкубация с IL-1β приводила к снижению экспрессии гена лептина [54].

В исследованиях на экспериментальных моделях животных было выявлено, что лептин оказывает стимулирующее действие на развитие аутореактивности. Так, у мышей ob/ob и мышей с делецией рецептора к лептину (db/db) наблюдали резистентность к развитию индуцированных аутоиммунных заболеваний [15][55]. При этом в животной модели спонтанной аутореактивности обнаружили, что у самок мышей с нормальной массой тела и сахарным диабетом первого типа (СД1) повышенный уровень лептина предшествовал развитию заболевания. Кроме того, внутрибрюшинное введение рекомбинантного лептина животным ускоряло аутоиммунную деструкцию β-клеток поджелудочной железы, продуцирующих инсулин, и значительно повышало продукцию интерферона γ (INFγ) в периферических Т-клетках. Эти результаты показывают, что лептин может способствовать провоспалительным клеточным ответам и непосредственно влиять на развитие аутоиммунных заболеваний [56].

Роль лептина в развитии аутоиммунной патологии также подтверждена в многочисленных клинических исследованиях. Так, повышение периферической секреции лептина у человека ассоциировано с развитием таких заболеваний, имеющих в своей основе аутоиммунные механизмы, как эндометриоз, неалкогольный гепатит, хроническое воспаление легких, гломерулонефрит, синдром Бехчета, болезнь Грейвса, СД1 и ревматоидный артрит [15]. Однако результаты исследования взаимосвязи уровня лептина и перечисленных заболеваний у людей крайне противоречивы. Во многих исследованиях указывается отсутствие повышения лептина у пациентов с хроническими воспалительными аутоиммунными заболеваниями [57][58]. Интересно, что снижение потребляемых калорий или голодание приводит к снижению симптомов воспаления при некоторых аутоиммунных состояниях [59]. Однако стоит отметить, что данные улучшения могут быть связаны не только со снижением уровня вырабатываемого лептина, но и с изменениями уровня других гормонов [15].

Таким образом, основная роль лептина в регуляции иммунной системы заключается в способности повышать активность иммунитета и клеточной пролиферации и снижать апоптоз клеток киллеров. Кроме того, лептин является провоспалительным цитокином, активно участвующим в развитии воспаления, а повышение его уровня ассоциировано с развитием аутоиммунных заболеваний.

Роль лептина в развитии воспалительных и пролиферативных заболеваний эндометрия

К настоящему моменту накоплено небольшое количество данных о роли лептина в патогенезе хронических воспалительных и гиперпластических заболеваний матки. В нашем исследовании мы установили, что у женщин с хроническим эндометритом наблюдаются более низкие концентрации сывороточного лептина. Однако это характерно для женщин без СПКЯ, тогда как у женщин с СПКЯ и хроническим эндометритом такой зависимости не прослеживается [19]. По данным Масякиной и соавт. (2015 г.), гиперлептинемия может являться фактором развития миомы матки, аденомиоза и гиперплазии эндометрия [60].

Наибольшее количество исследований, направленных на установление роли лептина в развитии воспалительных и гиперпластических заболеваний матки, связаны с изучением уровня данного гормона у пациенток с различными формами эндометриоза. Matarese et al. (2000 г.) выявили повышенный уровень лептина в сыворотке крови и в перитонеальной жидкости у женщин с эндометриозом органов малого таза по сравнению со здоровыми женщинами [21]. Также показано, что уровень лептина в перитонеальной жидкости коррелирует со стадией эндометриоза и ассоциированной с ним болью [61]. Кроме того, высокий уровень лептина наблюдается у женщин с эндометриозом, у которых могут наблюдаться проблемы с имплантацией [43].

При исследовании эктопической эндометриальной ткани выявили повышенную экспрессию лептина в ее клетках [62]. Кроме того, в исследовании с участием бесплодных женщин с эндометриомой яичника установили, что экспрессия рецептора к лептину была выше в тканях яичника с эндометриомой у бесплодных пациенток по сравнению с экспрессией рецептора к лептину в тканях нормального яичника у здоровых женщин. Также у женщин с эндометриомой наблюдали положительную корреляцию между уровнем лептина и экспрессией рецептора к нему и высокую концентрацию лептина в содержимом эндометриомы [63]. В другом исследовании у женщин с эндометриозом установили более высокий уровень сывороточного лептина по сравнению со здоровыми женщинами, при этом не вывили статистически значимых различий концентрации лептина в перитонеальной жидкости. Однако у женщин с эндометриомой яичника наблюдали более низкие значения сывороточного и перитонеального лептина в сравнении с пациентками без эндометриомы [64].

Таким образом, к настоящему моменту данные о роли лептина в развитии гиперпластических и воспалительных заболеваний матки фрагментарны и противоречивы, что может быть обусловлено как использованием различных дизайнов и методов выявления такой зависимости, так и сложностью установления механизмов влияния лептина на развитие рассматриваемой патологии.

Возможные механизмы нарушения функционирования эндометрия, обусловленные действием лептина

В регуляции функциональной активности эндометрия ключевую роль играют маточные натуральные киллеры (uNK), которые обеспечивают процессы ангиогенеза и децидуализации в ткани эндометрия, тем самым способствуя имплантации эмбриона и нормальному течению беременности. Giuliani et al. (2014 г.) выявили, что у женщин c привычным невынашиванием беременности и бесплодием с неустановленной причиной (в том числе у женщин с эндометриозом) наблюдается повышенное содержание в эндометрии цитотоксичных uNK [65].

В норме uNK вырабатывают васкулярно-эндотелиальные факторы роста (VEGF) A и С, являющиеся главным активатором ангиогенеза в эндометрии. Кроме того, uNK вырабатывают такие провоспалительные цитокины, как IFN-γ и TNF-α, которые также способствуют ремоделированию эндометрия [66–68].

Perdu et al. (2016 г.) установили, что у женщин с ожирением по сравнению со здоровыми женщинами с нормальной массой тела наблюдается значимое снижение количества uNK в эндометрии. При этом в uNK, выделенных от женщин с ожирением, обнаружили повышенную экспрессию различных белков, связывающих инсулиноподобный фактор роста (IGFBPs) и тканевого ингибитора металлопротеиназ (TIMP), а также матричных металлопротеиназ (MMPs), которые ингибируют процессы развития трофобласта и ремоделирования сосудов [69]. Однако авторы не установили механизм снижения количества uNK в матке женщин с ожирением. Одним из возможных механизмов может быть влияние повышенной концентрации лептина, которая наблюдается при ожирении, так как лептин способен увеличивать экспрессию MMPs. Так, лептин опосредовано стимулирует экспрессию MMP-2 и 9, которые принимают активное участие в имплантации [70]. Кроме того, в NK лептин активирует созревание, дифференцировку, активацию и цитотоксичность, а также секрецию IL-2, IL-12, фактора роста клеток киллеров и перфорина [48]. Однако на настоящий момент отсутствуют данные о проявлении данных свойств лептина непосредственно на uNK.

Wu et al. (2007 г.) установили, что аномальная экспрессия лептина в эктопических эндометриальных клетках может возникать вследствие пролонгированного гипоксического стресса в перитонеальной полости под действием фактора, индуцированного гипоксией 1α (HIF-1α), который активирует промотор гена лептина [71]. Кроме того, HIF-1α стимулирует индуцированный гипоксией ангиогенез через активацию VEGF [72]. Установлено, что лептин коэкспрессируется с VEGF и стимулирует необходимые ангиогенные факторы, которые в дальнейшем повышают экспрессию VEGF. Так лептин обеспечивает процессы неоваскуляризации и модулирует ангиогенную активность VEGF в этих тканях [73][74]. Стоит отметить, что оптимальный уровень VEGFA необходим для регуляции эндометриальной рецептивности [75]. Роль лептина в развитии эндометриоза может быть объяснена его ангиогенными свойствами, однако описанные выше исследования проводились на эндотелиальных клетках сосудов, но не на клетках эндометрия.

Эндометриоз считается воспалительным заболеванием, при развитии которого наблюдают повышение уровней IL-6, IL-8, TNF-α в перитонеальной жидкости и в сыворотке крови пациенток [76][77]. Повышенная концентрация провоспалительных цитокинов наблюдается также в эндометриальной ткани женщин, страдающих хроническим эндометритом [78][79]. Наличие данных изменений может быть связано с повышенным уровнем лептина у таких пациенток, который обуславливает избыточную экспрессию и секрецию данных цитокинов [49].

Установлено, что индукцию HIF-1α в эндометриальных эпителиальных клетках может вызывать комбинация таких провоспалительных факторов, как IL-1β, TNFα и липополисахариды (ЛПС), которые принимают активное участие в патогенезе хронического эндометрита [80]. В свою очередь лептин обладает провоспалительными свойствами и повышает секрецию TNF-α, IL-6 и IL-12 [49]. Исходя из данных, что рецепторы к лептину экспрессируются в клетках эндометрия [7] и участвуют в процессе имплантации [38], в том числе за счет модулирования экспрессии провоспалительных цитокинов [46], можно предположить, что лептин способен участвовать в патогенезе развития хронического эндометрита. К настоящему моменту отсутствуют исследования, напрямую указывающие на наличие такого механизма. Предположительная схема патогенетического действия повышенного уровня лептина на рецептивность эндометрия представлена на рисунке 1.

Рисунок 1. Предположительный механизм влияния повышенной концентрации лептина на рецептивность эндометрия у женщин с воспалительными и гиперплазивными заболеваниями матки.

Примечание: IL-1β — интерлейкин 1β; TNFα — фактор некроза опухоли α; uNK-клетки — маточные натуральные киллеры; MMP2 — металлопротеиназа 2; MMP9 — металлопротеиназа 9; пунктирными стрелками показаны предположительные пути воздействия лептина на клетки и ткани слизистой оболочки матки.

В нашем предыдущем исследовании мы установили, что у женщин более низкая сывороточная концентрация лептина являлась протективным фактором по отношению к развитию хронического эндометрита. Однако мы не проводили исследований по установлению молекулярных механизмов выявленной зависимости [19].

Таким образом, в нарушении функции эндометрия при гиперпластических и воспалительных заболеваниях эндометрия принимают участие большое количество различных иммунных, ангиогенных и провоспалительных факторов, дисрегуляция которых может быть обусловлена различными механизмами, в том числе аномальной экспрессией, продукцией и активностью лептина. Однако в большинстве исследований прямая роль лептина в регуляции данных факторов установлена для клеток и тканей, находящихся за пределами матки, что требует проведения дополнительных исследований.

Заключение

Лептин представляет собой гормон жировой ткани, основной функцией которого является регуляция энергетического обмена и пищевого поведения. При этом за последние десятилетия накоплены данные об его активном участии в регуляции других функций организма, в том числе репродуктивной. Рецепторы к лептину и сам лептин активно экспрессируются в тканях яичника и эндометрия [32][33], оказывая влияние на выработку стероидных гормонов [13], овуляцию и рецептивность эндометрия [14].

Нормальный уровень лептина в организме женщины зависит не только от количества жировой ткани, но и от стадии менструального цикла, что указывает на зависимость продукции лептина от уровня гипофизарных и половых гормонов [24][25]. Показано, что уровень лептина в сыворотке крови коррелирует с сывороточными концентрациями эстрадиола, прогестерона, тестостерона и ЛГ [26][27].

Уровень лептина и его рецептора в эндометрии также зависит от стадии менструального цикла [36], а его адекватная экспрессия обуславливает процесс имплантации эмбриона [38] в результате регуляции пролиферации, апоптоза и децидуализации эндометриальных клеток, а также участия в функционировании иммунной системы матки [42–44].

В многочисленных исследованиях показана ассоциация уровня лептина с развитием различных хронических воспалительных заболеваний [15], в том числе заболеваний органов малого таза (хронический эндометрит, эндометриоз) [19][21]. Это может быть обусловлено тем, что лептин за счет сродства к IL-6 обладает провоспалительными свойствами [49], а также является активным стимулятором функции лейкоцитов, в том числе натуральных киллеров [16][48].

Известно, что в регуляции функциональной активности эндометрия и имплантации эмбриона ключевую роль играют uNK. У женщин с ожирением наблюдают сниженное количество uNK в эндометрии. При этом данные клетки обладают повышенной цитотоксичностью [65]. Одним из механизмов развития данного состояния может быть повышенный уровень лептина, наблюдающийся при ожирении. В результате может происходить дисрегуляция таких важных факторов имплантации как MMPs, IGFBPs и VEGF, которые обеспечивают процессы децидуализации и неоваскуляризации эндометрия [70][73][74] а также гиперпродукция провоспалительных цитокинов IL-6, IL-12, TNF-α [49].

Несмотря на установленную роль лептина в регуляции процесса имплантации, к настоящему моменту отсутствуют исследования, подтверждающие патогенетическое значение изменений экспрессии и продукции лептина и его рецептора в развитии воспалительных и гиперпластических заболеваний эндометрия. В большинстве исследований установлена ассоциация изменения уровня лептина с наличием заболевания, но не механизмы его воздействия на развитие патологии [19][21][60]. Кроме того, отсутствуют данные о роли лептина в функционировании uNK, а также экспрессии VEGF и провоспалительных цитокинов непосредственно в эндометрии как здоровых женщин, так и женщин с воспалительными и гиперпластическими заболеваниями матки.

Таким образом, согласно имеющимся данным лептин является активным участником регуляции репродуктивной функции у женщин за счет его роли в реализации процесса имплантации эмбриона. Несмотря на установленную ассоциацию уровня лептина с наличием воспалительных и гиперпластических заболеваний эндометрия, на настоящий момент отсутствуют данные о его патогенетической роли в развитии данной патологии. Это обуславливает необходимость проведения дополнительных исследований, направленных на установление роли лептина в регуляции факторов рецептивности эндометрия как в норме, так и при патологических состояниях.

Дополнительная информация

Источники финансирования. Работа выполнена в рамках государственной бюджетной темы №121022500180-6 «Патофизиологические механизмы и генетико-метаболические предикторы сохранения репродуктивного здоровья и долголетия в различных возрастных, гендерных и этнических группах».

Конфликт интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Участие авторов. Иевлева К.Д. — концепция и написание рукописи; Данусевич И.Н. — концепция и редактирование рукописи; Сутурина Л.В. — концепция и редактирование рукописи. Все авторы одобрили финальную версию статьи перед публикацией, выразили согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.

Список литературы

1. Kelesidis T, Kelesidis I, Chou S, Mantzoros CS. Narrative review: the role of leptin in human physiology: emerging clinical applications. Ann Intern Med. 2010;152:93-100. doi: https://doi.org/10.7326/0003-4819-152-2-201001190-00008

2. Zhang F, Chen Y, Heiman M, DiMarchi R. Leptin: structure, function and biology. Vitam Horm. 2005;71:345-372. doi: https://doi.org/10.1016/S0083-6729(05)71012-8

3. Tartaglia LA, Dembski M, Weng X, et al. Identification and expression cloning of a leptin receptor, OB-R. Cell. 1995;83:1263-1271. doi: https://doi.org/10.1016/0092-8674(95)90151-50

4. Guan XM, Hess JF, Yu H, et al. Differential expression of mRNA for leptin receptor isoforms in the rat brain. Mol Cell Endocrinol. 1997;133:1-7. doi: https://doi.org/10.1016/S0303-7207(97)00138-X

5. Ghilardi N, Ziegler S, Wiestner A, et al. Defective STAT signaling by the leptin receptor in diabetic mice. Proc Natl Acad Sci USA. 1996;93(13):6231-5. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.93.13.6231

6. Hoggard N, Mercer JG, Rayner DV, et al. Localization of leptin receptor mRNA splice variants in murine peripheral tissues by RT-PCR and in situ hybridization. Biochem Biophys Res Commun. 1997;232(2):383-7. doi: https://doi.org/10.1006/bbrc.1997.6245

7. LEPR leptin receptor [Internet]. National Library of Medicine. c2022 – [cited 16 May 2023]. Available from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gene/3953

8. Shalitin S, Phillip M. Role of obesity and leptin in the pubertal process and pubertal growth – a review. Int J Obes Relat Metab Disord. 2003;27:869-874. doi: https://doi.org/10.1038/sj.ijo.0802328

9. Shimabukuro M, Ohneda M, Lee Y, Unger RH. Role of nitric oxide in obesity-induced beta cell disease. J Clin Invest. 1997;100(2):290-5. doi: https://doi.org/10.1172/JCI119534

10. Mikhail AA, Beck EX, Shafer A, et al. Leptin stimulates fetal and adult erythroid and myeloid development. Blood.1997;89(5):1507-12

11. Bjørbaek C, Uotani S, da Silva B, Flier JS. Divergent signaling capacities of the long and short isoforms of the leptin receptor. J Biol Chem. 1997;1272(51):3268695. doi: https://doi.org/10.1074/jbc.272.51.32686

12. Reidy SP, Weber J-M Leptin: An essential regulator of lipid metabolism. Comp Biochem Physiol Part A Mol Integr Physiol. 2000;125:285-298. doi: https://doi.org/10.1016/s1095-6433(00)00159-8

13. Hausman GJ, Barbb CR, Lents CA. Leptin and reproductive function. Biochimie. 2012;94:2075-2081. doi: https://doi.org/10.1016/j.biochi.2012.02.022

14. González RR, Caballero-Campo P, Jasper M, et al. Leptin and leptin receptor are expressed in the human endometrium and endometrial leptin secretion is regulated by the human blastocyst. J Clin Endocrinol Metab. 2000;85:4883-4888. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.85.12.7060

15. La Cava A, Matarese G. The weight of leptin in immunity. Nat Rev Immunol. 2004;4(5):371-379. doi: https://doi.org/10.1038/nri1350

16. Pérez-Pérez A, Sánchez-Jiménez F, Vilariño-García T, Sánchez-Margalet V. Role of leptin in inflammation and vice versa. Int J Mol Sci. 2020;21(16):1-24. doi: https://doi.org/10.3390/ijms21165887

17. Hellewell G, Weetman AP, Ross Hamid M, et al. α Neutrophils via Induction of TNF-Leptin Indirectly Activates Human. J Immunol References. 2004;172:1809-1814. doi: https://doi.org/10.4049/jimmunol.172.3.1809

18. Иевлева К.Д., Данусевич И.Н., Сутурина Л.В. Роль лептина и ядерного рецептора PPARγ в патогенезе синдрома поликистоза яичников // Проблемы эндокринологии. — 2021. — Т. 66. — №6. — С. 74–80. doi: https://doi.org/10.14341/probl12620

19. Шарифулин Э.М., Игумнов И.А., Круско О.В., и др. Особенности хронического эндометрита у женщин репродуктивного возраста с синдромом поликистозных яичников // Acta Biomedica Scientifica. — 2020. — Т. 5. — №6. — С. 27. doi: https://doi.org/10.29413/ABS.2020-5.6.3

20. Peng Y, Yang H, Song J, et al. Elevated serum leptin levels as a predictive marker for polycystic ovary syndrome. Front Endocrinol. 2002;13:84516. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2022.845165

21. Matarese G, Alviggi C, Sanna V, et al. Increased leptin levels in serum and peritoneal fluid of patients with pelvic endometriosis. J Clin Endocrinol Metab. 2000;85(7):2483-2487. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.85.7.6703

22. Isidori AM, Strollo F, More M, et al. Leptin and aging: correlation with endocrine changes in male and female healthy adult populations of different body weights. J Clin Endocrinol Metab. 2000;85(5):1954-1962. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.85.5.6572

23. Wauters M, Considine RV, Van Gaal LF Human leptin: from an adipocyte hormone to an endocrine mediator. Eur J Endocrinol. 2000;143(3):293-311. doi: https://doi.org/10.1530/eje.0.1430293

24. Riad-Gabriel MG, Jinagouda SD, Sharma A, et al. Changes in plasma leptin during the menstrual cycle. Eur J Endocrinol. 1998;139(5):528-531. doi: https://doi.org/10.1530/eje.0.1390528

25. Ahrens K, Mumford SL, Schliep KC, et al. Serum leptin levels and reproductive function during the menstrual cycle. Am J Obstet Gynecol. 2014;210(3):248e241-249. doi: https://doi.org/10.1016/j.ajog.2013.11.009

26. Licinio J, Negrao AB, Mantzoros C, et al. Synchronicity of frequently sampled, 24-h concentrations of circulating leptin, luteinizing hormone, and estradiol in healthy women. Proc Natl Acad Sci USA. 1998;95(5):2541-2546. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.95.5.2541

27. Sir-Petermann T, Piwonka V, Perez F, et al. Are circulating leptin and luteinizing hormone synchronized in patients with polycystic ovary syndrome? Hum Reprod. 1999;14(6):1435-1439. https://doi.org/10.1093/humrep/14.6.1435

28. Fungfuang W, Nakada T, Nakao N, et al. Serum leptin concentrations, leptin mRNA expression, and food intake during the estrous cycle in rats. Lab Anim Res. 2013;29(1):1-6. doi: https://doi.org/10.5625/lar.2013.29.1.1

29. Licinio AB, Mantzoros C, Kaklamani V, et al. Synchronicity of frequently sampled, 24-h concentrations of circulating leptin, luteinizing hormone, and estradiol in healthy women. Proc Natl Acad Sci USA. 1998;95(5):2541-2546. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.95.5.2541

30. Zhao Y, Kreger DO, Brannian JD. Leptin concentrations in serum and follicular fluid during gonadotropin stimulation cycles. J Soc Gynecol Invest. 1998;5Sl:50A

31. Childs GV, Odle AK, MacNicol MC, MacNicol AM. The Importance of Leptin to Reproduction. Endocrinol. 2021;162(2):bqaa204. doi: https://doi.org/10.1210/endocr/bqaa204

32. Cioffi JA, Shafer AW, Zupancic TJ, Novel. B219/OB receptor isoforms: possible role of leptin in hematopoiesis and reproduction. Nat Med. 1996;2(5):585-589. doi: https://doi.org/10.1038/nm0596-585

33. Karlsson C, Lindell K, Svensson E, et al. Expression of functional leptin receptors in the human ovary. J Clin Endocrinol Metab. 1997;82:4144-4148. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.82.12.4446

34. Bilbao MG, Di Yorio MP, Faletti AG. Different levels of leptin regulate different target enzymes involved in progesterone synthesis. Fertil. Steril. 2013;99:1460-1466. doi: https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2012.12.01

35. Galvão A, Tramontano A, Rebordão MR, et al. Opposing roles of leptin and ghrelin in the equine corpus luteum regulation: an in vitro study. Mediat Inflamm. 2014;2014:1-13. doi: https://doi.org/10.1155/2014/682193

36. Kitawaki J, Koshiba H, Ishihara H, et al. Expression of leptin receptor in human endometrium and fluctuation during the menstrual cycle. J Clin Endocrinol Metab. 2000;85(5):1946-50. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.85.5.6567

37. González RR, Caballero-Campo P, Jasper M, et al. Leptin and leptin receptor are expressed in the human endometrium and endometrial leptin secretion is regulated by the human blastocyst. J Clin Endocrinol Metab. 2000;85:4883-4888. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.85.12.7060

38. Cervero A, Horcajadas JA, MartÍn J, et al. The leptin system during human endometrial receptivity and preimplantation development. J Clin Endocrinol Metab. 2004;89:2442-2451. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2003-032127

39. Kaplanoğlu S, Kaplanoğlu GT, Çinar Ö, et al. Is leptin receptor expression triggered in the case of embryo transfer to endometrium coculture? Turk J Med Sci. 2019;49:1014-1018. doi: https://doi.org/10.3906/sag-1810-160

40. Malik NM, Carter ND, Murray JF, et al. Leptin requirement for conception, implantation, and gestation in the mouse. Endocrinol. 2001;142:5198-5202. doi: https://doi.org/10.1210/endo.142.12.8535

41. Ramos MP, Rueda BR, Leavis PC, Gonzalez RR. Leptin serves as an upstream activator of an obligatory signaling cascade in the embryo implantation process. Endocrinol. 2005;146:694-701. doi: https://doi.org/10.1210/en.2004-1186

42. Tanaka T, Umesaki N. Leptin regulates the proliferation and apoptosis of human endometrial epithelial cells. Int J Mol Med. 2008;22:683-689. doi: https://doi.org/10.3892/ijmm_00000073

43. Tanaka T, Utsunomiya T, Bai T, et al. Leptin inhibits decidualization and enhances cell viability of normal human endometrial stromal cells. Int J Mol Med. 2003;12:95-98. doi: https://doi.org/10.3892/ijmm.12.1.95

44. Yang YJ, Cao YJ, Bo SM, et al. Leptin-directed embryo implantation: leptin regulates adhesion and outgrowth of mouse blastocysts and receptivity of endometrial epithelial cells. Anim Reprod Sci. 2006;92:155-167. doi: https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2005.05.019

45. Altmae S, Reimand J, Hovatta O, et al. Research resource: interactome of human embryo implantation: identification of gene expression pathways, regulation, and integrated regulatory networks. Mol Endocrinol. 2012;26(1):203-217. doi: https://doi.org/10.1210/me.2011-1196

46. Fukuda J, Nasu K, Sun B, et al. Effects of leptin on the production of cytokines by cultured human endometrial stromal and epithelial cells. Fertil Steril. 2003;80(Suppl. 2):783-787. doi: https://doi.org/10.1016/S0015-0282(03)00776-3

47. Conus S, Bruno A, Simon HU. Leptin is an eosinophil survival factor. J Allergy Clin Immunol. 2005;116(6):1228-1234. doi: https://doi.org/10.1016/J.JACI.2005.09.003

48. Zhao Y, Sun R, You L, et al. Expression of leptin receptors and response to leptin stimulation of human natural killer cell lines. Biochem Biophys Res Commun. 2003;300(2):247-252. doi: https://doi.org/10.1016/S0006-291X(02)02838-3

49. La Cava. A Leptin in inflammation and autoimmunity. Cytokine. 2017;98:51-58. doi: https://doi.org/10.1016/j.cyto.2016.10.011

50. Bruun JM, Pedersen SB, Kristensen K, Richelsen B. Effects of pro-inflammatory cytokines and chemokines on leptin production in human adipose tissue in vitro. Mol Cell Endocrinol. 2002;190(1-2):91-9. doi: https://doi.org/10.1016/s0303-7207(02)00007-2

51. Kirchgessner TG, Uysal KT, Wiesbrock SM, et al. Tumor necrosis factor-alpha contributes to obesity-related hyperleptinemia by regulating leptin release from adipocytes. J Clin Invest. 1997;100:2777-2782. doi: https://doi.org/10.1172/JCI11982

52. Langhans W, Hrupka B. Interleukins and tumor necrosis factor as inhibitors of food intake. Neuropeptides. 1999;33:415-424. doi: https://doi.org/10.1054/npep.1999.0048

53. Grunfeld C, Zhao C, Fuller J, et al. Endotoxin and cytokines induce expression of leptin, the ob gene product, in hamsters. J Clin Invest. 1996;97:2152-2157. doi: https://doi.org/10.1172/JCI118653

54. Granowitz EV. Transforming growth factor-beta enhances and pro-inflammatory cytokines inhibit ob gene expression in 3T3-L1 adipocytes. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1997;240:382-385. doi: https://doi.org/10.1006/bbrc.1997.7663

55. Busso N, So A, Chobaz-Peclat V, et al. Leptin signaling deficiency impairs humoral and cellular immune responses and attenuates experimental arthritis. J Immunol. 2002;168:875-82. doi: https://doi.org/10.4049/jimmunol.168.2.875

56. Matarese G, Sanna V, Lechler RI, et al. Leptin accelerates autoimmune diabetes in female NOD mice. Diabetes. 2002;51(5):1356-61. doi: https://doi.org/10.2337/diabetes.51.5.1356

57. Hoppin AG, M KL, Zurakowski D, et al. Serum leptin in children and young adults with inflammatory bowel disease. J Pediatr Gastroenterol Nutr. 1998;26(5):500-505. doi: https://doi.org/10.1097/00005176-199805000-00003

58. Takabatake N, Nakamura H, Abe S, et al. Circulating leptin in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 1999;159(4I):1215-1219. doi: https://doi.org/10.1164/ajrccm.159.4.9806134

59. Beach RS, Gershwin ME, Hurley LS. Nutritional factors and autoimmunity. III. Zinc deprivation versus restricted food intake in MRL/1 mice – the distinction between interacting dietary influences. J Immunol. 1982;129(6):2686-2692

60. Масякина А.В., Кудрина Е.А. Диагностика и лечение доброкачественных гиперпластических заболеваний матки у женщин с эндрокринно-обменными нарушениями // Архив акушерства и гинекологии им. В.Ф. Снегирева. — 2015. — №3. — С. 20-24.

61. Bedaiwy MA, Falcone T, Goldberg JM, et al. Peritoneal fluid leptin is associated with chronic pelvic pain but not infertility in endometriosis patients. Hum Reprod. 2006;21:788-91. doi: https://doi.org/10.1093/humrep/dei376

62. Wu MH, Chuang PC, Chen SM, et al. Increased leptin expression in endometriosis cells is associated with endometrial stromal cell proliferation and leptin gene-upregulation. Mol Hum Reprod. 2002;8:456-464. doi: https://doi.org/10.1093/molehr/8.5.456

63. Zendron C, Gonçalves HF, Cavalcante FS, et al. Increased expression of the leptin receptor in human ovaries affected by endometrioma and detection of high levels of leptin in the ovarian endometriomal fluid. J Ovarian Res. 2014;7:2. doi: https://doi.org/10.1186/1757-2215-7-2

64. Gonçalves HF, Zendron C, Cavalcante FS, et al. Leptin, its receptor and aromatase expression in deep infiltrating endometriosis. J Ovarian Res. 2015;8:53. doi: https://doi.org/10.1186/s13048-015-0180-0

65. Giuliani E, Parkin KL, Lessey BA, et al. Characterization of uterine NK cells in women with infertility or recurrent pregnancy loss and associated endometriosis. Am J Reprod Immunol. 2014;72(3):262-269. doi: https://doi.org/10.1111/aji.12259

66. Kim M, Park HJ, Seol JW, et al. VEGF-A regulated by progesterone governs uterine angiogenesis and vascular remodelling during pregnancy. EMBO Mol Med. 2013;5(9):1415-30. doi: https://doi.org/10.1002/emmm.201302618

67. Xiong S, Sharkey AM, Kennedy PR, et al. Maternal uterine NK cell-activating receptor KIR2DS1 enhances placentation. J Clin Invest. 2013;123(10):4264-72. doi: https://doi.org/10.1172/JCI68991

68. Kieckbusch J, Gaynor LM, Moffett A, Colucci F. MHC-dependent inhibition of uterine NK cells impedes fetal growth and decidual vascular remodelling. Nat Commun. 2014;5:3359. doi: https://doi.org/10.1038/ncomms4359

69. Perdu S, Castellana B, Kim Y, et al. Maternal obesity drives functional alterations in uterine NK cells. JCI Insight. 2016;1(11):e85560. doi: https://doi.org/10.1172/jci.insight.85560

70. Olea-Flores M, Zuñiga-Eulogio M, Tacuba-Saavedra A, et al. Leptin promotes expression of EMT-related transcription factors and invasion in a src and FAK-dependent pathway in MCF10a mammary epithelial cells. Cells. 2019;8(10):1133. doi: https://doi.org/10.3390/cells8101133

71. Wu MH, Chen KF, Lin SC, et al. Aberrant expression of leptin in human endometriotic stromal cells is induced by elevated levels of hypoxia inducible factor-1. Am J Pathol. 2007;170(2):590-598. doi: https://doi.org/10.2353/ajpath.2007.060477

72. Forsythe JA, Jiang BH, Iyer NV, et al. Activation of vascular endothelial growth factor gene transcription by hypoxia-inducible factor 1. Mol Cell Biol. 1996;16(9):4604-13. doi: https://doi.org/10.1128/MCB.16.9.4604

73. Nwadozi E, Ng A, Strömberg A, et al. Leptin is a physiological regulator of skeletal muscle angiogenesis and is locally produced by PDGFRα and PDGFRβ expressing perivascular cells. Angiogenesis. 2019;22(1):103-115. doi: https://doi.org/10.1007/s10456-018-9641-6

74. Cao R, Brakenhielm E, Wahlestedt C, et al. Leptin induces vascular permeability and synergistically stimulates angiogenesis with FGF-2 and VEGF. Proc Natl Acad Sci USA. 2001;98(11):6390-5. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.101564798

75. Guo X, Yi H, Li TC, et al. Role of Vascular endothelial growth factor (VEGF) in human embryo implantation: Clinical Implications. Biomolecules. 2021;11(2):253. doi: https://doi.org/10.3390/biom11020253

76. Giudice LC, Kao LC Endometriosis. Lancet. 2004;364(9447):1789-99. doi: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(04)17403-5

77. Halme J, Hammond MG, Hulka JF, et al. Retrograde menstruation in healthy women and in patients with endometriosis. Obstet Gynecol. 1984;64:151-154

78. Danusevich IN, Lazareva LM, Nemchenko UM, Kolesnikova LI. Endometrial Cytokines in Women with Reproductive Disorders. International Journal of Biomedicine. 2021;11(4):526-531. doi: https://doi.org/10.21103/Article11(4)_OA20

79. Danusevich IN, Sharifulin EM, Nemchenko UM, Kolesnikova LI. Features of the immune system functioning with persistence of infectious agents in women with chronic endometrial inflammation and reproductive disorders. International Journal of Biomedicine. 2020;10(4):362-368. doi: https://doi.org/10.21103/Article10(4)_OA6

80. Hashimoto Y, Tsuzuki-Nakao T, Kida N, et al. Inflammatory cytokine-induced HIF-1 activation promotes epithelial-mesenchymal transition in endometrial epithelial cells. Biomedicines. 2023;11:210. doi: https://doi.org/10.3390/biomedicines11010210


Об авторах

К. Д. Иевлева
Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека
Россия

Иевлева Ксения Дмитриевна - к.м.н.

664003, Иркутск, ул. Тимирязева, 16


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



И. Н. Данусевич
Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека
Россия

Данусевич Ирина Николаевна - д.м.н.

Иркутск


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



Л. В. Сутурина
Научный центр проблем здоровья семьи и репродукции человека
Россия

Suturina Larisa Victorovna - professor, Doc. of Med. Sc.

Irkutsk


Конфликт интересов:

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов



Дополнительные файлы

1. Рисунок 1. Предположительный механизм влияния повышенной концентрации лептина на рецептивность эндометрия у женщин с воспалительными и гиперплазивными заболеваниями матки
Тема
Тип Исследовательские инструменты
Посмотреть (209KB)    
Метаданные ▾

Рецензия

Для цитирования:


Иевлева К.Д., Данусевич И.Н., Сутурина Л.В. Роль лептина в развитии патологии эндометрия: литературный обзор. Проблемы Эндокринологии. 2024;70(5):106-114. https://doi.org/10.14341/probl13397

For citation:


Ievleva K.D., Danusevich I.N., Suturina L.V. The role of leptin in endometrium disorders: literature review. Problems of Endocrinology. 2024;70(5):106-114. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl13397

Просмотров: 746


ISSN 0375-9660 (Print)
ISSN 2308-1430 (Online)