Перейти к:
Компоненты гамкергической системы и ее функция в эндокринных железах
https://doi.org/10.14341/probl11388
Аннотация
В первые годы после открытия в мозге позвоночных гамма-аминомасляной кислоты (ГАМК), которая позже была признана основным тормозным медиатором ЦНС, считали, что она локализована исключительно в клетках нервной системы. Повышение чувствительности методов определения ГАМК позволило позже установить присутствие аминокислоты, ферментов ее обмена, систем транспорта, а также рецепторов и в клетках иных тканей и органов. Механизм действия ГАМК на периферии опосредован как мембранными рецепторами (в случае передачи нервного импульса или при трофическом действии), так и без их участия (при регуляции внутриклеточных процессов).
Для цитирования:
Мишунина Т.М. Компоненты гамкергической системы и ее функция в эндокринных железах. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):15-23. https://doi.org/10.14341/probl11388
For citation:
Mishunina T.M. Components of the hamkergic system and its function in the endocrine glands. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):15-23. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11388
В первые годы после открытия в мозге позвоночных гамма-аминомасляной кислоты (ГАМК), которая позже была признана основным тормозным медиатором ЦНС, считали, что она локализована исключительно в клетках нервной системы. Повышение чувствительности методов определения ГАМК позволило позже установить присутствие аминокислоты, ферментов ее обмена, систем транспорта, а также рецепторов и в клетках иных тканей и органов. Механизм действия ГАМК на периферии опосредован как мембранными рецепторами (в случае передачи нервного импульса или при трофическом действии), так и без их участия (при регуляции внутриклеточных процессов) [34, 35]. Кроме медиаторной функции, ГАМК в ненейрональных тканях может играть трофическую и паракринную роль в процессах секреции и транспорта биологически активных соединений, подвижности сперматозоидов и их способности к оплодотворению, сокращения матки и маточных труб, механизмах клеточной пролиферации. Особо интересна, учитывая значение ГАМК в контроле нейроэндокринных механизмов деятельности эндокринных желез, роль аминокислоты в процессах регуляции синтеза и секреции гормонов собственно на уровне секреторной клетки.
Перед изложением данных литературы о локализации ГАМК, особенностях строения и функции ферментов ее обмена, транспортеров и рецепторов в эндокринных железах, а также возможной функции аминокислоты в них необходимо напомнить, что ГАМК в нервной ткани синтезируется из глутаминовой кислоты при участии фермента глутаматдекарбоксилазы (ГДК), которая присутствует в мозге в виде 2 изоформ — ГДК^ и ГДК^ (по величине молекулярной массы). Изоферменты различаются по нуклеотидной последовательности, клеточной и субклеточной локализации, иммунореактивности, факторам, контролирующим их активность, и нейрохимическим функциям. При экстремальных условиях определенное значение могут приобретать альтернативные пути синтеза аминокислоты, например образование ее из путресцина.
В дальнейшем метаболизме ГАМК принимает участие ГАМК-аминотрансфераза (ГАМК-Т). Фермент состоит из 2 идентичных субъединиц и локализуется в основном в постсинаптической зоне и несинаптосомальных митохондриях. Следующий фермент обмена ГАМК — дегидрогеназа полуальдегида янтарной кислоты (ДПЯК), которая катализирует реакцию окисления образовавшегося вследствие переаминирования полуальдегида янтарной кислоты. Анализ очищенной ДПЯК показал наличие в составе фермента только 1 субъединицы. На синаптических мембранах нейронов, а также мембранах глиальных клеток идентифицировано до 4 систем транспорта ГАМК и ряда ее аналогов. ГАМК-транспортеры (ГАМК-Тр) Na+ и СГ -зависимы и играют важную роль в реализации ГАМКергической нейротрансмиссии, регулируя высвобождение медиатора в синаптическую щель и обратный захват его нейронами и глиальными клетками.
В ЦНС присутствует несколько типов ГАМК- рецепторов (ГАМК-Р). Медиатор действует в основном через постсинаптический ГАМКЛ-Р, который является составной частью олигомерного рецепторного комплекса ГАМКа—бензодиазепин— СГ-канал (ГАКМа — БД —СГ -РК). Активность его модулируется рядом соединений, в том числе бензодиазепинами, барбитуратами, конвульсанта- ми, нейростероидами. Клонирование генов, которые отвечают за синтез 5 классов субъединиц (а, р, у, ст, р), составляющих этот рецептор, выявило более чем 17 генов млекопитающих, кодирующих функциональное взаимодействие подклассов субъединиц ГАМКа-Р. Комбинация этих субъединиц обусловливает различные функциональные и фармакологические свойства ГАМКа-Р. что, собственно, во многом и определяет многогранную роль ГАМК в регуляции разнообразных функций мозга. Установлено, что у-субъединица этого рецептора связана с тубулярными структурами синапса через так называемые ГАМКА-Р-ассоциированные белки.
ГАМКВ-Р в большинстве своем пресинаптиче- ские, они ассоциируются с Са2+- или К+-каналами через GTP-связывающие белки и модулируют высвобождение иных медиаторов. Известно, что ГАМКВ-Р является димером. Внеклеточный домен ГАМКВ|-Р играет роль в связывании лиганда, а аналогичная структура ГАМКВ2-Р способствует стабилизации рецептора на поверхности мембраны и отвечает за его активацию, повышая аффинность к агонистам. Трансмембранный домен ГАМКВ2-Р имеет место связывания G-белков, а ГАМКВ,-Р экспрессируется в виде ряда изоформ, которые различаются по молекулярной массе.
Не так давно описан еще один тип ГАМК-Р — С, функция которого близка к функции ГАМКД-Р. В то же время структура и фармакологические свойства ГАМКС-Р существенно отличаются от таковых ГАМКа-Р: он состоит из нескольких (2 или 3) р-субъединиц и нечувствителен к агентам, изменяющим активность ГАМКа-Р. Считают, что этот тип рецептора транзиторно экспрессируется в гап- покампе новорожденных крыс, а постоянно присутствует только в сетчатке, где был впервые выявлен. По другим данным, экспрессия р^субъедини- цы ГАМКС-Р с меньшей интенсивностью, чем в сетчатке, происходит во всех регионах мозга, а экспрессия р2-субъединины — только в сетчатке.
Присутствие всех или нескольких компонентов ГАМК-системы показано во многих ненейрональных тканях. Установлено как определенное подобие, так и отличие в строении функциональных, иммунологических и иных характеристик метаболических и рецеторных составляющих ГАМК-системы, которые были выделены из мозга и периферических органов, в частности из эндокринных желез.
Поджелудочная железа
Присутствие достаточно высокой, имеющей видовые отличия, концетрации ГАМК в поджелудочной железе установлено уже более, чем 2 десятилетия тому назад [34]. Последующие иммунологические исследования по изучению взаимосвязи между ГДК поджелудочной железы и развитием инсулинзависимого диабета вызвали повышенный интерес к физиологической роли ГАМК в железе. В настоящее время считают, что ГДК является одной из важнейших мишеней для антигена в развитии аутоиммунных процессов в поджелудочной железе, возможно, в связи с идентичностью аминокислотных последовательностей ГДК и вируса Коксаки [76], который эпидемиологически связывают с развитием инсулинзависимого диабета.
В железе присутствует как ненейрональная, так и нейрональная ГАМК. Последняя в парасимпатическом ганглии железы находится исключительно в глиальных клетках; на мембранах нейронов, однако, присутствуют ГАМКД-Р. Остается неизвестным источник аминокислоты в глиальных клетках, так как они не содержат ГДК [72]. ГАМК локализуется на периферии островков вместе с нервными окончаниями, которые простираются в покров первых [71, 76]. Нервные элементы в островках вместе с ГАМК содержат нейропептид У, что показано и для мозга [71]. В р-клетках островков Лангерганса аминокислота ассоциируется с везикулярным ком- партментом, который отделен от гранул, содержащих инсулин [52, 71, 76].
В р-клетках присутствуют обе формы ГДК [34], которые по своим иммунологическим и биохимическим характеристикам подобны таковым мозга [47]. В большинстве р-клеток ГДК определяется в уникальных тубулоцистернальных комплексах, открытых в сторону комплекса Гольджи [76]. Существует определенная видовая специфика присутствия разных форм фермента: в поджелудочной железе человека, овцы и крысы превалирующей формой является ГДК65 [69, 76], тогда как у мышей в основном экспрессируется ГДКб7 [73]. Количество мРНК ГДК65 в р-клетках железы человека в 200 раз больше, чем мРНК ГДКЙ, [26]. В поджелудочной железе человека, по последним данным, установлена также экспрессия короткого аналога ГДК67 — ГДК25, который не выявляется в мозге и не обладает ферментативной активностью [25]. В опытах на линии р-клеток китайских хомяков было выяснено, что только ГДК^; подвергается посттрансляционной модификации N-концевого отдела аминокислотной последовательности, что может иметь важное значение для связи фермента с мембраной. Модификация цистеиновых остатков в N-конце- вом отделе ГДК65 не способствует этому процессу, а лишение белковой цепочки аминокислотных остатков с 24-го по 31-й приводит к перемещению фермента в цитозоль. Считают, что первые 83 N- концевые аминокислоты ГДК65 содержат сигнал, который направляет белки к комплексу Гольджи [76]. Методом двойной иммунофлюоресценции показано, что 95% ГДК^ локализовано на мембранах малых везикул р-клеток и только 5% фермента находится в глюкагон- и соматостатинсекретирую- щих клетках островков овцы [69]. Экспрессия ГДК65 в поджелудочной железе нормальных мышей и мышей с диабетом снижается с возрастом, у молодых она также имеет половые различия; экспрессия ГДК67 при этом не зависит от возраста [65].
ГАМК-Т-иммунореактивный материал локализуется в р-, но не в а- или 5-клетках островков поджелудочной железы [76]; о ферментах дальнейшего метаболизма ГАМК в железе данных нет.
В опытах на культуре клеток поджелудочной железы млекопитающих и опухолях железы человека установлено присутствие на мембранах р-клеток системы транспорта ГАМК низкой аффинности, чувствительной к АТФ. Высвобождение ГАМК из малых везикул увеличивалось при стимуляции эк- зоцитоза [7], повышении уровня глюкозы [36, 74], но не было связано с секрецией инсулина [74]. В то же время известны данные о снижении высвобождения ГАМК из р-клеток при повышении концентрации или метаболизма глюкозы, что связывают с АТФ-зависимой активацией активности клетки в этих условиях [78].
Существование ГАМКа-Р в поджелудочной железе показано в условиях использования моноклональных антител [70]. По одним данным ГАМКа-Р поджелудочной железы крыс состоит преимущественно из СС|-, р3- и у3-субъединиц [13], по другим — в ней, а также в клетках инсуломы определяются мРНК, кодирующие синтез а,-, а2-, а3-, р,-, Р2-, рз-, 5- и у2-субъединиц ГАМКа-Р, а ткань поджелудочной железы человека содержит только мРНК а2-, Р3- и у-субъединиц [76]. В поджелудочной железе имеет место также экспрессия ГАМКА-Р-ассоции- рованных белков [79], а в р-клетках поджелудочной железы человека, крысы и в культуре р-клеток MIN6 установлено присутствие ГАМКВ1а- и ГАМКВ2-Р [16].
Содержание ГАМК в поджелудочной железе крыс с аллоксановым диабетом составило только 15%, а активность ГДК — 50% от уровня у интактных животных [55], что связано со значительной деструкцией р-клеток вследствие действия аллоксана. Уровень аминокислоты в поджелудочной железе был снижен и у мышей с генетически детерминированным диабетом [71]. В то же время одновременно с уменьшением концентрации ГАМК в островках крыс с экспериментальным стрептозото- циновым диабетом содержание аминокислоты и активность ГДК в островках поджелудочной железы больных диабетом, а также в инсуломе были значительно выше по сравнению с таковыми у здоровых людей [34]. Экспрессия ГДК^ у мышей с диабетом в 5 раз выше, чем у контрольных животных [65].
На первых этапах изучения функции ГАМК в поджелудочной железе предполагали, что ГАМК- шунт может быть альтернативным источником энергии для процесса синтеза инсулина [34]. О возможной роли ГАМК в механизмах секреции свидетельствуют данные о присутствии аминокислоты в малых везикулах, субклеточная локализация которых, спектр белков, содержащихся в них, и состав их мембран указывают на участие этих органел в экзоцитозе [52, 57]. Роль везикулярных белков в механизмах высвобождения ГАМК и инсулина различна [59].
В условиях ингибирования ГАМ К-Т поджелудочной железы гамма-винил-ГАМК внутриклеточное содержание аминокислоты повышалось на 77%, а интенсивность синтеза инсулина — на 69%. В то же время перфузия ГАМК изолированной железы собаки приводила к угнетению секреции инсулина [34], а в случае перфузии другим ингибитором ГАМК-Т — гамма-ацетилен-ГАМК стимуляции глюкозой секреции инсулина не происходило, хотя высвобождение гормона, стимулированное вследствие перфузии 3-фенилпируватом, было сниженным. Авторы предположили, что ГАМК может влиять на секрецию инсулина только при низких концентрациях глюкозы [76]. Внесение в среду культивирования ГАМК или агонистов ГАМКа-Р или ГАМКВ-Р мусцимола и баклофена соответственно не влияло на содержание и секрецию инсулина в клетках островков поджелудочной железы [76]. По другим данным, активация ГАМКВ-Р вследствие действия баклофена угнетала секрецию инсулина, однако эффект этот наблюдался лишь в присутствии глюкозы. Считают, что возможный механизм участия ГАМК в регуляции секреции инсулина включает в себя прямое влияние аминокислоты на Са2+- и К+-каналы, на последние посредством модуляции активности G- белков [16]. Во время секреции инсулина в поджелудочной железе крыс повышалась экспрессия ГДКИ [63]. Кроме того, на трансгенных мышах, экспрессирующих ГДК65 человека, было показано, что у животных с нормальной толерантностью к глюкозе интенсивность экспрессии ферментного белка была наименьшей по сравнению с таковой у животных со сниженным уровнем секреции инсулина или с нарушением толерантности к глюкозе. Результаты этих исследований позволили высказать предположение о том, что ГАМК может функционировать как отрицательный регулятор первой фазы секреции инсулина в ответ на увеличение уровня глюкозы [73].
Секреция соматостатина вследствие перфузии поджелудочной железы ГАМК снижалась, однако внесение аминокислоты в среду инкубации островков поджелудочной железы повышало высвобождение гормона. Последний эффект снимался антагонистом ГАМК.а-Р бикукуллином [34]. В случае культивирования изолированных островков с ГАМК или мусцимолом установлено, что содержание соматостатина в них было выше, а высвобождение гормона ниже, чем в контрольной культуре. В то же время* повышение уровня ГАМК в среде культивирования вследствие действия гамма-ви- нил-ГАМК или аминоуксусной кислоты не влияло на высвобождение соматостатина. В других исследованиях было показано, что ГАМК, мусцимол и баклофен не влияли на базальное или стимулированное высвобождение соматостатина и электрическую активность р-клеток, хотя экзогенная ГАМК и мусцимол снижали секрецию глюкагона, стимулированную низким уровнем глюкозы или аргинином [76]. Кроме того, бикукуллин не предотвращал угнетение секреции глюкагона под влиянием низких концентраций глюкозы. Принимая во внимание эти данные, авторы сделали вывод о том, что нет серьезных подтверждений гипотезы об участии ГАМК в торможении глюкозой высвобождения глюкагона. Это мнение не поддерживают другие исследователи, установившие угнетение секреции глюкагона при инкубации линии р-клеток в присутствии ГАМК, которое предотвращалось внесением в среду инкубации бикукуллина [36].
При исследовании возможных механизмов участия ГАМК в регуляции секреции гормонов поджелудочной железы были получены данные, позволяющие предположить, что аминокислота гипер- поляризует мембраны клеток и предупреждает образование потенциала действия, что совпадает по времени с развитием потока ионов С1_ наружу и снижением активности Са2+-каналов. Последнее приводит к снижению концентрации внутриклеточного Са2+ и ингибированию секреции глюкагона. Все эти эффекты предупреждались бикукуллином и пикротоксином [70]. В то же время, по данным других исследователей, ГАМК продуцировала повышение секреции глюкагона в изолированной ткани поджелудочной железы интактных крыс и крыс с диабетом [6].
В литературе есть сведения об изменении уровня инсулина, глюкагона, соматостатина и С-пеп- тида в крови людей и животных после введения ГАМК, агонистов и антагонистов ее рецепторов [34, 35]. Считают, что влияние этих веществ in vivo на секрецию гормонов поджелудочной железы может быть опосредовано через ЦНС. Доказательством этого, в частности, являются данные о стимуляции секреции гормонов в условиях инфузии мозга средой, содержащей бикукуллин. Однако у больных инсулинзависимым диабетом прием баклофена или ингибитора ферментов метаболизма ГАМК вальпроата натрия не изменял в крови уровень инсулина, С-пептида, глюкагона, соматостатина, а также толерантность к глюкозе [68].
Ряд работ посвящен изучению возможности терапевтического применения ГАМК и препаратов, изменяющих активность ее системы, в механизмах коррекции функции поджелудочной железы. Так, культивирование изолированных островков в присутствии различных концентраций глюкозы приводило к 4—5-кратному повышению экспрессии ГДК65; уровень ГАМК при этом оставался неизменным. Считают, что нормализация гликемии может снижать интенсивность экспрессии аутоантигена в островках, что будет предотвращать их деструкцию [48]. Это мнение поддерживается другими исследователями: инкубация островков в среде, содержащей высокую концентрацию глюкозы, приводила к повышению активности ГДК и уровня ферментативных белков ГДК65 и ГДК67. Этот эффект глюкозы тормозился гамма-винил-ГАМ К. Учитывая эти данные, для уменьшения интенсивности экспрессии аутоантигена, приводящей к торможению аутоиммунного ответа (3-клеток при инсулинзависимом диабете, теоретически предложено применение ингибиторов ГАМК-Т [64].
С целью разработки превентивной терапии инсулинзависимого диабета уже проведены экспериментальные исследования по применению ГАМ- Кергических препаратов для нормализации уровня инсулина и гликемии. Показано, что введение метаболита ГАМК — гамма-оксимасляной кислоты одновременно с никотинамидом в период действия стрептозотоцина предотвращало развитие экспериментального диабета у мышей. При инкубации изолированных островков поджелудочной железы в среде, содержащей стрептозотоцин, гамма-окси- масляную кислоту и никотинамид, секреция инсулина в ответ на внесение в среду глюкозы не нарушалась, что обычно наблюдали при действии одного стрептозотоцина [14]. Следует, однако, подчеркнуть, что в опытах in vivo и in vitro сама гамма- оксимасляная кислота, как и сам никотинамид такого превентивного эффекта не давали. При изучении влияния баклофена было установлено, что прием препарата мышами, у которых развитие диабета запрограммировано генетически, приводило к задержке времени начала заболевания, хотя степень выраженности инсулитов и активность ГДК в поджелудочной железе не изменялись. Авторы считают баклофен перспективным препаратом, действие которого направлено на активацию ГАМКер- гической системы, локализованной в островках поджелудочной железы, с которой ассоциируются как экспрессия аутоантигена, так и модуляция секреции инсулина [10].
Следовательно, несмотря на многочисленность исследований, роль ГАМК в регуляции секреции гормонов поджелудочной железы остается еще в значительной степени неясной [69].
Надпочечники
Концентрация аминокислоты в надпочечниках невелика, активность ГДК и ГАМК-Т также находится на низком, как для периферических тканей, уровне [34]. Однако пересадка ткани мозгового слоя надпочечников в стриатум крыс, у которых эта структура мозга была разрушена вследствие введения каиновой кислоты, вполне компенсировала дефицит ГАМКергических нейронов, что способствовало нормализации нарушенного поведения крыс [46].
ГАМК в мозговом слое надпочечников локализуется в клетках вместе с адреналином и норадре-
налином [31]. В 1-ю неделю после рождения ни в одной из хромаффинных клеток мышат, как и у плодов, ГАМК-иммунореактивный материал не определялся; до 2-ю неделю жизни количество его повышалось до величины, характерной для надпочечников взрослых животных [44]. По другим данным, клетки культуры эмбриональных хромаффинных клеток, пересаженные под субарахноидальную оболочку спинного мозга, были способны экспрессировать ГАМК-иммунореактивный материал [30].
Данные литературы относительно локализации ГДК в надпочечниках противоречивы. Установлено, что только 40% клеток в культуре хромаффинных клеток надпочечников быка реагировали с антителами, специфичными к ГДК из мозга. Использование таких антител для выяснения локализации фермента показало, что ГДК находится исключительно в клетках, секретирующих адреналин [35]. В то же время известны сведения об отсутствии ГДК^ в надпочечниках человека и крыс [76]. Данные последних лет свидетельствуют о том, что в надпочечниках человека, мыши и крысы экспрессируются все 3 формы ГДК — 65, 67 и 25 [25]. При определении активности ГДК биохимическими методами показано ее присутствие в ткани надпочечников крыс, кроликов, человека, коры надпочечников человека, морских свинок, мозговом слое надпочечников коров [1,2, 34]. Часть ГАМК в надпочечниках синтезируется из путресцина [75].
Что касается ГАМК-Т, то хотя она иммунологически и выявляется в культуре хромаффинных клеток быка [76], однако основной катаболизм ГАМК в надпочечниках, похоже, происходит при участии других механизмов. Биофизические и кинетические показатели ГАМК-Т мозгового слоя надпочечников быка близки к таковым для фермента мозга [60], но блокатор ГАМК-Т 2-аминоук- сусная кислота не способна повысить уровень ГАМК в органе, как это происходит в мозге или, например, в поджелудочной железе [76].
'Из мозгового слоя надпочечников быка была частично очищена ДПЯК, фермент подобен нейрональному в отношении pH-оптимума, локализации (в митохондриях), чуствительности к АТФ, аффинности к субстрату и кофактору. Клетки мозгового слоя надпочечников содержат также систему транспорта ГАМК и ее специфические рецепторы, что, как считают, вместе с данными, характеризующими функционирование ферментов обмена ГАМК, может свидетельствовать о регуляторной роли аминокислоты в хромаффинных клетках [76]. ГАМКа-Р здесь связаны с бензодиазепиновыми, и функциональные характеристики этого комплекса очень близки таковым в мозге. В составе ГАМКа-Р определяют а,-, а4-, р,-, р2-, р2- и у2-субъединицы [61], а длинная субъединица ГАМКВ-Р экспрессируется в надпочечниках в виде 2 изоформ — ГАМКВ1аи ГАМКВ|Ь [11, 21].
Выяснено, что высвобождение ГАМК и норадреналина происходит параллельно, хотя ГАМК высвобождается всегда в меньшем количестве. Стимулированное никотином и К+ высвобождение ГАМК зависит от Са2+, а при действии вератридина наблюдали Са2+-независимый, но зависящий от 1Ча+-компонент, который блокировался ингибиторами захвата ГАМК. Считают, что оба эти механизма могут принимать участие в ГАМКергическом контроле секреции катехоламинов [60].
Представление об этой функции ГАМК сформировалось на основании данных о влиянии аминокислоты и ее миметиков на высвобождение катехоламинов и состояние тех процессов, которые непосредственно задействованы в регуляции секреции. ГАМК вызывала Са2+-зависимое повышение высвобождения катехоламинов, что имело дозозависимый характер и составляло 2/3 от уровня никотинстимулированного [76]. Предполагают существование двойной регуляции секреции катехоламинов: активация ее опосредована ГАМКа-Р, а торможение — ГАМКВ-Р. Этот вывод базировался на результатах, свидетельствующих об имитации мусцимолом действия ГАМК, которая в свою очередь снималась бикукуллином и баклофеном. Последний подавлял как никотин- и КС1-стимулиро- ванное, так и базальное высвобождение катехоламинов [49]. Мусцимол одновременно с влиянием на секрецию катехоламинов вызывал также вход Са2+ в клетки; считают, что этот процесс важен именно для инициации высвобождения гормонов [39]. Поскольку повышение уровня внутриклеточного Са2+ зависит от внеклеточной его концентрации, влияние ГАМК на вход Са2+ в клетки может быть опосредовано хотя бы частично потенциал- чувствительными Са2+-каналами [49]. Кроме этого, показано, что ГАМК ингибирует спонтанные колебания концентрации и высвобождения Са2+ в хромаффинных клетках надпочечников крыс. Такое же действие оказывает и мусцимол, но не баклофен. Эффект аминокислоты и агониста ГАМКа- Р снимался бикукуллином [17, 58]. Принимая во внимание эти данные, а также способность ГАМК деполяризировать мембраны хромаффинных клеток, авторы считают значительной ее роль в физиологической регуляции функции мозгового слоя надпочечников [17].
В опытах in vivo баклофен, введенный перед началом плавания, предотвращал стрессовое повышение секреции адреналина и значительно снижал в крови крыс концентрацию дофамина. В то же время введение баклофена животным, находящимся в состоянии покоя, вызывало повышение секреции катехоламинов [4], как и внесение этого агониста ГАМКВ-Р в среду инкубации хромаффинных клеток in vitro [62]. Следовательно, эффект активации ГАМКВ-Р на процессы секреции катехоламинов, а также роль первых в регуляции функции клеток мозгового слоя надпочечников остаются до конца не ясными.
Интересными представляются результаты исследований влияния вальпроата натрия: ингибитор ферментов обмена ГАМК, внесенный в среду культивирования хромаффинных клеток быка, вызывал повышение синтеза белка, экспрессии одной из субъединиц К'ат-каналов, спонтанной и стимулированной активности последних, а также Са2+-ка- налов и секреции катехоламинов. Выводом из этих
данных явилось предположение о том, что вальп- роат натрия (или повышенный уровень ГАМК ?) регулирует экспрессию или активность ионных каналов плазматических мембран хромаффинных клеток, вследствие чего повышается секреция катехоламинов [80].
Модулирующее влияние метаболитов прогестерона на активность ГАМКа—БД—СГ-РК было показано при изучении субмаксимального потока ионов в целых клетках культуры хромаффинной ткани надпочечников быка. Интенсивность этого процесса повышалась в условиях внесения в среду культивирования прегнандиона или 5[3-прегнан- За-ол-20-она, но не прогестерона [18]. Все указанные вещества вызывали в клетке, находящейся под напряжением, внутренний ток, который, как и в случае индукции ГАМК, обратимо блокировался бикукуллином и усиливался фенобарбиталом. Пре- гнанолон также повышал мусцимолстимулирован- ную секрецию катехоламинов в изолированных хромаффинных клетках [61].
Данных о локализации и функции компонентов ГАМК-системы в коре надпочечников значительно меньше. Здесь определяются активность фермента синтеза ГАМК и специфическое связывание аминокислоты плазматическими мембранами, которые, как и в мозге, подвержены сезонным изменениям [1]. Кроме того, активность ГДК и интенсивность связывания аминокислоты изменяются в надпочечниках в условиях физиологической или гормональной модификации интенсивности стероидогенеза, а также при патологии коры надпочечников человека [1—3].
Половые железы
В яичниках животных концентрация ГАМК находится на среднем, как для периферических органов, уровне, в гранулярных клетках она отсутствует. Активность ГДК и ГАМК-Т низка [34]. Считают, что последнее, а также неспособность ингибиторов ГАМК-Т повысить уровень ГАМК в яичниках могут свидетельствовать о наличии в ткани этого органа альтернативных путей метаболизма ГАМК. Аминокислота тут может образовываться из путресцина, однако неизвестно, происходит ли катаболизм ГАМК до спермидина, как неизвестно и присутствие в яичниках ДПЯК.
На мембранах яичников человека и крыс определены специфические высокоаффинные места связывания ГАМК, плотность которых очень высока и может быть сравнима с плотностью мест связывания ГАМК в мозге [8, 34]. С помощью специфических фармакологических препаратов эти места были идентифицированы как ГАМКД-Р, входящие в ГАМКа—БД—СГ-РК и ГАМКВ-Р, причем характеристики их оказались очень близкими к таковым для ГАМК-Р мозга [34]. Интересно, что в яичниках экспрессируются мРНК pi-субъединицы ГАМКа-Р, которые встречаются в некоторых периферических органах и отсутствуют в мозге [41], а также ГАМКд-Р-ассоциированные белки, экспрессия одного из них существенна [79]. мРНК ГАМК- В1-Р экспрессируется в яичниках в виде 2 изоформ [21 ], а интенсивность экспрессии и функция в яичниках ГАМК-Тр, характеристики которого близки к таковым для мозгового, контролируются многими внутриклеточными сигнальными системами, в частности тирозинкиназой и протеинкиназой С [51].
Результаты немногочисленных экспериментов указывают на зависимость концентрации ГАМК и активности ферментов ее обмена в яичниках от уровня половых гормонов. Установлено, что содержание ГАМК в яичниках изменяется в течение эс- трального цикла [35]; гипофизэктомия или овари- эктомия вызывали существенное уменьшение активности ГДК и уровня ГАМК, а беременность сопровождалась прогрессивным увеличением ее содержания [34].
Концентрация ГАМК в семенниках составляет около 2% от таковой в мозге. Среди изоферментов ГДК в сперматоцитах и сперматозоидах, но не в клетках Лейдига или Сертоли присутствует лишь ГДК67, которая по данным гибридизации, иммунологических исследований и определения аминокислотной последовательности очень близка к ферменту мозга [34, 76]. Следует отметить, что в яичках человека экспрессируется и короткая форма ГДК67 - ГДК25 [25]. Как и ГДК, ГАМК-Т из яичка человека подобна ферменту из мозга [34].
Существование ГАМКД-Р на мембранах семенников показано в опытах in vitro при определении влияния ГАМК, агонистов и антагонистов ГАМКД- и ГАМКВ-Р на функцию этого органа [21], а также в серии молекулярно-биологических исследований по клонированию разных форм ГАМК-Р [21, 40, 79]. Так, было установлено, что в семенниках взрослых крыс экспрессируется только мРНК длинной субъединицы ГАМКВ-Р, которая выявляется в 2 [11] или 3 [40] изоформах. В семенниках крыс имеет место экспрессия у,- (но не у2- или у3-) субъединицы ГАМКа-Р. Присутствие исключительно у,-субъединицы ГАМКЛ-Р в семенниках может свидетельствовать об ее специфической функциональной роли [42]. В яичках человека установлена экспрессия всех ГАМКд-Р-ассоциированных белков, связанных с у-субъединицей ГАМКД-Р; интенсивность экспрессии одного из них существенна [79].
В семенниках мышей процесс транскрипции ГАМК-Тр имеет ряд особенностей, которые отличаются от характера его транскрипции в мозге [45, 54]. Этот транспортер также локализован на мембранах сперматидов и сперматозоидов [42]. Транспорт ГАМК Na+- и СГ-зависим, интенсивность его имеет значительные индивидуальные отличия [5].
В опытах на хомяках было показано, что уровень ГАМК в семенниках значительно повышался в препубертатном периоде. Это происходило до начала повышения концентрации тестостерона и одновременно с увеличением концентрации предшественника ГАМК глутаминовой кислоты [32]. При содержании хомяков на протяжении 9—22 нед в условиях короткого светового периода на фоне прогрессирующей инволюции семенников, а также снижения концентрации тестостерона уровень ГАМК и глутаминовой кислоты между 12-й и 18-й неделями наблюдения был резко сниженным. Поз-
же, в период максимальной инволюции репродуктивных органов хомяков, концентрация ГАМК значительно повышалась, тогда как уровень глутаминовой кислоты оставался сниженным. Активность ГДК в семенниках начинала возрастать, начиная с 14-й недели содержания животных в подобных экспериментальных условиях. Авторы считают, что изменение содержания ГАМК в семенниках животных, репродуктивная функция которых зависит от длительности фотопериода, может быть важным ауто- или паракринным модуляторным сигналом для регуляции процессов стероидогенеза в семенниках [33].
Щитовидная железа
Исследование компонентов ГАМК-системы и ее роли в функционировании щитовидной железы проводили в очень ограниченном объеме и только на первых этапах изучения ненейрональной ГАМК (последние работы датированы 1981 г.). Показано, что в щитовидной железе ГАМК может синтезироваться с помощью ГДК и метаболизироваться с помощью ГАМК-Т. Концетрания аминокислоты, как и величина активности ферментов в железе, низка [34].Специфическая система высокоаффинного транспорта ГАМК по своим характеристикам подобна таковой в мозге, локализуется в основном на мембранах фолликулярных и отсутствует на мембранах С-клеток и тучных клеток. In vivo ГАМК не влияла на синтез тиреоидных гормонов и содержание йодида в железе. В то же время при гипотиреозе активность ГАМК-Т повышалась за счет увеличения скорости реакции, тогда как при гипертиреозе она была сниженной, одновременно с этим имела место интенсификация высокоаффинного захвата аминокислоты. Существование активной системы транспорта ГАМК, модуляция ее активности, как и активности ферментов обмена аминокислоты, позволили авторам предположить, что ГАМК может играть определенную роль в функционировании щитовидной железы [37, 38]. Сведения о ГАМК-Р щитовидной железы в литературе отсутствуют.
Тимус
О присутствии ГАМК в тимусе известно давно [34], но первые сведения о ферментах ее обмена в железе появились лишь в последние годы. Синтез ГДК происходит в специализированных клетках железы человека [67], а в тимусе 7-дневных мышат со спонтанным диабетом установлена экспрессия только одного из изоферментов — ГДК67, который считают потенциальным аутоантигеном [66]. Применение биохимических и гистоэнзиматических методов позволило выяснить, что большая часть активности ГАМК-Т в тимусе крыс локализована в стенках кровеносных и лимфатических сосудов, а меньшая ассоциируется с субкапсулярной и медуллярной частью паренхимы. В условиях стимуляции интерлейкином иммунного ответа активность ГАМК-Т повышалась в различных структурах тимуса [23]. В тимусе человека показана низкая экспрессия ГАМКА-Р-ассоциированных белков [79].
Среди возможных функций ГАМК в тимусе одновременно с нейромедиаторной [22] рассматривают и значение молекулы в осуществлении связи между функциями нервной и иммунной систем [24]. Роль ГАМК в эндокринной функции тимуса неизвестна.
Гипофиз
Известно, что ГАМК играет важную роль в регуляции секреции гормонов гипофиза, однако характерные детали функционирования собственно медиаторной системы в гипофизе исследованы недостаточно. Количественно ГАМК определяется в передней, промежуточной и задней долях, но синтезируется, по данным ранних исследований, исключительно в двух последних [9, 77]. Величина активности ГДК составляет лишь около 10% от активности фермента в мозге [56]. В то же время активность ГАМК-Т в передней доле превышает таковую как в иных долях гипофиза, так и в гипоталамусе. Эти биохимические различия содержания ГАМК и активности ферментов ее обмена в разных долях гипофиза связаны с существованием неодинаковых морфофункциональных связей между ними и гипоталамусом, а отсутствие в передней доле ГДК позволило сделать вывод о том, что аденогипофиз секвестирует ГАМК из крови.
Результаты исследований последних лет, однако, свидетельствуют о том, что в клетках аденогипофиза, секретирующих гормон роста, как и во всех эндокринных клетках промежуточной доли гипофиза, экспрессируется ГДК67. С помощью им- муноэлектронной микроскопии установлено, что экспрессия этих белков в соматотропах происходит во внутриклеточных органеллах, запасающих гормон. В клеточной культуре GH3, продуцирующей гормон роста, были идентифицированы гены, кодирующие синтез ГДК^ [56].
Следовательно, существуют 3 источника ГАМК в гипофизе: транспорт из гипоталамуса по системе портальных сосудов в переднюю долю, прямая гипоталамическая иннервация задней и промежуточной долей и синтез из глутамата, который наблюдается не только в двух последних, но и в некоторых клетках передней доли [56]. Следует также отметить, что гипофиз интенсивно накапливает и аминокислоту из периферической крови, в случае когда уровень ее в циркуляции повышен [50]. При изучении процесса интернализации меченой ГАМК в гипофизе крыс было показано, что лактотропы и соматотропы являются единственными клетками аденогипофиза, в которых накапливается меченая аминокислота. При этом метка локализуется в различных внутриклеточных органеллах: плазматических мембранах, комплексе Гольджи, митохондриях и секреторных гранулах [29].
В гипофизе присутствуют все 3 типа ГАМК-Р, локализующиеся (по крайней мере ГАМКа- и ГАМКВ-Р) на всех типах клеток гипофиза и играющие важную роль в регуляции секреции всех гипофизарных гормонов. Выяснение тонких деталей локализации субтипов ГАМК-Р, их структуры и механизмов регуляции — задача дальнейших исследований. В настоящее время известно, что фос-
формирование р2- и р3-субъединиц ГАМКа-Р является важнейшим моментом в проявлении тормозного действия протеинкиназы G на функцию ГАМКа-Р в культуре меланотропов промежуточной доли гипофиза [19]. Протеинкиназа G вовлечена и в механизм влияния оксида азота на функцию ГАМКД-Р'в железе [20].
Фармакологические и функциональные характеристики ГАМКВ-Р гипофиза крыс подобны таковым в мозге [53]. По одним данным, в гипофизе экспрессируется только длинная субъединица ГАМКВ-Р [11], по другим — обе [12]. Активация ГАМКВ-Р гипофиза ингибирует секрецию гормонов in vitro. В основе такого действия лежит отрицательное взаимодействие между ГАМКВ-Р и Са2+- каналами, опосредованное G-белками [53]. Существуют возрастные, а также зависящие от пола модуляции уровня ГАМКВ-Р в передней доле гипофиза. Так, количество связывающих мест у 4-дневных самок существенно выше, чем у самцов этого же возраста, тогда как аффинность их одинакова в гипофизе крыс разного пола. Экспрессия ГАМКв,а-Р и ГАМКВ1в-Р уменьшается в гипофизе самок, начиная с 4-го дня после рождения и до взрослого возраста, при этом экспрессия ГАМКВ1а- Р на ранних стадиях развития значительно превышала таковую ГАМКВ|в-Р. Экспрессия ГАМКВ2-Р незначительна. У самцов характер изменений экспрессии ГАМКВ1а-Р был аналогичен таковому у самок, хотя интенсивность ее была ниже, чем у самок на ранних стадиях развития. Экспрессия ГАМКВ]Ь- Р и ГАМКВ2-Р в гипофизе самцов очень низка [12].
В гипофизе морских свинок и крыс экспрессируются обе р-субъединицы ГАМКС-Р, мРНК рг субъединицы в гипофизе крыс превалирует. При использовании антител, специфичных к субъединице ГАМКС-Р, показана совместная клеточная локализация р,-субъединицы и ТТГ. Предполагают, что ГАМКС-Р принимают активное участие в регуляции секреции ТТГ и что структура и биохимическая регуляция этих рецепторов в гипофизе отличаются от таковых в сетчатке, где они были впервые идентифицированы [15].
С помощью современных методов исследования было показано, что во всех эндокринных клетках промежуточной доли гипофиза, а также соматотро- пах передней доли локализуется везикулярный ГАМК-Тр [56]. Изучение процессов регуляции транспорта ГАМК показало, что интерлейкин-6 не влиял на высвобождение ГАМК из задней доли гипофиза, однако повышал интенсивность этого процесса в условиях предварительной деполяризации мембран клеток. Эффект интерлейкина-6 снижался при инкубации ткани с ингибитором циклооксигеназы, что свидетельствует в пользу медиаторной роли простагландинов в процессе высвобождения ГАМК [28].
По последним данным, по крайней мере 2 типа клеток, а именно клетки промежуточной доли, секретирующие пропиомеланокортин, и соматотропы передней доли гипофиза, способны синтезировать, запасать и секретировать ГАМК. Данные о совместной локализации ГАМК, фермента ее синтеза, ГАМК-Тр, а также гормона роста в одних и тех же субклеточных органеллах позволили предположить, что ГАМК, образовавшаяся в соматотропах, может контролировать высвобождение гормона по паракринному типу регуляции, а присутствие ГАМК-Р на мембранах этих клеток свидетельствует и о возможном аутокринном характере контроля [56]. Сформулирована концепция многоуровневой ГАМКергической регуляции секреции гормонов гипофиза: 1) гипоталамический непрямой механизм, опосредованный ГАМКергическим контролем секреции гипоталамических рилизинг-факто- ров; 2) гипоталамический прямой с вовлечением ГАМК, выделившейся из аксонов нейронов гипоталамуса непосредственно в задней и промежуточной долях; 3) гипоталамический нейрогумораль- ный при участии ГАМК, которая поступает в аденогипофиз по системе портальных сосудов; 4) па- ра/аутокринный с участием ГАМК, которая синтезируется и высвобождается собственно в эндокринной клетке гипофиза. Для решения вопроса о возможном существовании последнего механизма и в других клетках гипофиза необходимы дальнейшие исследования.
Следовательно, метаболизм и транспорт ГАМК, как и структура ее рецепторов в эндокринных железах значительно отличаются от аналогичных показателей в мозге. Возможно, это является особенно важным для реализации тех функций, которые осуществляет ГАМК в указанных органах. Наряду с нейромедиаторной следует отметить роль аминокислоты в регуляции ряда внутриклеточных и мембранных процессов, участвующих в синтезе и секреции гормонов. Выяснение всех аспектов этой проблемы приблизит решение вопроса о возможной коррекции нарушений функции эндокринных желез препаратами, влияющими на активность ГАМКергической системы
Список литературы
1. MuutyHina Т. М., Кононенко В. Я., MiKoiua О. С., Тронь- ко М. Д. И Ф1зюл. журн. — 1994. — N 3. — С. 9-15.
2. Muiuynina Т. М., Кононенко В. Я., Рибаков С. Й. // Ендок- ринолопя. — 2000. — Т. 5, N 1. — С. 16-21.
3. Muiuynina Т. М., Кононенко В. Я. // Пробл. эндокринол. —2001- N 3. - С. 33-36.
4. Muiuynina Т. М., Калииченко О. В. // Ф1зюл. журн. — 2001.Т. 47, N 5. - С. 47-53.
5. Aanesen A., Fried G., Anderson Е., Gottlieb С. // Biol. Reprod.1996. - Vol. 54, N 4. - P. 841-846.
6. Adeghate E., Ponery A., Pallet D., Singh J. // Tissue Cell. —2000- Vol. 32, N 3. - P. 266-274.
7. Ahnerthilger G., Stadtbaumer A., Strubing C. et al. // Gastroen¬terology. - 1996. - Vol. 110, N 5. - P. 1595-1604.
8. Akinci M., Schofield P. // Neurosci. Res. — 1999. — Vol. 35, N 2. - P. 145-153.
9. Apud J., Cocchi D., Locatelli Y. et al. // Psychoneuroendo- crinology. — 1989. — Vol. 14, N 1—2. — P. 3-17.
10. Beales P., Hawa M., Williams A. et al. // Acta Diabetol. — 1995. - Vol. 32, N 1. - P. 53-56.
11. Belley M., Sullivan R., Reeves A. et al. // Bioorg. Med. Chem.1999. - Vol. 7, N 12. - P. 2697-2704.
12. Bianchi M., Rey-Roldan E., Better B. et al. // Neuropharma¬cology. - 2001. - Vol. 40, N 2. - P. 185-192.
13. Borboni P.. De Steforpus P., Fusco A. et al. // Diabetes. — 1992. - Vol. 41. - Suppl. 1. - P. 46.
14. Bouix O., Reynier M., Guintrandhugret R., Orsetti A. // Horm. Metab. Res. -1995. - Vol. 27, N 5. - P. 216-220.
15. Boue-Grabot E., Taupignon A., Tramu G., Garret M. // Endo¬crinology. — 2000. — Vol. 141. — P. 1627-1632.
16. Brice N., Varadi A., Ashcroft S., Molnar E. // Diabetologia. —2002- Vol. 45, N 2. - P. 242-252.
17. Busik J., Nakamura M., Abe Y. et al. // Brain Res. — 1996. — Vol. 739, N 1-2. - P. 97-103.
18. Callahan H., Cottrell G., Hather N. et al. // J. Physiol. — 1986. - Vol. 281. - P. 117.
19. Castel H., Louiset E., Anouar Y. et al. // J. Neuroendocrinol.2000. - Vol. 12, N 1. - P. 41-52.
20. Castel H., Jegou S., Tonon M., Vandry H. // Endocrinology. — 2000. - Vol. 141, N 9. - P. 3451-3460.
21. Castelli V., Ingianni A., Stefanini E., Gessa G. // Life Sci. —1999- Vol. 64, N 15. - P. 1321-1328.
22. Cavallotti D., Artico M., De Sand S., Cavallotti C. // Hum. Im¬munol. - 1999. - Vol. 60, N 11. - P. 1072-1079.
23. Cavallotti D., Artico M., Cavallotti C. // Int. J. Immunophar- macol. - 2000. - Vol. 22, N 9. - P. 719-728.
24. Cavallotti D., Artico M., D’Andrea V, Cavallotti C. // Hum. Immunol. - 2000. - Vol. 61, N 7. - P. 697-704.
25. Chessler S., Lernmark A. // J. Biol. Chem. — 2000. — Vol. 275, N 7. - P. 5188-5192.
26. Cram D., Faulner-Jones B., Kun J., Harrison L. // Endocrinol¬ogy. - 1995. - Vol. 136, N 3. - P. 1111-1119.
27. Delasheras M., Valcarcel A., Peres L. // Biol. Reprod. — 1997.Vol. 56, N 4. - P. 964-968.
28. De Laurentiis A., Pisera D., Lasaga M. et al. // Neuroimmu- nomodulation. — 2000. — Vol. 7, N 2. — P. 77-83.
29. Duvilanski D., Perez R, Seilicovich A. et al. // Tissue Cell. —2000- Vol. 32, N 4. - P. 284-292.
30. Eaton M., Martinez M., Normally S. et al. // Cell. Transplant.2000. - Vol. 9, N 5. - P. 637-656.
31. Eranzoni M., Sapei M., Beltramo M., Calas A. // Neuroendo¬crinology. — 1990. — Vol. 52. — Suppl. 1. — P. 51.
32. Frungieri M., Gonzalezcalvar S., Chabdrashekar V. et al. // Int. J. Androl. - 1996. - Vol. 19, N 3. - P. 164-170.
33. Frungieri M., Gonzalezcalvar S., Calandra R. // Int. J. Androl.1996. - Vol. 19, N 3. - P. 171-178.
34. GABA-Ergic Mechanisms in Mammalian Periphery / (Eds S. Erdo, N. Bowery. — New York, 1986.
35. GABA Outside the CNS / Ed. S. Erdo — New York, 1992.
36. Gaskins H., Baldeon M., Selassie L., Beverly J. // J. Biol. Chem. - 1995. - Vol. 270, N 51. - P. 30286-30289.
37. Gebauer H, Crailsheim K. // Acta Endocrinol. — 1981. — Vol. 97. - Suppl. 243. - P. 58.
38. Gebauer H, Pabst A. // Cell Tissue Res. - 1981. - Vol. 220, N 4. - P. 873-879.
39. Gonzalez M., Oset-Gasque M., Castro E. et al. // Neuro¬science. — 1992. — Vol. 47, N 2. — P. 487-494.
40. He X., Hu J., Wu Q. et al. // Biochem. Biophys. Res. Com¬mun. - 2001. - Vol. 283, N 1. - P. 243-247.
41. Hedblom E., Kirkness E. // J. Biol. Chem. — 1997. — Vol. 272, N 24. - P. 15246-15350.
42. Hu J., He X, Yan Y. Ц Cell Res. - 2000. - Vol. 10, N 1. - VP. 51-58.
43. Hu J., Yan Y. // Cell Res. - 2002. - Vol. 12, N 1. - P. 33- 37.
44. Iwasa K, Oomori Y., Tanaka H. // Arch. Histol. Cytol. —1998- Vol. 61, N 4. - P. 373-382.
45. Jin X., Huang F., Yang N. et al. // Cell Res. — 2001. — Vol. 11, N 2. - P. 161-163.
46. Jousselin-Hosaja M., Venault P., Tobin C. et al. // Behav. Brain Res. - 2001. - Vol. 121, N 1-2. - P. 29-37.
47. Katoh J., Taniguchi H., Ogura M. et al. // Experientia. — 1995. - Vol. 51, N 3. - P. 217-219.
48. Katoh J., Taniguchi H.. Kasuga M. // Life Sci. — 1995. — Vol. 56, N 21. - P. 1799-1805.
49. Kitayama S., Morita K, Dohi T., Tsujimoto A. // Biochim. Bio¬phys. Acta. - 1990. - Vol. 1053, N 2-3. - P. 189-194.
50. Kuroda E., Watanabe V., Tamayama T., Shimada M. 11 Mi- crosc. Res. Tech. — 2000. — Vol. 48, N 2. — P. 116-126.
51. Law R., Stafford A., Quick M. // J. Biol. Chem. — 2000. — Vol. 275, N 31. - P. 23986-23991.
52. Llona I. // Neurochem. Int. — 1995. — Vol. 27, N 3. — P. 219-226.
53. Lux-Lantos V., Becu-Villalobos D., Bianchi M. et al. // Neu¬roendocrinology. — 2001. — Vol. 73, N 5. — P. 334-343.
54. Ma Y„ Hu J., Zhou X. et al. // Cell Res. - 2000. - Vol. 10, N 1. - P. 59-69.
55. Malaisse-Lagae E, Giroix M., Malaisse W. // Med. Sci. Res.1992. - Vol. 20, N 13. - P. 489-490.
56. Mayerhofer A., Hohne-Zell B., Gamel-Didelon K. et al. // FASEB. J. - 2001. - Vol. 15, N 6. - P. 1089-1091.
57. Nagamatsu S., Nakamichi Y, Watanabe T. et al. // J. Cell Sci.2001. - Vol. 114. N 1. - P. 219-227.
58. Nakamura M. // Jpn. J. Vet. Res. - 1995. - Vol. 43, N 1. - P. 43.
59. Ohara-Imaizumi M., Nakamichi Y., Ozawa S. et al. // Bio¬chem. Biophys. Res. Commun. — 2001. — Vol. 283, N 5. — P. 1025-1030.
60. Oset-Gasque M., Castro E., Gonzalez M. // J. Neurosci. Res.1990. - Vol. 26, N 2. - P. 181-187.
61. Parramon M., Gonzalez M., Oset-Gasgue M. // Br. J. Pharma¬col. - 1995. - Vol. 116, N 2. - P. 1875-1881.
62. Parramon M., Gonzales M., Herrero M., Oset-Gasque M. // J. Neurosci. Res. — 1995. — Vol. 41, N 1. — P. 65-72.
63. Petersen J., Russel S., Marshall M. // Diabetes. — 1993. — Vol. 42, N 3. - P. 484-495.
64. Petersen J., Rimvall K., Jorgensen P. et al. // Diabetologia. —1998- Vol. 41, N 5. - P. 530-535.
65. Pleau J., Esling A., Van Acker C., Dardenne M. // Biochem. Biophys. Res. Commun. — 1996. — Vol. 254, N 3. — P. 747-753.
66. Pleau J., Esling A., Geutkens S. et al. // Biochem. Biophys. Res. Commun. - 2001. - Vol. 283, N 4. - P. 843-848.
67. Pugliese A., Brown D., Garza D. et al. // J. Clin. Invest. —1999- Vol. 107, N 5. - P. 555-564.
68. Quatraro A., Consoli G., Stante A. et al. // Acta Diabetol. — 1986. - Vol. 23, N 1. - P. 23-28.
69. Reddy S., Elliott R., Poole C., Ross J. // Gen. Compar. Endo¬crinol. - 1997. - Vol. 106, N 3. - P. 301-309.
70. Rorsman P., Ashrroft F., Berggren P. // Biochem. Pharmacol.1991. - Vol. 41, N 12. - P. 1783-1790.
71. Saraviafemandez E, Faveeuw C., Blasquezbulant C. et al. // Endocrinology. - 1996. - Vol. 137, N 8. - P. 3497-3506.
72. Sha L., Miller S., Szurzewski J. // Am. J. Physiol. — 2001. — Vol. 280, N 3. - P. G324-G331.
73. Shi Y, Kanaani J., Menard-Rose V. et al. // Am. J. Physiol. — 2000. - Vol. 279, N 3. - P. E684-E694.
74. Smismans A., Schuit E, Pipeleer D. // Diabetologia. — 1997.Vol. 40, N 12. - P. 1411-1415.
75. Testore G., Cravanzola C., Bedino S. // Int. J. Biochem. —2000- Vol. 31, N 7. - P. 777-786.
76. Tillakaratne N., Medina-Kauwe L., Gibson R. // Comp. Bio¬chem. Physiol. - 1995. - Vol. 112, N 2. - P. 247-263.
77. Trabucchi M., Chartrel N., Pelletier G. et al. // J. Comp. Neu¬rol. - 2000. - Vol. 419, N 2. - P. 223-232.
78. Winnock E, Ling Z., De Proft R. et al. // Am. J. Physiol. —1999- Vol. 282, N 4. - P. E937-E942.
79. Xin Y., Yu L., Chen Z. et al. // Genomics. — 2001. — Vol. 74, N 3. - P. 408-413.
80. Yamamoto R., Yanagita T., Kobayashi H. et al. // J. Neuro¬chem. - 1997. - Vol. 68, N 4. - P. 1655-1662.
Об авторе
Т. М. МишунинаИнститут эндокринологии и обмена веществ им. В. П. Комиссаренко АМН Украины
Украина
Рецензия
Для цитирования:
Мишунина Т.М. Компоненты гамкергической системы и ее функция в эндокринных железах. Проблемы Эндокринологии. 2004;50(2):15-23. https://doi.org/10.14341/probl11388
For citation:
Mishunina T.M. Components of the hamkergic system and its function in the endocrine glands. Problems of Endocrinology. 2004;50(2):15-23. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11388

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).