Перейти к:
Становление репродуктивной системы у потомства крыс, больных стрептозотоциновым диабетом
https://doi.org/10.14341/probl11808
Аннотация
В исследованиях, направленных на изучение сахарного диабета, особое место занимает диабет у беременных, так как он является причиной нарушения обменных процессов не только в организме матери, но и у ее потомства. Независимо от вида диабета у матери развитие плода протекает при метаболических процессах, отличных от нормы, что оказывает патогенное влияние на формирование всех органов и функциональных систем молодого организма. Все проблемы, связанные с потомством матерей, больных диабетом, объединяются понятием «диабетическая фетопатия».
К настоящему моменту по этому вопросу уже накоплено немало данных, которые в подавляющем большинстве являются клиническими наблюдениями и включают в себя широкий спектр характеристик как анатомических отклонений от нормы, так и нарушений жизнедеятельности различных функциональных систем организма. Одной из таких систем является репродуктивная система. Состоянию ее при сахарном диабете уделяется очень мало внимания, а также практически отсутствуют какие-либо данные о влиянии диабета родителей на становление и функционирование репродуктивной системы у потомства.
Целью настоящей работы явилось изучение процессов формирования всех звеньев репродуктивной системы и прежде всего механизмов гипоталамического контроля гонадотропной функции гипофиза у потомства больных диабетом крыс.
Для цитирования:
Бабичев В.Н., Шишкина И.В. Становление репродуктивной системы у потомства крыс, больных стрептозотоциновым диабетом. Проблемы Эндокринологии. 1994;40(2):60-62. https://doi.org/10.14341/probl11808
For citation:
Babichev V.N., Shishkina I.V. Development of the reproductive system in the progeny of rats with streptozotocin diabetes. Problems of Endocrinology. 1994;40(2):60-62. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11808
В исследованиях, направленных на изучение сахарного диабета, особое место занимает диабет у беременных, так как он является причиной нарушения обменных процессов не только в организме матери, но и у ее потомства. Независимо от вида диабета у матери развитие плода протекает при метаболических процессах, отличных от нормы, что оказывает патогенное влияние на формирование всех органов и функциональных систем молодого организма. Все проблемы, связанные с потомством матерей, больных диабетом, объединяются понятием «диабетическая фето- патия».
К настоящему моменту по этому вопросу уже накоплено немало данных, которые в подавляющем большинстве являются клиническими наблюдениями и включают в себя широкий спектр характеристик как анатомических отклонений от нормы, так и нарушений жизнедеятельности различных функциональных систем организма [1,7, 10]. Одной из таких систем является репродуктивная система. Состоянию ее при сахарном диабете уделяется очень мало внимания, а также практически отсутствуют какие-либо данные о влиянии диабета родителей на становление и функционирование репродуктивной системы у потомства.
Целью настоящей работы явилось изучение процессов формирования всех звеньев репродуктивной системы и прежде всего механизмов гипоталамического контроля гонадотропной функции гипофиза у потомства больных диабетом крыс.
Материалы и методы
Работу проводили на беспородных самках и самцах белых крыс, которых содержали в условиях температурного режима (22—25 °C) и стабильной освещенности (свет с 5 до 19 ч). Все животные являлись потомством 4 вариантов родительских пар. 1-я группа — потомство здоровых родителей; 2-я группа — потомство здоровой самки и больного стрепто- зотоциновым (СТЗ) диабетом самца; 3-я группа — потомство больной СТЗ-диабетом самки и здорового самца; 4-я группа — потомство больных СТЗ-диабетом обоих родителей. Животных (родителей), больных СТЗ-диабетом, получали в результате внутрибрюшинного введения СТЗ в дозе 50 мг на 1 кг массы тела в 0,2 мл цитратного буфера pH 4,5. Больными считали животных, у которых концентрация глюкозы в крови через 10 дней после введения СТЗ составляла не менее 8 ммоль/л (в норме 2,3—3,1 ммоль/л).
Было проведено 3 серии экспериментов. В первой серии с целью индуцирования преовуляторной волны ЛГ самкам
Таблица 1
Концентрация половых гормонов и Л Гу неполовозрелых самок, обработанных Е2 и П, и самцов крыс, кастрированных в 5-дневном возрасте (М±т)
Группа животных |
Гормон |
|||
группа родительских пар |
потомство |
Ег, пг/мл |
Т, нг/мл |
ЛГ, нг/мл |
• |
Самки (8): И |
12,48± 1,36 |
0.44=4=0.10 |
4,85±0,81 |
И + Е2+П |
9,77±0,87 |
0,38±0,09 |
30,75±2,46 |
|
Самцы (8): И |
15,10±1,65 |
1,04 ±0,28 |
1.55±0,36 |
|
кастрированные |
1,4=4:0.31 |
0,15±0,05” |
8,90± 1,45 |
|
2 |
Самки (8): И |
11,54=4:1.21 |
0,33±0,07 |
3,97±0,65 |
И + Еа+П |
10,90±0,98 |
0,37±0,08 |
23,31 ±2,91 |
|
Самцы (7): И |
13,51± 1.56 |
1,21 ±0,31 |
1,24±0,29 |
|
кастрированные |
1,12±0,18** |
0.14±0,03** |
7.15± 1.56 |
|
3 |
Самки (7): И |
12,79± 1,24 |
0,41 ±0,09 |
4,05±0.91 |
И+Е,+П |
12,13± 1,30 |
0,36±0,07 |
5,21 ±1,05* |
|
Самцы (6): И |
14,0±1,48 |
1.15=4=0.24 |
1,31 ±0,34 |
|
кастрированные |
1.33±0,29** |
0,12±0,03** |
1,64 ±0,45* |
|
4 |
Самки (.7): И |
10.25=4=1.48 |
О.43±О,11 |
4.41 ±0.70 |
И + Е.+П |
1 1.48-t 1.30 |
0,40±0,09 |
5,85± 1.10* |
|
Самцы (6): И |
12,20± 1.19 |
1,25±0,26 |
1.19±0,22 |
|
кастрированные |
. 1 1,00±0,15** |
0,17 ±0,04** |
1,27±0,25* |
Примечание. И — интактные животные. Достоверность различий: одна’звездочка — р<0,05 в сравнении с 1-й и 2-й группами; две звездочкЛ р<0,01 в сравнении с интактными самцами. Здесь и в табл. 2 в скобках — число животных.
Таблица 2
Концентрация Ег, Т и Л Г в сыворотке крови у взрослого потомства интактных и больных СТЗ-диабетом родителей (М±т)
Группа |
ЖИВОТНЫХ |
Гормон |
||
группа родительских пар |
потомство |
Ej, пг/мл |
Т. нг/мл |
ЛГ, нг/мл |
Самки (10): Д, |
13,17± 1,56 |
0,45±0,12 |
6,83 ±1,03 |
|
п 17 ч |
П,49±1,15 |
0,31 ±0,07 |
39,31 ±2,45 |
|
Самцы (10) |
9,55±0,87 |
2,90±0,47 |
2,24±0,34 |
|
о |
Самки (9): д. |
11,71 ±1,03 |
0,38±0,08 |
5,45± 1.06 |
Z |
П|7 ч |
9,87±1,00 |
0,25±0,02 |
36.20±2,31 |
Самцы (10) |
8,80 ±0,76 |
2.77±0.41 |
1,88±0,30 |
|
о |
Самки (8): Д. |
12,15± 1,29 |
0,39±0,08 |
4,70±0,95* |
о |
П|7 ч |
10,08± 1,15 |
0,29±0,04 |
28,15±2,33* |
Самцы (8) |
8.11 ±0,84 |
2,49±0,38 |
1,11±0,25* |
|
Самки (8): Д| |
12,85±1,4 1 |
0,42±0,10 |
4,43±0,86* |
|
П|7ч Самцы (9) |
10.56± 1.06 |
0,24±0,03 |
26,72±2,15* |
|
9,05±0,95 |
2,71 ±0,39 |
1,32±0,29* |
Примечание. Звездочка — р<0,01 в сравнении с интактными животными (1-я группа).
(потомство всех групп), достигшим 26-дневного возраста, в 10 ч вводили эстрадиол-бензоат (ЕгБ) в дозе 2,5 мкг на 100 г массы тела, а через 48 ч — прогестерон (П) в дозе 2,5 мг на 100 г массы тела. Самок декапитировали в возрасте 28 дней в 17 ч. Самцов тех же групп кастрировали в возрасте 5 дней и забивали в возрасте 7 дней, когда в результате действия уже сформировавшихся обратных связей кастрация вызывает резкое повышение уровня ЛГ.
Во второй серии экспериментов животных забивали в возрасте 90 дней, причем самок в 10 ч в стадии Д, ив 17 ч в стадии П. В сыворотке крови животных всех групп определяли содержание ЛГ радиоиммунологическим методом с использованием наборов № 1 ДДК (США) и выражали концентрацию в нанограммах № 1 ДДК-rLH RP-3 на 1 мл сыворотки Кроме того, определяли содержание эстрадиола (Ег) и тестостерона (Т) наборами для радиоиммунологического анализа стерон Т-|251 (Минск) и EsTP-Direct «Sorin» и TESTO-CT (Франция). Уровень инсулина в крови определяли с помощью набора рио-ИПС-ПН-|251 и выражали в мкЕД на 1 мл сыворотки. В цельной крови и моче измеряли концентрацию глюкозы глюкозооксидазным методом на приборе «Эксан», которую выражали в ммоль на 1 л. В третьей серии половозрелых самцов декапитировали в 10 ч. Извлеченные гипофизы делили на 2 половинки и по 2 половинки разных гипофизов после взвешивания помещали в инкубационные флаконы с 1 мл среды 199, насыщенной в атмосфере 95 % СОг (8|. Инкубацию проводили при 37 °C при постоянном встряхивании. Через 30 мин среду заменяли на свежую и добавляли ЛГ-рилизинг-гормон (ЛГ-РГ) в дозе 50 нг/мл. Каждый час брали аликвоты по 25 мкл, в которых определяли содержание Л Г.
Результаты и их обсуждение
У новорожденных всех групп в первые сутки жизни определяли концентрацию глюкозы в моче.
- У потомства как здоровых родителей, так и во всех других группах эта величина не превышала 2,5 ммоль/л.
У 28-дневного потомства — самок всех групп концентрация половых гормонов не изменялась в результате предварительной обработки Ег и П (табл. 1). Концентрация Л Г у самок первых двух групп увеличивалась в 6—7 раз, а у самок 3-й и 4-й групп практически не менялась. У 7-дневного потомства-самцов в результате кастрации в 5-дневном возрасте отмечено (см. табл. 1) снижение уровня половых гормонов в 9—11 раз во всех группах животных, в то же время концентрация ЛГ повышалась в 16 раз только у животных первых 2 групп, а у животных 3-й и 4-й групп оставалась без изменений.
Концентрация ЛГ в среде при инкубации аденогипофизов половозрелых самцов, являющихся потомством 4 групп родительских пар (базальная /—4 и при нагрузке ЛГ-РГ — 1а — 4а).
По оси ординат — содержание ЛГ в среде (в нг на I мг гипофиза); по оси абсцисс — время инкубации (в ч). Звездочка — р<0,05 при сравнении групп 3, За, 4, 4а, с 1,1 а.
Концентрация инсулина и глюкозы в крови у самок и самцов-потомков не различалась между группами и была в пределах 21,5 мкед/мл и 2,9 ммоль/л соответственно.
У половозрелого потомства-самок и самцов концентрация половых гормонов не зависела от состояния углеводного обмена у родителей (табл. 2) и была сходной между группами — у самцов и группами в одинаковых стадиях цикла — у самок.
Уровень ЛГ у потомства родительских пар 3-й и 4-й групп был в 1,5 раза ниже, чем у ин- дактных животных. Концентрация инсулина и глюкозы в крови у всех животных этих групп составляла 26,5 мкед/мл и 3,7 ммоль/л соответственно.
В третьей серии опытов, проводимых in vitro, определяли чувствительность гонадотрофов аденогипофиза к ЛГ-РГ у половозрелых самцов — потомства всех групп. Было показано (см. рисунок), что у самцов — потомства родительских пар 1-й и 2-й групп как уровень базальной секреции ЛГ в течение всего периода инкубации, так и ответ на ЛГ-РГ сходен, а в 3-й и 4-й группах уровень базальной секреции и чувствительность к ЛГ-РГ были 1,5— 1,7 раза снижены по сравнению с потомством здоровых родителей.
Результаты наших экспериментов показали, что диабет отцов не влияет на формирование всех уровней репродуктивной системы потомства обоего пола. В то же время у потомства больных СТЗ-диабетом матерей отмечены отклонения от нормы в развитии этой системы. Для нормального функционирования любого нейроэндокринного комплекса необходима координированная деятельность периферических желез и центрального его отдела, осуществляемая по механизму обратных связей. У самок крыс к 26-му дню жизни, а у самцов к 5-му дню жизни уже полностью сформирована в соответствии с полом система обратных связей, способная регулировать секрецию гонадотропинов [3, 6].
Полученные нами данные свидетельствуют, что у потомства — самок родительских пар 3-й и 4-й групп к 26-му дню жизни еще не сформировалась система положительной обратной связи в гипо- таламо-гипофизарно-гонадных отношениях, так как у обработанных Ег и П животных не наблюдался пик содержания ЛГ, характерный в аналогичных условиях для интактных особей. У потомства — самцов этих же групп, кастрированных в 5-дневном возрасте, также отсутствует повышение уровня ЛГ, наблюдаемое у кастрированных интактных 5-дневных самцов крыс.
Из литературы известно, что в организме плодов больных диабетом матерей наблюдается, с одной стороны, повышенное поступление глюкозы и гиперинсулинемия, а с другой — пониженное и диспропорциональное поступление аминокислот и нарушение состава белков по отношению к срокам внутриутробного развития [4, 9]. В ряде работ отмечено уменьшение массы мозга и его функциональное недоразвитие [2, 5]. По-видимому, нарушенный белковый обмен на протяжении всего развития плода и особенно в период формирования нейроэндокринных структур гипоталамуса является причиной задержки в развитии гипоталамо-гипофизарно-гонадной системы как в целом, так и на отдельных ее уровнях. В частности, в опытах in vitro нами было показано снижение и базального уровня ЛГ и чувствительности гонадотрофов гипофиза к ЛГ-РГ у потомства больных матерей на протяжении всего времени исследования. Снижение уровня ЛГ в 1,5 раза наблюдалось в этих же группах и в сыворотке половозрелых животных. В то же время концентрация половых гормонов была одинаковой соответственно у самцов и самок, являющихся потомством родительских пар всех групп.
Подтверждением имеющихся отклонений от нормы в механизме регуляции гипоталамусом секреции гонадотропинов является и тот факт, что у 75 % самок — потомства больных диабетом матерей наблюдается нестабильный половой цикл. Тем не менее 95 % самцов и самок этих групп дали 2-е поколение потомства, а это может служить свидетельством в пользу того, что периферическое звено репродуктивной системы этих животных, по-видимому, не подвергается дисбалансирующему влиянию диабета родителей.
В заключение можно отметить, что у крыс — потомства больных диабетом матерей имеются нарушения в механизме контроля репродуктивной системы организма, но при этом остается возможным функционирование этой системы и воспроизводство потомства.
Выводы
- Концентрация ЛГ в сыворотке половозрелого потомства матерей, больных СТЗ-диабетом, снижена по сравнению с потомством здоровых родителей.
- У потомства самок, больных СТЗ-диабетом, наблюдали возрастное отставание от нормы в процессе формирования обратных связей в гипота- ламо-гипофизарно-гонадной системе.
У потомства матерей, больных СТЗ-диабетом, базальный уровень ЛГ и чувствительность гипофиза к ЛГ-РГ снижена по сравнению с интактными животными.
Список литературы
1. Полякова Г. П., Уголева С. В. // Вопр. охр. мат.— 1982.—№ 1,—С. 66—70.
2. Aerts L., Van Bree R., Feytans V. et al. // Biol. Neonate.— 1989,-Vol. 56, N 1,—P. 31—39.
3. Andrews W. IT., Geda S. R. // Endocrinology.— 1977.— Vol. 101, N 5.- P. 1517-1524.
4. Canovan J. P., Golds pink D. F. // Diabetes.— 1988.— Vol. 37, N 12,— P. 1671 — 1677.
5. Dianoud M. P., Harbert-Moley K-, London 1. et al. // Metabolism.— 1990.— Vol. 39, N 3.— P. 220—224.
6. Goldman H. R., Gorski D. L. // Endocrinology.— 1971,—Vol. 89,— P. 112—117.
7. Kitzmiller I. L., Choterty J. P., Younger M. D. et al. // Amer. J. Obstet. Gynec.— 1978.— Vol. 131, N 5.— P. 560— 578.
8. Koning J., Tissen A. M., Van Rees G. P. // J. Endocr.— 1989,—Vol. 120,—P. 439—447.
9. Robinson J., Canovan 1. P., El Haj Alicia et al. // Diabetes.— 1988.—Vol. 37, N 12,— P. 1665—1670.
10. Van Herlogh R. V., Verchevel M., Pampfer S. // Diabetologia.— 1989,— Vol. 32, N 7,— P. 480—485.
Об авторах
В Н БабичевГУ Эндокринологический научный центр РАМН
Россия
И В Шишкина
ГУ Эндокринологический научный центр РАМН
Россия
Рецензия
Для цитирования:
Бабичев В.Н., Шишкина И.В. Становление репродуктивной системы у потомства крыс, больных стрептозотоциновым диабетом. Проблемы Эндокринологии. 1994;40(2):60-62. https://doi.org/10.14341/probl11808
For citation:
Babichev V.N., Shishkina I.V. Development of the reproductive system in the progeny of rats with streptozotocin diabetes. Problems of Endocrinology. 1994;40(2):60-62. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl11808

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).