Preview

Проблемы Эндокринологии

Расширенный поиск

Факторы и состояния, влияющие на секрецию и функцию транскортина плазмы крови

https://doi.org/10.14341/probl13483

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Известно, что основная масса стероидных гормонов в крови находится в связанном с белками-переносчиками состоянии. Транскортин (кортикостероид-связывающий глобулин, SERPINA6), являясь основным транспортным белком стероидных гормонов, образуется главным образом в печени и регулирует системную биодоступность глюкокортикоидов и минералокортикоидов. В настоящей обзорной статье представлены данные литературы о влиянии различных факторов и состояний на ТК (синтез, секрецию и аффинность) и его роли в физиологических и патофизиологических процессах в организме. Снижение уровня ТК происходит в пожилом возрасте, при ожирении и метаболическом синдроме, на фоне таких заболеваний, как цирроз печени, сепсис, политравмы и обширные ожоги, а также при хирургических вмешательствах. Различные препараты могут оказывать влияние на концентрацию ТК в крови, так терапия эстрогенами (например, комбинированные оральные контрацептивы), вызывает значимое повышение ТК в крови, а назначение глюкокортикоидов, в свою очередь, приводит к снижению уровня ТК. Проведен в том числе анализ работ, направленных на изучение влияния ТК и изменение его уровня в крови при эндогенном гиперкортицизме.

Для цитирования:


Шевэ А., Бельцевич Д.Г., Гаджиева К.Ш., Багирова Х.В., Эбзеева А.К., Романова А.Н., Гаджимурадова М.М., Мельниченко Г.А. Факторы и состояния, влияющие на секрецию и функцию транскортина плазмы крови. Проблемы Эндокринологии. 2025;71(3):14-24. https://doi.org/10.14341/probl13483

For citation:


Chevais A., Beltsevich D.G., Gadzhieva K.Sh., Bagirova H.V., Ebzeeva A.K., Romanova A.N., Gadzhimuradova M.M., Melnichenko G.A. Factors and conditions affecting transcortin production and function in blood plasma. Problems of Endocrinology. 2025;71(3):14-24. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl13483

Транскортин (ТК, кортизол-связывающие глобулин, серпин А6) является основным транспортным белком глюкокортикостероидов (ГКС), в частности кортизола. Более 95% кортизола находится в связанном с белками-переносчиками состоянии, остальные 5% пребывают в свободном или активном состоянии и обладают способностью связываться со специфическими рецепторами в клетках. Основными белками — транспортерами кортизола являются ТК и альбумин. На долю ТК приходится до 80–90% гормона, он обладает высокой аффинностью, но низкой емкостью, в то время как альбумин имеет низкую аффинность и значительно большую буферную емкость и связывает до 10% кортизола [1].

ТК, который в основном вырабатывается гепатоцитами и в меньшей степени другими тканями, например желчным пузырем и почками, отвечает за своевременную и тканеспецифическую доставку кортизола к очагам воспаления, регулируя биодоступность кортизола для клеток-мишеней в нормальных и стрессовых условиях [2][3][4][5]. Более того, результаты исследования Gulfo и соавт. показали, что ТК синтезируется в надпочечниках. Отсутствие ТК приводит к снижению синтеза и секреции глюкокортикоидов в надпочечниках в ответ на стрессовые стимулы [6].

ТК был открыт Daughaday и соавт. и Bush и соавт. в 1956 году. Методом равновесного диализа было продемонстрировано присутствие в плазме крови специфических глобулинов, обладающих очень высоким сродством к кортикостероидам [7][8]. Впоследствии роль ТК в качестве переносчика была тщательно исследована. Накоплены данные о зависимости объема буферной системы и уровня циркулирующего кортизола. Настоящий обзор литературы представляет накопленные данные о различных факторах и состояниях, которые оказывают влияние на концентрацию и аффинность основного транспортного белка кортизола.

ПОЛ И ВОЗРАСТ

Доказан половой диморфизм уровней ТК с его более высокими показателями у женщин [9]. Впервые о гендерных различиях в уровнях ТК сообщил De Moor и соавт. в 1967 г., когда при исследовании уровней ТК в популяции было зафиксировано бимодальное распределение значений ТК у женщин и его отсутствие у мужчин. Половые различия в уровне ТК могут быть связаны с более высоким уровнем эстрогенов у женщин, так как эстрогены являются хорошо известными индукторами секреции ТК через увеличение транскрипции генов и/или изменение гликозилирования молекулы ТК [10].

Физиологические изменения, возникающие в печени у пожилых людей с увеличением возраста, заключаются в уменьшении объема печени, печеночного кровотока, ее регенеративной способности, что приводит к снижению синтетической функции печени. Одновременно с уменьшением концентрации в крови альбумина, факторов свертывания крови и др. фиксируется более низкое содержание ТК в крови у пожилых людей, что подтверждается данными кросс-секционного анализа, в котором выявлена отрицательная корреляция между уровнем ТК и возрастом [9][11]. В исследовании Schlechte и соавт. выявлено, что связывающая способность ТК отрицательно коррелировала с возрастом, при этом не выявлено связи ни связывающей способности, ни аффинности ТК с концентрацией сывороточного белка в крови [12].

ПОЛИМОРФИЗМ ГЕНА SERPINA6

Ген SERPINA6 включает в себя 5 экзонов и имеет длину в 19-kb и расположен на коротком плече 14 хромосомы (14q32.1). Промотор белка SERPINA6 содержит ТАТА-бокс и СААТ-бокс, а также другие элементы высококонсервативной последовательности ДНК, которые, по-видимому, обуславливают его специфическую печеночную экспрессию [13]. Ген экспрессируется в почках, легких, плаценте и поджелудочной железе [14][15].

В организме человека существуют полиморфизмы SERPINA6, которые снижают сродство ТК к кортизолу и влияют на его уровень в плазме [16][17][18][4]. Известно, что мыши с дефицитом ТК имеют более низкий уровень кортикостероидов и более высокий уровень свободных фракций и адренокортикотропного гормона (АКТГ), а также больший размер надпочечников [19][20]. В различных исследованиях выявлено до 20 полиморфизмов SERPINA6 человека, которые характеризовались дефектами в продукции или стероидосвязывающей активности ТК, и многие из них продемонстрировали воздействие на здоровье человека [21][4][22]. Наиболее распространенными симптомами у людей, имеющих мутации ТК, являются утомляемость, хроническая боль, гипотензия и, в некоторых случаях, избыточный вес или ожирение, хотя необходимо отметить, что не все люди с различными генетическими вариантами ТК имеют клинические признаки дефектов ТК [4]. В литературе описано четыре наследственных варианта ТК, ведущих к снижению сродства к кортизолу: Leuven L93H, Lyon D367N, G237V и Athens W371S. Наблюдается 3- и 4-кратное снижение аффинности кортизола при наличии ТК Leuven и Lyon соответственно [23][24]. Однако ни лабораторных, ни клинических изменений у пациентов с ТК Leuven не наблюдалось, а в свою очередь у пациентов с ТК Lyon D367N зафиксированы низкие показатели общего кортизола и ТК, при нормальном уровне АКТГ, свободного кортизола крови и мочи. При этом у пациентов клинически можно было наблюдать хроническую усталость, слабость, боль, депрессию, гипотонию и ожирение. Мутации SERPINA6 G237V и Athens W371S приводят к полной потере аффинности ТК к кортизолу [25][26]. В свою очередь Simard и соавт. идентифицировали несколько новых мутаций ТК человека, в различной степени влияющих на аффинность ТК к кортизолу (полностью отсутствовала — R260L, значительно снижена — H14Q, H89Y и умеренно снижена — I279F), способность связывать кортизол (H14R), синтез/секрецию (I48N и P246Q), чувствительность к протеолитическому расщеплению реактивного центра связывания (I179V и I279F) [22]. Несмотря на тот факт, что данные мутации встречаются редко, у пациентов с дефектным ТК может быть ошибочно диагностирован вторичный гипокортицизм [23–26].

В 2014 г. был создан консорциум под названием CORNET, основной задачей которого стало проведение метаанализа полногеномных ассоциаций (GWAMA). В 2023 г. Bankier и соавт. были представлены результаты анализа, основной целью которого было исследование генетических факторов, влияющих на вариабельность гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковой оси (ГГНО) у 12 597 представителей европеоидной расы. Полученные данные свидетельствуют о том, что менее 1% вариаций уровня кортизола в крови связано с генетическими вариациями 14-й хромосомы. В исследуемом регионе были обнаружены различия в последовательностях ДНК в идентичных участках хромосом, заключающиеся в замене одного нуклеотида. Были выявлены три однонуклеотидных полиморфизма (SNP), которые ассоциированы, во-первых, с изменениями в способности ТК связывать кортизол, во-вторых, с вариабельностью концентрации общего ТК в крови, и, наконец, с изменением иммунологической реактивности петли активного центра ТК [27][28].

В гене SERPINA1 можно обнаружить два SNP, достоверно влияющих на уровень утреннего кортизола [29]. Первый SNP (SNP1) ассоциирован с более высоким уровнем утреннего кортизола, а также с увеличением общего количества молекул ТК в кровотоке. Согласно гипотезе «свободного гормона», общий уровень гормонов в плазме должен регулироваться для поддержания уровня свободных гормонов. Так, при наличии SNP1, большее количество молекул ТК приводит к снижению доступности кортизола, т.е. меньшее количество гормона будет свободно проникать в ткани, поэтому по принципу обратной отрицательной связи это приведет к стимуляции гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковую ось (ГГНО). В результате чего компенсаторно происходит увеличение общего уровня кортизола. У субъектов с SNP1, несмотря на более высокий уровень общего кортизола, уровень свободного кортизола не отличался от уровня свободного кортизола, обнаруженного у субъектов с другими аллелями [27][28].

В свою очередь второй SNP (SNP2) в SERPINA1 ассоциирован с более низким утренним кортизолом, а также снижением сродства ТК. SNP2 представляют собой замену Leu115His, при котором снижается сродство ТК к кортизолу на 33%. Как и прежде, согласно гипотезе о «свободном гормоне», низкое сродство ТК к кортизолу будет приводить к уменьшению уровня связанного гормона, следовательно, больше гормона будет свободно проникать в ткани. Посредством обратной отрицательной связи будет происходить угнетение ГГНО, необходимое для снижения общего уровня кортизола до тех пор, пока уровень свободных форм не станут близкими к норме. Так, у субъектов с SNP2 общий уровень кортизола значительно ниже, чем у пациентов с ТК дикого типа, однако при измерении свободных фракций, те оставались неразличимы у двух групп исследуемых [27][28].

Третий SNP (SNP3) также встречается в гене SERPINA1, кодирующем альфа-1-антитрипсин, который может косвенно влиять на функцию ТК. Существует предположение, что SNP3 может изменить (возможно, увеличить) экспрессию альфа-1-антитрипсина. Это усилит подавление нейтрофильной эластазы, что приведет к увеличению связанного ТК кортизола и, соответственно, увеличению его буфера. Однако авторы отмечают, что эта ассоциация является самой слабой из трех и требует последующих дополнительных исследований [27][23][28].

БЕРЕМЕННОСТЬ

Во время второго и третьего триместров беременности уровни ТК в материнской плазме увеличиваются в 2–3 раза, что сопровождается увеличением концентрации общего и свободного кортизола [30]. Повышение уровня ТК в плазме во время беременности связывают с эстроген-стимулируемым увеличением синтеза ТК в печени, а также удлинением его периода полувыведения [31]. Данный эффект достигается за счет специфического гликозилирования — модификации карбоксилазной группы ТК. Причина физиологического падения ТК плазмы и связанный с этим рост свободного кортизола на 38-й неделе беременности окончательно не изучены. Это явление может быть связано с усилением иммунного ответа (увеличение популяции Th1-Th2 Т-лимфоцитов). Рост уровня свободного кортизола плазмы, отмечаемый на поздних сроках беременности, свидетельствует об уменьшении отрицательной обратной связи кортизола на факторы, стимулирующие ГГНО; считается, что имеет место прямая (положительная) корреляция плацентарного гонадотропин-релизинг гормона (ГнРГ) и кортизола [32–34].

Кроме того, на поздних сроках беременности наблюдается значительное (12-кратное) увеличение концентрации прогестерона, в результате локальной продукции прогестерона плацентраными трофобластами, уровень стрероидов в межворсинчатом пространстве сильно отличается от их уровня в периферической крови матери и плода и вместе с тем увеличивается прогестерон/кортизол-молярное отношение [34]. Принимая во внимание тот факт, что человеческий ТК практически равносильно связывает прогестерон и кортизол, такое существенное увеличение прогестерона приводит к вытеснению кортизола из реактивного центра связывания ТК и, соответственно, приводит к изменению локальной концентрации и биодоступности глюкокортикостероидов (ГКС) трансплацентраного барьера [35]. В данном случае ТК выступает в качестве регулятора прогестерона во время беременности, уровень ТК в плазме коррелируют с циркулирующим прогестероном, а также с количеством прогестерона в межворсинчатом пространстве в первые два триместра [36]. При изучении исходов беременности и состояния здоровья новорожденных с дефицитом ТК у матерей никаких явных эффектов не наблюдалось.

Интересно, что среди детей, рожденных от ТК-дефицитных матерей, преобладали девочки, несмотря на то, что среди разных популяций при рождении обычно наблюдается небольшое преобладание мальчиков. Подобное явление наблюдалось после перенесенного сильного стресса во время беременности. Хотя биологическая причина искажения вторичного соотношения полов остается неясной, предполагается, что дефицит ТК может способствовать неадекватному воздействию кортизола или прогестерона на плод мужского пола, что может привести к его гибели. Эти данные могут указывать на избирательное преимущество эмбрионов женского пола в отношении выживания, поскольку они могут быть менее чувствительны к выраженным патологическим гормональным значениям. При этом необходимо учитывать, что, по неизвестным причинам, популяционная смертность выше у плодов и новорожденных мужского пола, о чем свидетельствуют половые различия в числе мертворождений и неонатальной смертности [36][37].

Кроме того, отмечено влияние физиологических изменений концентраций кортизола и ТК на изменения настроения на поздних сроках беременности и в послеродовом периоде. Послеродовой период может стать для матери новым и тяжелым, а изменение образа жизни может вызвать определенные изменения в настроении. Перепады настроения во время беременности обычно проходят через 10 дней после родов. Вопрос о том, как сохраняется длительная стабильность настроения, несмотря на постоянные сложные условия, остается неубедительным. В различных группах населения было показано, что снижение уровня кортизола связано с некоторыми психопатологиями, включая атипичную депрессию. Недавний метаанализ не выявил связи между гиперкортизолизмом и тяжелой депрессией в дородовом периоде, однако доказано, что гипокортизолизм связан с хроническими депрессивными состояниями [38][39]. Таким образом, определенный уровень кортизола может быть необходим для выработки определенных механизмов совладания и предотвращения некоторых аффективных расстройств. Аналогичным образом, исходя из данных работы Yavuz и соавт., физиологически высокий уровень кортизола на поздних сроках беременности может иметь конечное влияние на настроение матери [40].

ТК ФЕТАЛЬНОГО И ПОСТНАТАЛЬНОГО ПЕРИОДА

Уровень ТК в амниотической жидкости человека на 24-й неделе беременности намного ниже, чем его уровень в сыворотке крови у небеременной женщины, и, по данным исследования Scott и соавт., составляет менее 300 нмоль/л (норма для взрослого человека — 367–810 нмоль/л) [41]. Фетальный ТК плазмы обычно начинает повышаться во втором триместре беременности, достигая максимума на поздних сроках (28–31 неделя беременности) с последующим постепенным снижением. Послеродовой, неонатальный уровень ТК остается низким в течение первой недели жизни, а затем постепенно поднимается, достигая нормы к 12-месячному возрасту [42].

ТК и ГКС в маточно-плацентарном и плодово-плацентарном кровообращении необходимы для органогенеза в период развития плода, в частности, для развития легких. Комплексы стероидов и ТК взаимодействуют со специфическими сайтами связывания на децидуальной оболочке эндометрия и синцитиотрофобластах плаценты. Плацентарный ТК состоит только из «трехантенных» форм олигосахаридов, характеризуется повышенным содержанием сиаловой кислоты, составляет 10% от ТК плазмы матери и имеет 60-кратно повышенную аффинность к клеточными мембранами синцитиотрофобласта, что указывает на роль для ТК в регуляции переноса стероидов и активности на границе между матерью и плодом [4][35][43][44][45].

Целью ретроспективного исследования Hodyl и соавт., включившим 351 новорожденных, было изучение взаимодействия прогестерона и кортизола с ТК во время развития плода. По результатам данной работы выявлено, что уникальным для плода образом очень высокие концентрации прогестерона (наблюдаемые на поздних сроках беременности) способны повышать концентрацию свободного кортизола за счет конкурентного связывания с ТК. Высокие концентрации циркулирующего фетального прогестерона конкурируют за связывание ТК с кортизолом, что приводит к 3-кратному увеличению фракции свободного кортизола в пуповинной крови. Более высокое соотношение свободного и связанного кортизола может изменять распределение кортизола в организме плода, способствуя выполнению кортизолом таких функций, как развитие центральной нервной системы и созревание легких [46].

ОЖИРЕНИЕ, МЕТАБОЛИЧЕСКИЙ СИНДРОМ И ЭФФЕКТЫ НА СНИЖЕНИЕ ВЕСА

В значительном количестве исследований показано, что секреция кортизола увеличивается при ожирении, однако симультанно с этим ускоряется его метаболизм, и, таким образом, у части больных уровень циркулирующего кортизола остается нормальным [47][48]. В работе Marin и соавт. отмечена положительная корреляция между уровнем экскреции кортизола с мочой, окружностью талии (ОТ) и индексом талия/бедра (ИТБ), увеличение которых свидетельствует о накоплении висцерального жира у женщин с ожирением [49]. Pasquali и соавт. подтвердили, что суточная скорость экскреции кортизола была в 1,6 раза выше у женщин с абдоминальным распределением жира по сравнению с женщинами с гиноидным типом ожирения и контрольной группой женщин с нормальным весом [50]. В свою очередь в исследовании Fernandez-Real и соавт. обнаружена отрицательная корреляция между концентрациями ТК в плазме и показателями ожирения, включающими ИМТ, ОТ, ИТБ [9]. Причины изменений в ГГНО и уровней ТК при ожирении изучены лишь частично.

В большинстве случаев ожирение сопровождается развитием метаболического синдрома, характеризующегося преобладанием абдоминального типа ожирения, наличием гиперхолестеринемии с увеличением липопротеидов низкой плотности, гипертриглицеридемией, нарушением углеводного обмена (нарушение толерантности к глюкозе (НТГ) или сахарным диабетом 2 типа (СД2), и артериальной гипертензией (АГ). При метаболическом синдроме снижение ТК имеет многофакторную природу. У лиц с ожирением и резистентностью к инсулину (ИР) были получены достаточно противоречивые результаты с точки зрения уровня ТК. Согласно данным некоторых работ, у пациентов с ИР было зафиксировано снижение уровня ТК в плазме. В многочисленных исследованиях Fernandez-real и соавт. выявлено, что уровень ТК в плазме отрицательно коррелирует с уровнем инсулина в ходе орального глюкозотолерантного теста (ОГТТ) и положительно коррелирует с показателями глюкозы натощак, значением AUC глюкозы и гликированного гемоглобина (HbA1c). Вследствие этого было предположено, что концентрация ТК является маркером секреции инсулина. С другой стороны, низкий уровень ТК также может способствовать ИР за счет воздействия свободного кортизола на таргетные клетки, в том числе мышечные, что приведет к усилению метаболического действия кортизола и, соответственно, уменьшению захвата и утилизации глюкозы [9][51]. Однако в работах Holt и соавт. и Lewis и соавт. корреляций между уровнем инсулина и ТК не выявлено [52][53]. Несмотря на противоречивые результаты in vivo, в ходе исследований in vitro после введения инсулина наблюдалось дозозависимое снижение уровней мРНК ТК и секреции белка из клеток HepG2 [54].

С другой стороны, ТК является членом семейства SERPIN и имеет сайт связывания с эластазой, экспрессируемой на поверхности нейтрофилов, увеличение количества которых наблюдается как при ожирении, так и при ИР [55][56]. Следовательно, вариабельность циркулирующего ТК может быть связана с расщеплением ТК активированными нейтрофилами [2].

ИР и ожирение также сопряжены с хроническим воспалением, что сопровождается повышением С-реактивного белка, провоспалительных цитокинов — фактора некроза опухоли α (ФНО-α), интерлейкина-6 (IL-6), адипонектина [57][58]. Активация выработки ГКС происходит как вследствие ИР, так и через провоспалительные цитокины — IL-6 и ФНО-α [59][60].

ХРОНИЧЕСКОЕ И ОСТРОЕ ВОСПАЛЕНИЕ

Существует тесное взаимодействие между иммунной и эндокринной системами, необходимое для поддержания и восстановления гомеостаза, в частности во время воспаления. При воздействии патогенов высвобождается большое количество цитокинов и других продуктов, которые, помимо своих собственных иммунных функций, могут также индуцировать нейроэндокринные реакции. После иммунного импульса цитокины (IL-1, IL-6), которые вырабатываются воспалительными клетками, стимулируют ГГНО, индуцируя высвобождение рилизинг-гормонов гипоталамуса, запуская цепную реакцию, что приводит к повышению концентрации ГКС. Кортизол, в свою очередь, регулирует уровень нескольких циркулирующих в крови провоспалительных цитокинов (IL-2, IL-3, IL-6), ФНО-α и интерферона-γ (ИФН-γ) и влияет на активность и жизнеспособность клеток иммунной системы, угнетает фагоцитоз антигенов и их последующую элиминацию макрофагами. Кортизол также оказывает угнетающее воздействие как на клеточный, так и на гуморальный иммунитет, что необходимо для поддержания баланса про- и противовоспалительных реакций [61]. Центр связывания IL-6 был идентифицирован в промоторе гена ТК [9]. Продолжительное подавление уровня ТК во время и после инфузии IL-6, наблюдаемое у здоровых испытуемых, наравне с подавляющим действием IL-6 на секрецию ТК клеточными линиями HepG2, могут служить доказательством того, что IL-6 является негативным регулятором ТК [62][63].

Хроническое воспаление коррелирует с измененной функцией ГГНО и формированием стойких или транзиторных нарушений в реализации биологических эффектов кортизола. Также оно часто связано с «относительным» гипокортицизмом, то есть с неадекватным или сниженным уровнем кортизола для данного воспалительного стимула. Этот феномен может быть связан с защитной адаптацией организма на стресс либо быть отражением нарушений на каком-либо уровне ГГНО [64][65]. Посттрансляционные изменения гликозилирования, обычно наблюдаемые в воспалительных гликопротеинах, генетические вариации или физиологическая модуляция активного центра связывания могут защитить ТК от расщепления, в частности нейтрофильной эластазой, особенно при хроническом воспалении [22][66–70]. Использование новой методологии твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА), в ходе которого проводится количественный анализ нативной, связанной/высокоаффинной формы ТК (вТК) и расщепленной/свободной/низкоаффинной формы ТК (нТК) в сыворотке человека, позволило оценить расщепление ТК in vivo. В работах Lewis и соавт. и Nenke и соавт. на животных моделях зафиксированы одинаковые периоды полувыведения вТК и нТК. Одновременно с этим при хроническом воспалении в сыворотке крови наблюдались более высокие уровни нТК, что может косвенно указывать на изменение в буферизации кортизола при данном состоянии [71][72].

Существует мнение, что характеристики и роль ТК могут различаться у пациентов с хроническим и острым воспалением. Острое воспаление характеризуется опосредованной цитокинами активацией ГГН оси и резким снижением синтеза ТК, что приводит к транзиторному значительному повышению свободного кортизола крови [62][63][73]. Резкое снижение уровня ТК в крови ассоциировано с увеличением IL-6 и ГКС, также выявлено, что IL-1 действует на посттрансляционный процессинг и/или секрецию ТК в клетках печени. ТК широко изучался в условиях острого воспаления, при котором его уровень резко снижается, например, при ожогах, абдоминальных и кардиологических вмешательствах, остром панкреатите и сепсисе/септическом шоке [74-78]. При шоковых состояниях наблюдается острое истощение вТК, что может препятствовать адекватной доставке кортизола в ткани [79].

CЕПСИС И ШОК

Общий уровень ТК значительно снижается при сепсисе и септическом шоке, в основе данного процесса лежит цитокин-опосредованное ингибирование печеночного синтеза белка и повышение уровня свободного кортизола [80]. В работе Nenke и соавт. представили результаты анализа корреляций общего ТК, вТК и нТК и тяжести течения, выживаемости у пациентов с сепсисом и септическим шоком. В ходе данного исследования было выявлено, что вТК значительно снижается при данных состояниях и его уровень пропорционален тяжести заболевания, так вТК снижается на 9% при сепсисе, на 51% у пациентов, переживших септический шок, и в 61% случаев у пациентов с летальным исходом по сравнению с группой контроля [79]. Падение концентрации вТК подтверждаются данными in vitro, свидетельствующими о том, что ТК расщепляется, превращая вТК в нТК при сепсисе. Также установлено, что доля циркулирующих нейтрофилов в общем количестве лейкоцитов коррелирует с увеличением доли нТК.

В более поздних исследованиях было подтверждено, что во время септического заболевания концентрация ТК продолжает прогрессивно падать, часто сопровождается с нарастающими полиорганными нарушениями [81]. После выздоровления уровень ТК в сыворотке возвращается к норме в течение нескольких дней [5]. У умерших пациентов после септического шока концентрация общего ТК в сыворотке крови была на треть ниже по сравнению с выжившими [82]. В последнем проспективном исследовании Meyer и соавт., в которое было включено 135 человек с септическим шоком, было показано, что у лиц с дефицитом ТК (<200 нмоль/л (референсный интервал 269–641 нмоль/л)), смертность в была в три раза выше по сравнению с теми, у кого этот уровень был выше 200 нмоль/л (отношение рисков равно 3,2) [5]. При многофакторном анализе низкая концентрация была одним из четырех независимых предикторов смертности; другими независимыми предикторами были оценка состояния здоровья по шкале Acute Physiology and Chronic Health Evaluation II (APACHE II) >25 баллов; шкала последовательной оценки органной недостаточности (SOFA) — оценка состояния печени, а также необходимость в заместительной почечной терапии [5]. Кроме того, отмечено, что дефицит ТК характерен только для заболеваний, связанных с сепсисом, и не наблюдается при критических состояниях, не связанных с ним [82].

При остром воспалении комбинированный эффект снижения кортизол-связывающей аффинности ТК, снижения синтеза ТК и повышенной секреции кортизола ожидаемо повысит уровень свободного кортизола, способствуя его благотворному плейотропному эффекту. Однако несмотря на обычно повышенный уровень свободного кортизола, только небольшая часть может достичь пораженных участков вследствие истощения вТК и потери резервуарной функции вТК. Более того, сохранение высокого уровня свободного кортизола в кровотоке, снижение уровня ТК и снижение метаболизма кортизола приводят к угнетению центрального контроля ГГН оси. Учитывая резкое падение вТК в группе летального исхода от септического шока, Nenke и соавт. предположили, что существует абсолютный уровень вТК, ниже которого кортизол не может эффективно выполнять свои противовоспалительные функции на клеточном уровне. Снижение вТК коррелирует с тяжестью заболевания в большей степени, чем общий или свободный кортизол, и, таким образом, авторами предложено использование вТК в качестве прогностического маркера при данных состояниях [79].

ЭНДОГЕННЫЙ ГИПЕРКОРТИЦИЗМ И НАДПОЧЕЧНИКОВАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ

Существует ограниченное количество исследований уровня ТК крови у пациентов с эндогенным гиперкортицизмом центрального или надпочечникого генеза. В работе Schlechte и др. авторы выполнили анализ концентрации связывающей способности и аффиности ТК у 20 пациентов с эндогенным гиперкортицизмом преимущественно гипофизарного происхождения (16 человек), у одного исследуемого диагностирована кортикостерома надпочечника, у оставшихся — АКТГ-эктопированный синдром. ТК-связывающая способность снижалась на 40% по сравнению со здоровыми субъектами, более того, пациенты с гиперкортицизмом имели значительно более низкую концентрацию ТК, чем пациенты, получающие ГКС, и группа контроля. При этом связывающая способность не различалась в зависимости от локализации очага избыточной выработки кортизола. Не было также выявлено корреляции между уровнем суточной экскреции свободного кортизола с мочой или продолжительностью заболевания и ТК-связывающей способностью [12]. В более ранних работах Doe и соавт. и Murray и соавт. сообщают, что у 7 исследуемых пациентов с макронодулярной двусторонней гиперплазией надпочечников (МДГН) уровень и связывающая способность ТК оставались в пределах нормы, так как около 50% кортизола было в несвязанном состоянии [83–85]. В наблюдении Osorio и соавт. и De Moor и соавт. получены противоположные результаты в виде повышения ТК-связывающей способности [86][87]. В настоящее время накопленных данных недостаточно для формулировки определенных выводов. Работы, посвященные изучению ТК у больных с надпочечниковой недостаточностью, не проводились.

ЛЕКАРСТВЕННЫЕ ВЕЩЕСТВА

Эстроген-содержащие препараты

У здоровых женщин, использующих комбинированные оральные контрацептивы (КОК), содержащие низкую дозу эстрогена, наблюдается более высокая концентрация кортизола сыворотки и ТК. На данный момент нет утвержденных референсных интервалов для общего кортизола сыворотки, свободного кортизола в слюне и ТК для данной группы пациентов. Авторами Panton и соавт. предложены референсные интервалы с учетом результатов анализа показателей между женщинами, получающими и не получающими терапию КОК, которые составляют: 284–994 нмоль/л и 159–569 нмоль/л, а для ТК: 847–3366 нмоль/л и 860–1940 нмоль/л соответственно. Клинически значимых различий в уровне свободного кортизола слюны не обнаружено, в связи с чем авторами предложено использовать данный показатель для диагностики гиперкортицизма у женщин, принимающих эстрогены, поскольку кортизол в слюне не зависит от уровня эстрогена [88].

Митотан

Митотан (1,1-дихлорфенилдихлорэтан) (о,п’-DDD) противоопухолевый препарат, который в настоящее время является безальтернативным и эффективным препаратом для лечения адренокортикального рака (АКР). Митотан оказывает специфическое прямое цитотоксическое действие на митохондрии коры надпочечников, нарушая стероидогенез. Данный препарат оказывает эстроген-подобное действие, увеличивая синтез ТК в печени. Результаты исследования Nader и соавт. подтвердили, что у пациентов, получающих лечение митотаном в дозе 4–6,5 г в день, резко повышается уровень ТК. Также было зафиксировано, что при воздействии митотана на клетки HepG2, сохранялась синтетическая способность клетки. В дозах, эквивалентных рекомендуемым терапевтическим концентрациям, о,п-ДДД значительно стимулировал секрецию ТК с увеличением экспрессии эндогенной мРНК гена SERPINA6 [89]. В недавнем исследовании также продемонстрировано, что пациенты с АКР и терапевтической концентрацией митотана в плазме крови имели более высокую концентрацию ТК в сыворотке крови по сравнению с пациентами с новообразованиями надпочечников или беременными женщинами (группа контроля), а также более высокий уровень кортизола в сыворотке крови [90].

Глюкокортикостероиды

ГКС регулируют уровень своего транспортного белка ТК посредством обратной отрицательной связи [3]. У людей уровень ТК в плазме снижается при длительном воздействии ГКС как эндогенного (при синдроме Кушинга (СК)) [19], так и экзогенного происхождения (при введении синтетических ГКС) [91].

По результатам работы Pugeat и соавт. преднизолон обладает сродством к ТК практически равном кортизолу. Однако данный белок имеет очень низкое сродство к большинству других синтетических ГКС, таких как дексаметазон [91]. У пациентов, получавших ГКС, связывающая способность была значительно ниже, чем в группе контроля, однако их аффинность была одинаковой. Более того, пациенты, получавшие лечение фармакологическими дозами ГКС, имели снижение связывающей способности на 24–30%, в то время как получавшие заместительную терапию ацетатом кортизона или преднизолоном имели незначительное отклонение данного показателя. У пациентов, получавших дексаметазон, связывающая способность существенно не различалась с группой контроля [12].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

В настоящий момент требуется накопление дальнейших данных о клинической значимости исследования уровня ТК в практике. Несмотря на достаточно значительное количество данных об основном транспортном белке кортикостероидов (обобщенные данные представлены в таблице 1), ТК, на сегодняшний день вопрос о его значении и влиянии на течение различных заболеваний, сопровождающихся СК, остается открытым. Многообещающим является проведение дополнительных исследований о роли ТК и других факторов, способных в том числе оказывать влияние на результаты гормонального обследования. В частности, перспективными представляются исследования концентрации и изменения свойств ТК у больных с функционально-автономной продукцией кортизола, а именно при МДГН, с целью изучения патогенеза патофизиологического ответа организма на длительную умеренную гиперкортизолемию, наблюдаемую при данной патологии. Возможно, что данный белок может оказывать непосредственное влияние на достижение и сохранение долгой ремиссии после перенесенного одностороннего оперативного вмешательства. Необходимы дополнительные исследования по изучению возможности использования ТК как предиктора развития рецидива гиперкортицизма при МДГН.

Таблица 1. Лекарственные препараты и состояния, которые могут оказывать влияние на уровни ТК

Условия

ТК

Механизм

Источники

Гормоны и медикаменты

Эстрогены (в том числе комбинированные оральные контрацептивы)

↑↑↑

(>50%)

Синтез и/или секреция

[88]

Митотан

Синтез и/или секреция

[89][90]

IL-1β

 

[62]

Глюкокортикоиды

-плод

-взрослые

Синтез и/или секреция

[12][91]

Инсулин

Синтез и/или секреция

[9][51][54]

ИФР-1

Синтез и/или секреция

[54]

IL-6

Синтез и/или секреция

[62][63][74]

Состояния

Возраст >65 лет

Синтез и/или секреция, выведение

[9][11][12]

Беременность

Синтез и/или секреция, выведение

[30][31]

Синдром Кушинга

- Надпочечного генеза

- Гипофизарного генеза

- АКТГ-эктопия

N

Синтез и/или секреция

[83–85]

[12]

[83][85]

Ожирение

Синтез и/или секреция

[9][49][50]

Дефицит массы тела

Синтез и/или секреция

[92][93]

Гестационный диабет

Синтез и/или секреция

[94]

Цирроз печени

Синтез и/или секреция

[83]

Острый панкреатит

Синтез и/или секреция

[77]

Сепсис, септический шок

↓↓↓

(>50%)

Синтез и/или секреция

[78][79]

Ожоговая травма

↓↓

Синтез и/или секреция

[74]

Множественная травма

↓↓

Синтез и/или секреция

[78]

Хирургическое вмешательство

↓↓

Синтез и/или секреция

[75][76]

Хотя мы добились прогресса в понимании того, как регулируются уровни плазменного и тканевого ТК во время воспаления, наши знания о его роли и воздействии ограничены. Это подчеркивает необходимость проведения дополнительных исследований. Остается открытым вопрос о роли ТК в процессе восстановления, равно как и время нормализации уровней ТК в плазме при различных состояниях.

Представляется интересным также дальнейшее исследование полиморфизмов SERPINA6 и изучение эффектов этих вариантов ТК как в нормальных физиологических состояниях, так и патологических. Выявление пациентов с дефицитом ТК является трудной диагностической проблемой, так как нарушения производства и/или функции ТК не всегда связаны с неспецифическими признаками надпочечниковой недостаточности.

ДОПОЛНИТЕЛЬНАЯ ИНФОРМАЦИЯ

Источники финансирования. Работа выполнена в рамках государственного задания «Разработка новых технологий диагностики и мониторинга опухолей коры надпочечников с использованием метаболомных и протеомных технологий». Регистрационный номер 123021300098-7.

Конфликт интересов. Конфликт интересов отсутствует.

Участие авторов. Все авторы одобрили финальную версию статьи перед публикацией, выразили согласие нести ответственность за все аспекты работы, подразумевающую надлежащее изучение и решение вопросов, связанных с точностью или добросовестностью любой части работы.

Список литературы

1. Bae YJ, Kratzsch J. Corticosteroid-binding globulin: Modulating mechanisms of bioavailability of cortisol and its clinical implications. Best Pract Res Clin Endocrinol Metab. 2015;29(5):761-772. doi: https://doi.org/10.1016/j.beem.2015.09.001

2. Chernykh A, Abrahams JL, Grant OC, et al. Position-specific N- and O-glycosylation of the reactive center loop impacts neutrophil elastase–mediated proteolysis of corticosteroid-binding globulin. J Biol Chem. 2024;300(1):105519. doi: https://doi.org/10.1016/j.jbc.2023.105519

3. Perogamvros I, Ray DW, Trainer PJ. Regulation of cortisol bioavailability - Effects on hormone measurement and action. Nat Rev Endocrinol. 2012. doi: https://doi.org/10.1038/nrendo.2012.134

4. Meyer EJ, Nenke MA, Rankin W, Lewis JG, Torpy DJ. Corticosteroid-Binding Globulin: A Review of Basic and Clinical Advances. Horm Metab Res. 2016. doi: https://doi.org/10.1055/s-0042-108071

5. Meyer EJ, Nenke MA, Davies ML, et al. Corticosteroid-Binding Globulin Deficiency Independently Predicts Mortality in Septic Shock. J Clin Endocrinol Metab. 2022. doi: https://doi.org/10.1210/clinem/dgac035

6. Gulfo J, Castel R, Ledda A, Romero M del M, Esteve M, Grasa M. Corticosteroid-Binding Globulin is expressed in the adrenal gland and its absence impairs corticosterone synthesis and secretion in a sex-dependent manner. Sci Rep. 2019;9(1):14018. doi: https://doi.org/10.1038/s41598-019-50355-1

7. Daughaday WH, Bremer R, Collins CH. Binding of corticosteroids by plasma proteins. I. Dialysis equilibrium and renal clearance studies 12. J Clin Invest. 1956;35(12):1428-1433. doi: https://doi.org/10.1172/JCI103400

8. Westphal U. Corticosteroid-Binding Globulin (CBG) of Man and Other Species. In: ; 1971. doi: https://doi.org/10.1007/978-3-642-46262-7_8

9. Fernandez-Real J-M, Pugeat M, Grasa M, et al. Serum Corticosteroid-Binding Globulin Concentration and Insulin Resistance Syndrome: A Population Study. J Clin Endocrinol Metab. 2002;87(10):4686-4690. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2001-011843

10. Hammond GL. Potential functions of plasma steroid-binding proteins. Trends Endocrinol Metab. 1995;6(9-10):298-304. doi: https://doi.org/10.1016/1043-2760(95)00162-X

11. Lewis JG, Borowski KK, Shand BI, George PM, Scott RS. Plasma sex hormone-binding globulin, corticosteroid-binding globulin, cortisol, and free cortisol levels in outpatients attending a lipid disorders clinic: A cross-sectional study of 1137 subjects. Horm Metab Res. 2010. doi: https://doi.org/10.1055/s-0029-1243260

12. Schlechte JA, Hamilton D. The effect of glucocorticoids on corticosteroid binding globulin. Clin Endocrinol (Oxf). 1987. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2265.1987.tb01145.x

13. Underhill DA, Hammond GL. Organization of the Human Corticosteroid Binding Globulin Gene and Analysis of Its 5′-Flanking Region. Mol Endocrinol. 1989;3(9):1448-1454. doi: https://doi.org/10.1210/mend-3-9-1448

14. Hammond GL. Molecular Properties of Corticosteroid Binding Globulin and the Sex-Steroid Binding Proteins*. Endocr Rev. 1990;11(1):65-79. doi: https://doi.org/10.1210/edrv-11-1-65

15. Hammond GL, Smith CL, Goping IS, et al. Primary structure of human corticosteroid binding globulin, deduced from hepatic and pulmonary cDNAs, exhibits homology with serine protease inhibitors. Proc Natl Acad Sci. 1987;84(15):5153-5157. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.84.15.5153

16. Torpy DJ, Bachmann AW, Grice JE, et al. Familial Corticosteroid-Binding Globulin Deficiency Due to a Novel Null Mutation: Association with Fatigue and Relative Hypotension. J Clin Endocrinol Metab. 2001;86(8):3692-3700. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.86.8.7724

17. Torpy DJ, Lundgren BA, Ho JT, Lewis JG, Scott HS, Mericq V. CBG Santiago: A Novel CBG Mutation. J Clin Endocrinol Metab. 2012;97(1):E151-E155. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2011-2022

18. Cizza G, Bernardi L, Smirne N, et al. Clinical Manifestations of Highly Prevalent Corticosteroid-Binding Globulin Mutations in a Village in Southern Italy. J Clin Endocrinol Metab. 2011;96(10):E1684-E1693. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2011-1321

19. Gulfo J, Ledda A, Serra E, Cabot C, Esteve M, Grasa M. Altered lipid partitioning and glucocorticoid availability in CBG‐deficient male mice with diet‐induced obesity. Obesity. 2016;24(8):1677-1686. doi: https://doi.org/10.1002/oby.21543

20. Petersen HH, Andreassen TK, Breiderhoff T, et al. Hyporesponsiveness to Glucocorticoids in Mice Genetically Deficient for the Corticosteroid Binding Globulin. Mol Cell Biol. 2006;26(19):7236-7245. doi: https://doi.org/10.1128/MCB.00400-06

21. Perogamvros I, Kayahara M, Trainer PJ, Ray DW. Serum regulates cortisol bioactivity by corticosteroid-binding globulin-dependent and independent mechanisms, as revealed by combined bioassay and physicochemical assay approaches. Clin Endocrinol (Oxf). 2011. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2265.2011.04003.x

22. Simard M, Hill LA, Lewis JG, Hammond GL. Naturally Occurring Mutations of Human Corticosteroid-Binding Globulin. J Clin Endocrinol Metab. 2015;100(1):E129-E139. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2014-3130

23. Van Baelen H, Power SG, Hammond GL. Decreased cortisol-binding affinity of transcortin Leuven is associated with an amino acid substitution at residue-93. Steroids. 1993 Jun;58(6):275-7. doi: 10.1016/0039-128x(93)90072-u. PMID: 8212073.

24. Emptoz-Bonneton A. Novel Human Corticosteroid-Binding Globulin Variant with Low Cortisol-Binding Affinity. J Clin Endocrinol Metab. 2000;85(1):361-367. doi: https://doi.org/10.1210/jc.85.1.361

25. Perogamvros I, Underhill C, Henley DE, et al. Novel Corticosteroid-Binding Globulin Variant That Lacks Steroid Binding Activity. J Clin Endocrinol Metab. 2010;95(10):E142-E150. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2010-0746

26. Hill LA, Vassiliadi DA, Simard M, et al. Two Different Corticosteroid-Binding Globulin Variants that Lack Cortisol-Binding Activity in a Greek Woman. J Clin Endocrinol Metab. 2012;97(11):4260-4267. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2012-2467

27. Bolton JL, Hayward C, Direk N, et al. Genome Wide Association Identifies Common Variants at the SERPINA6/SERPINA1 Locus Influencing Plasma Cortisol and Corticosteroid Binding Globulin. PLoS Genet. 2014. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1004474

28. Bankier S, Wang L, Crawford A, et al. Plasma cortisol-linked gene networks in hepatic and adipose tissues implicate corticosteroid-binding globulin in modulating tissue glucocorticoid action and cardiovascular risk. Front Endocrinol (Lausanne). 2023;14. doi: https://doi.org/10.3389/fendo.2023.1186252

29. Crawford AA, Bankier S, Altmaier E, et al. Variation in the SERPINA6/SERPINA1 locus alters morning plasma cortisol, hepatic corticosteroid binding globulin expression, gene expression in peripheral tissues, and risk of cardiovascular disease. J Hum Genet. 2021. doi: https://doi.org/10.1038/s10038-020-00895-6

30. Jung C, Ho JT, Torpy DJ, et al. A longitudinal study of plasma and urinary cortisol in pregnancy and postpartum. J Clin Endocrinol Metab. 2011. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2010-2395

31. Ho JT, Lewis JG, O’Loughlin P, et al. Reduced maternal corticosteroid-binding globulin and cortisol levels in pre-eclampsia and gamete recipient pregnancies. Clin Endocrinol (Oxf). 2007. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2265.2007.02826.x

32. Robinson BG, Emanuel RL, Frim DM, Majzoub JA. Glucocorticoid stimulates expression of corticotropin-releasing hormone gene in human placenta. Proc Natl Acad Sci. 1988;85(14):5244-5248. doi: https://doi.org/10.1073/pnas.85.14.5244

33. Oftedal A, Bekkhus M, Haugen G, et al. Changes in maternal cortisol, cortisol binding globulin and cortisone levels following diagnosis of fetal anomaly. Psychoneuroendocrinology. 2022. doi: https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2021.105574

34. Pofi R, Tomlinson JW. Glucocorticoids in pregnancy. Obstet Med. 2020;13(2):62-69. doi: https://doi.org/10.1177/1753495X19847832

35. Benassayag C, Souski I, Mignot TM, et al. Corticosteroid-binding globulin status at the fetomaternal interface during human term pregnancy. Biol Reprod. 2001. doi: https://doi.org/10.1095/biolreprod64.3.812

36. Lei JH, Yang X, Peng S, et al. Impact of corticosteroid-binding globulin deficiency on pregnancy and neonatal sex. J Clin Endocrinol Metab. 2015. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2014-4254

37. Clifton VL. Review: Sex and the Human Placenta: Mediating Differential Strategies of Fetal Growth and Survival. Placenta. 2010. doi: https://doi.org/10.1016/j.placenta.2009.11.010

38. Seth S, Lewis AJ, Galbally M. Perinatal maternal depression and cortisol function in pregnancy and the postpartum period: A systematic literature review. BMC Pregnancy Childbirth. 2016. doi: https://doi.org/10.1186/s12884-016-0915-y

39. Hemmingsen SD, Jensen NA, Larsen PV, Sjögren JM, Lichtenstein MB, Støving RK. Cortisol, Depression, and Anxiety Levels Before and After Short-Term Intensive Nutritional Stabilization in Patients With Severe Anorexia Nervosa. Front Psychiatry. 2022. doi: https://doi.org/10.3389/fpsyt.2022.939225

40. Yavuz A, Kücükbas GN, Hacioglu Y, Niyazoglu M, Alcalar N, Hatipoglu E. Third trimester physiological hypercortisolemia may protect from postpartum depression and stress. Eur Rev Med Pharmacol Sci. 2023. doi: https://doi.org/10.26355/eurrev_202304_31935

41. Brotherton J. Cortisol and transcortin in human seminal plasma and amniotic fluid as estimated by modern specific assays. Andrologia. 2009;22(3):197-204. doi: https://doi.org/10.1111/j.1439-0272.1990.tb01966.x

42. Scott SM, Wells L. Corticosteroid-binding globulin in preterm infants in an intensive care unit. Horm Res. 1995. doi: https://doi.org/10.1159/000184629

43. Mitchell E, Torpy D, Bagley C. Pregnancy-associated Corticosteroid-binding Globulin: High Resolution Separation of Glycan Isoforms. Horm Metab Res. 2004;36(06):357-359. doi: https://doi.org/10.1055/s-2004-814580

44. Strel’chyonok OA, Avvakumov G V., Akhrem AA. Pregnancy-associated molecular variants of human serum transcortin and thyroxine-binding globulin. Carbohydr Res. 1984;134(1):133-140. doi: https://doi.org/10.1016/0008-6215(84)85028-4

45. Avvakumov G V., Hammond GL. Glycosylation of Human Corticosteroid-Binding Globulin. Differential Processing and Significance of Carbohydrate Chains at Individual Sites. Biochemistry. 1994. doi: https://doi.org/10.1021/bi00185a012

46. Hodyl NA, Stark MJ, Meyer EJ, Lewis JG, Torpy DJ, Nenke MA. High binding site occupancy of corticosteroid-binding globulin by progesterone increases fetal free cortisol concentrations. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2020. doi: https://doi.org/10.1016/j.ejogrb.2020.05.034

47. Müssig K, Remer T, Maser-Gluth C. Brief review: Glucocorticoid excretion in obesity. J Steroid Biochem Mol Biol. 2010;121(3-5):589-593. doi: https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2010.01.008

48. Incollingo Rodriguez AC, Epel ES, White ML, Standen EC, Seckl JR, Tomiyama AJ. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis dysregulation and cortisol activity in obesity: A systematic review. Psychoneuroendocrinology. 2015;62:301-318. doi: https://doi.org/10.1016/j.psyneuen.2015.08.014

49. Mårin P, Darin N, Amemiya T, Andersson B, Jern S, Björntorp P. Cortisol secretion in relation to body fat distribution in obese premenopausal women. Metabolism. 1992;41(8):882-886. doi: https://doi.org/10.1016/0026-0495(92)90171-6

50. Pasquali R, Cantobelli S, Casimirri F, et al. The hypothalamic-pituitary-adrenal axis in obese women with different patterns of body fat distribution. J Clin Endocrinol Metab. 1993;77(2):341-346. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.77.2.8393881

51. Fernández-Real J-M, Grasa M, Casamitjana R, Pugeat M, Barret C, Ricart W. Plasma Total and Glycosylated Corticosteroid-Binding Globulin Levels Are Associated with Insulin Secretion. J Clin Endocrinol Metab. 1999;84(9):3192-3196. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.84.9.5946

52. Holt HB, Wild SH, Postle AD, et al. Cortisol clearance and associations with insulin sensitivity, body fat and fatty liver in middle-aged men. Diabetologia. 2007;50(5):1024-1032. doi: https://doi.org/10.1007/s00125-007-0629-9

53. Lewis JG, Shand BI, Elder PA, Scott RS. Plasma sex hormone‐binding globulin rather than corticosteroid‐binding globulin is a marker of insulin resistance in obese adult males. Diabetes, Obes Metab. 2004;6(4):259-263. doi: https://doi.org/10.1111/j.1462-8902.2004.00343.x

54. Crave JC, Lejeune H, Brébant C, Baret C, Pugeat M. Differential effects of insulin and insulin-like growth factor I on the production of plasma steroid-binding globulins by human hepatoblastoma-derived (Hep G2) cells. J Clin Endocrinol Metab. 1995;80(4):1283-1289. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.80.4.7536204

55. Fernández-Real JM, Broch M, Vendrell J, et al. Interleukin-6 gene polymorphism and insulin sensitivity. Diabetes. 2000. doi: https://doi.org/10.2337/diabetes.49.3.517

56. Targher G, Seidell J, Tonoli M, Muggeo M, De Sandre G, Cigolini M. The white blood cell count: its relationship to plasma insulin and other cardiovascular risk factors in healthy male individuals. J Intern Med. 1996;239(5):435-441. doi: https://doi.org/10.1046/j.1365-2796.1996.815000.x

57. Ellulu MS, Patimah I, Khaza H, Rahmat A, Abed Y. State of the art paper Obesity and inflammation: the linking mechanism and the complications. 2017

58. Artemniak-Wojtowicz D, Pyrżak B, Kucharska AM. Obesity and chronic inflammation crosslinking. Cent Eur J Immunol. 2020. doi: https://doi.org/10.5114/CEJI.2020.103418

59. Hill LA, Bodnar TS, Weinberg J, Hammond GL. Corticosteroid-binding globulin is a biomarker of inflammation onset and severity in female rats. J Endocrinol. 2016. doi: https://doi.org/10.1530/JOE-16-0047

60. Janssen JAMJL. New Insights into the Role of Insulin and Hypothalamic-Pituitary-Adrenal (HPA) Axis in the Metabolic Syndrome. Int J Mol Sci. 2022;23(15):8178. doi: https://doi.org/10.3390/ijms23158178

61. Troshina EA. The role of cytokines in the processes of adaptive integration of immune and neuroendocrine reactions of the human body. Probl Endokrinol (Mosk). 2021. doi: https://doi.org/10.14341/PROBL12744

62. Emptoz-Bonneton A, Crave JC, Lejeune H, Brébant C, Pugeat M. Corticosteroid-Binding Globulin Synthesis Regulation by Cytokines and Glucocorticoids in Human Hepatoblastoma-Derived (HepG2) Cells 1. J Clin Endocrinol Metab. 1997;82(11):3758-3762. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.82.11.4362

63. Bartalena L, Hammond GL, Farsetti A, Flink IL R.J. Interleukin-6 inhibits corticosteroid-binding globulin synthesis by human hepatoblastomaderived (HepG2) cells. Endocrinology. 1993; 133:291–296

64. Edwards C. Sixty Years after Hench—Corticosteroids and Chronic Inflammatory Disease. J Clin Endocrinol Metab. 2012;97(5):1443-1451. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2011-2879

65. Chrousos GP. The Hypothalamic–Pituitary–Adrenal Axis and Immune-Mediated Inflammation. N Engl J Med. 1995. doi: https://doi.org/10.1056/nejm199505183322008

66. Klieber MA, Underhill C, Hammond GL, Muller YA. Corticosteroid-binding Globulin, a Structural Basis for Steroid Transport and Proteinase-triggered Release. J Biol Chem. 2007;282(40):29594-29603. doi: https://doi.org/10.1074/jbc.M705014200

67. Gardill BR, Vogl MR, Lin HY, Hammond GL, Muller YA. Corticosteroid-Binding Globulin: Structure-Function Implications from Species Differences. PLoS One. 2012. doi: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0052759

68. Simard M, Hill LA, Underhill CM, et al. Pseudomonas Aeruginosa Elastase Disrupts the Cortisol-Binding Activity of Corticosteroid-Binding Globulin. Endocrinology. 2014;155(8):2900-2908. doi: https://doi.org/10.1210/en.2014-1055

69. Sumer-Bayraktar Z, Kolarich D, Campbell MP, Ali S, Packer NH, Thaysen-Andersen M. N-Glycans Modulate the Function of Human Corticosteroid-Binding Globulin. Mol Cell Proteomics. 2011;10(8):M111.009100. doi: https://doi.org/10.1074/mcp.M111.009100

70. McCarthy C, Saldova R, Wormald MR, Rudd PM, McElvaney NG, Reeves EP. The Role and Importance of Glycosylation of Acute Phase Proteins with Focus on Alpha-1 Antitrypsin in Acute and Chronic Inflammatory Conditions. J Proteome Res. 2014;13(7):3131-3143. doi: https://doi.org/10.1021/pr500146y

71. Lewis JG, Saunders K, Dyer A, Elder PA. The half-lives of intact and elastase cleaved human corticosteroid-binding globulin (CBG) are identical in the rabbit. J Steroid Biochem Mol Biol. 2015;149:53-57. doi: https://doi.org/10.1016/j.jsbmb.2015.01.020

72. Nenke MA, Holmes M, Rankin W, Lewis JG, Torpy DJ. Corticosteroid-binding globulin cleavage is paradoxically reduced in alpha-1 antitrypsin deficiency: Implications for cortisol homeostasis. Clin Chim Acta. 2016;452:27-31. doi: https://doi.org/10.1016/j.cca.2015.10.028

73. Tsigos C, Kyrou I, Chrousos GP, Papanicolaou DA. Prolonged Suppression of Corticosteroid-Binding Globulin by Recombinant Human Interleukin-6 in Man. J Clin Endocrinol Metab. 1998;83(9):3379-3379. doi: https://doi.org/10.1210/jcem.83.9.5100-5

74. Bernier J, Jobin N, Emptoz-Bonneton A, Pugeat MM, Garrel DR. Decreased corticosteroid-binding globulin in burn patients. Crit Care Med. 1998;26(3):452-460. doi: https://doi.org/10.1097/00003246-199803000-00014

75. Dimopoulou I, Tzanela M, Vassiliadi D, et al. Pituitary-adrenal responses following major abdominal surgery. Hormones. 2008. doi: https://doi.org/10.14310/horm.2002.1203

76. Gibbison B, Spiga F, Walker JJ, et al. Dynamic Pituitary-Adrenal Interactions in Response to Cardiac Surgery*. Crit Care Med. 2015;43(4):791-800. doi: https://doi.org/10.1097/CCM.0000000000000773

77. Muller CA, Belyaev O, Vogeser M, et al. Corticosteroid-binding globulin: A possible early predictor of infection in acute necrotizing pancreatitis. Scand J Gastroenterol. 2007;42(11):1354-1361. doi: https://doi.org/10.1080/00365520701416691

78. Beishuizen A, Thijs LG, Vermes I. Patterns of corticosteroid-binding globulin and the free cortisol index during septic shock and multitrauma. Intensive Care Med. 2001;27(10):1584-1591. doi: https://doi.org/10.1007/s001340101073

79. Nenke MA, Rankin W, Chapman MJ, et al. Depletion of high‐affinity corticosteroid‐binding globulin corresponds to illness severity in sepsis and septic shock; clinical implications. Clin Endocrinol (Oxf). 2015;82(6):801-807. doi: https://doi.org/10.1111/cen.12680

80. Ho JT, Al-Musalhi H, Chapman MJ, et al. Septic Shock and Sepsis: A Comparison of Total and Free Plasma Cortisol Levels. J Clin Endocrinol Metab. 2006;91(1):105-114. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2005-0265

81. Lee JH, Meyer EJ, Nenke MA, Falhammar H, Torpy DJ. Corticosteroid-binding globulin (CBG): spatiotemporal distribution of cortisol in sepsis. Trends Endocrinol Metab. 2023. doi: https://doi.org/10.1016/j.tem.2023.01.002

82. Meyer EJ, Nenke MA, Rankin W, et al. Total and high-affinity corticosteroid-binding globulin depletion in septic shock is associated with mortality. Clin Endocrinol (Oxf). 2019. doi: https://doi.org/10.1111/cen.13844

83. Doe R.P., Fernandez R., Seal U.S. Measurement of Corticosteroid-Binding Globulin in Man. The Journal of clinical endocrinology and metabolism. 1964;24:1029–1039. doi: https://doi.org/10.1210/jcem-24-10-1029

84. Doe RP, Zinneman HH, Flink EB, et al. Significance of the concentration of nonprotein-bound plasma cortisol in normal subjects, Cushing’s syndrome, pregnancy, and during estrogen therapy*†. J Clin Endocrinol Metab. 1960;20(11):1484-1492. doi: https://doi.org/10.1210/jcem-20-11-1484

85. Murray D. Cortisol binding to plasma proteins in man in health, stress and at death. The Journal of endocrinology. 1967;4(39):571–591. doi: https://doi.org/10.1677/joe.0.0390571

86. Osorio C., Schats D.L. Determination of the Binding Capacity of Corticosteroid-Binding Globulin by Paper Electrophoresis. The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 1964;10(24):1067–1071. doi: https://doi.org/10.1210/jcem-24-10-1067

87. De Moor P, Steeno O, Brosens I, Hendrikx A. Data on transcortin activity in human plasma as studied by gel filtration. J Clin Endocrinol Metab. 1966. doi: https://doi.org/10.1210/jcem-26-1-71

88. Panton KK, Mikkelsen G, Irgens WØ, et al. New reference intervals for cortisol, cortisol binding globulin and free cortisol index in women using ethinyl estradiol. Scand J Clin Lab Invest. 2019. doi: https://doi.org/10.1080/00365513.2019.1622031

89. Nader N, Raverot G, Emptoz-Bonneton A, et al. Mitotane has an estrogenic effect on sex hormone-binding globulin and corticosteroid-binding globulin in humans. J Clin Endocrinol Metab. 2006. doi: https://doi.org/10.1210/jc.2005-2157

90. Lech M, Ranasinghe R, Vincent RP, et al. The impact of mitotane therapy on serum-free proteins in patients with adrenocortical carcinoma. Endocr Connect. 2024.13(3), Article e230159. doi: https://doi.org/10.1530/EC-23-0159

91. Pugeat M.M., Dunn J.F., Nisula B.C. Transport of Steroid Hormones : Interaction of 70 Drugs. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 1980;1(53):69–75

92. Manco M, Fernández-Real JM, Valera-Mora ME, et al. Massive weight loss decreases corticosteroid-binding globulin levels and increases free cortisol in healthy obese patients. An adaptive phenomenon? Diabetes Care. 2007. doi: https://doi.org/10.2337/dc06-1353

93. Samuel AM, Kadival G V., Patel BD, Desai AG. Adrenocorticosteroids and corticosteroid binding globulins in protein calorie malnutrition. Am J Clin Nutr. 1976. doi: https://doi.org/10.1093/ajcn/29.8.889

94. Gewolb IH, Warshaw JB. Fetal and maternal corticosterone and corticosteroid binding globulin in the diabetic rat gestation. Pediatr Res. 1986. doi: https://doi.org/10.1203/00006450-198602000-00012


Об авторах

А. Шевэ
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Шевэ Анастасия к.м.н. 

Москва



Д. Г. Бельцевич
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Бельцевич Дмитрий Германович, д.м.н., профессор

Москва



К. Ш. Гаджиева
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Гаджиева Камила Шамильевна, ординатор

117036, Москва, ул. Дм. Ульянова, д. 11



Х. В. Багирова
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Багирова Ханум Вугаровна

Москва



А. К. Эбзеева
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Эбзеева Аминат Канаматовна 

Москва



А. Н. Романова
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Романова Алина Николаевна 

Москва



М. М. Гаджимурадова
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Гаджимурадова Мансурат Мурадовна, аспирант

Москва



Г. А. Мельниченко
Национальный медицинский исследовательский центр эндокринологии им. академика И.И. Дедова
Россия

Мельниченко Галина Афанасьевна, д.м.н., профессор, академик РАН

Москва



Дополнительные файлы

Рецензия

Для цитирования:


Шевэ А., Бельцевич Д.Г., Гаджиева К.Ш., Багирова Х.В., Эбзеева А.К., Романова А.Н., Гаджимурадова М.М., Мельниченко Г.А. Факторы и состояния, влияющие на секрецию и функцию транскортина плазмы крови. Проблемы Эндокринологии. 2025;71(3):14-24. https://doi.org/10.14341/probl13483

For citation:


Chevais A., Beltsevich D.G., Gadzhieva K.Sh., Bagirova H.V., Ebzeeva A.K., Romanova A.N., Gadzhimuradova M.M., Melnichenko G.A. Factors and conditions affecting transcortin production and function in blood plasma. Problems of Endocrinology. 2025;71(3):14-24. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl13483

Просмотров: 177


ISSN 0375-9660 (Print)
ISSN 2308-1430 (Online)