Перейти к:
Морфофункциональные изменения щитовидной железы у лабораторных животных при действии холода
https://doi.org/10.14341/probl199844440-42
Аннотация
Целью работы было изучение функциональной активности щитовидной железы (ЩЖ) при экстремальных охлаждениях лабораторных животных. Работу проводили на крысах-самцах Вистар. Животных контрольной группы содержали при 20—22°С, а опытной — при —10°С в течение 7 сут. В сыворотке крови определяли концентрацию тироксина (Tj) и трийодтиронина (Т3), в ЩЖ — содержание тиреоидных гормонов и тиреоглобулина. Проводили морфометрическое исследование ЩЖ. Показано, что в сыворотке крови крыс при экстремальных охлаждениях организма снизился уровень Т4 и увеличилось отношение концентраций Т3/Т4; в ткани ЩЖ крыс под влиянием холода повысилось содержание тиреоидных гормонов (преимущественно Tj) и тиреоглобулина. Под влиянием холода увеличилась масса ЩЖ крыс. В ткани ЩЖ вырос объем фолликулярного эпителия и уменьшился объем коллоида. Структурные преобразования фолликулов сопровождались увеличением объема сосудистого русла и количества дегранулированных тучных клеток в соединительнотканной строме ЩЖ. Сделан вывод о том, что под влиянием экстремально низких температур функциональная активность ЩЖ крыс повышается, несмотря на истощение приспособительных реакций организма.
Для цитирования:
Селятицкая В.Г., Одинцов С.В., Обухова Л.А., Пальчикова Н.А. Морфофункциональные изменения щитовидной железы у лабораторных животных при действии холода. Проблемы Эндокринологии. 1998;44(4):40-42. https://doi.org/10.14341/probl199844440-42
For citation:
Selyatitskaya V.G., Odintsov S.V., Obukhova L.A., Palchikova N.A. Morphofunctional changes in the thyroid gland in laboratory animals under the action of cold. Problems of Endocrinology. 1998;44(4):40-42. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl199844440-42
Тиреоидные гормоны принимают активное участие в формировании адаптивной реакции организма на действие различных факторов внешней среды. В исследованиях [13] показано, что гипофизарно-тиреоидная система вовлекается в реакцию стресса уже на ранних стадиях и, по мнению этого автора, играет важную роль в развитии общего адаптационного синдрома, описанного Г. Селье. При этом гормональная активность щитовидной железы (ЩЖ) в значительной мере определяется природой, характером и интенсивностью воздействия. Однако вопрос о закономерностях изменения функциональных резервов ЩЖ в зависимости от специфики действующего стресс- фактора остается нерешенным.
Показано, что кратковременная иммобилизация вызывает значительное увеличение секреции тиреоидных гормонов ЩЖ [12], но уже через сутки после начала иммобилизационного стресса по данным морфометрии у животных выявляется снижение синтетической активности тиреоцитов [3]. В условиях долговременного стресса ожидания у крыс различных линий, селективирован- ных по возбудимости нервной системы, снижается гормонсинтетическая активность ЩЖ и появляются признаки ее гипофункции с восстановлением морфофункционального состояния через 2 нед после окончания невротического воздействия [4, 5]. Морфологическое исследование ЩЖ кроликов с параллельным измерением уровня гормонов в крови в условиях длительного эмоционально-болевого стресса с нарастающей интенсивностью воздействий показало, что при стрессорном истощении приспособительных реакций организма наблюдается параллельное снижение секреторной активности ЩЖ [6].
Хорошо известна специфическая роль тиреоидных гормонов в реакциях термогенеза и процессах приспособления организма к длительному действию холода [14]. В настоящей работе оценивали функциональную активность ЩЖ при экстремальных охлаждениях лабораторных животных.
Материалы и методы
В экспериментах использовали 36 половозрелых крыс-самцов Вистар массой тела 180—230 г, которых перед началом эксперимента делили на 2 равные группы. Животных контрольной группы содержали в виварии в индивидуальных клетках при 20—22°С. Крысы получали стандартный рацион вивария из расчета 30 г на животное 1 раз в сутки в 14 ч при свободном доступе к воде. Животных опытной группы также содержали в индивидуальных клетках, но при — 10°С в течение 7 сут. Ежедневно клетки с подопытными животными на 2 ч (с 14 до 16 ч) переносили в виварий и давали в это время корм и воду. Количество корма увеличивали по сравнению с контролем в 1,5 раза. Затем воду убирали, а корм оставляли в клетках на все время охлаждения.
Через 7 сут после начала эксперимента крыс декапитировали. Правую долю ЩЖ, выделенную и очищенную от соединительной ткани, гомогенизировали в 0,01 М фосфатном буфере pH 7,4; центрифугировали 20 мин при 2000 g. В супернатантах измеряли содержание тиреоидных гормонов с использованием наборов РИА-Т4-СТ, РИА-Т3-СТ (СП "Белорис", Беларусь) и тиреоглобулина с помощью набора Рио-ТГ-1251 (ХОП ИБОХ, Беларусь). В сыворотке крови определяли концентрацию тиреоидных гормонов с применением тех же наборов.
Для морфометрического исследования ЩЖ использовали ее левую долю, которую фиксировали в жидкости Теллесницкого и заливали в гистопласт. Серийные срезы толщиной 7 мкм окрашивали гематоксилином и эозином. Часть срезов толщиной 5 мкм окрашивали азуром В и эозином. Методом точечного счета проводили морфометрию структурных компонентов ЩЖ с последующим вычислением их абсолютных объемов.
Результаты и их обсуждение
Потеря массы тела у крыс после 7-дневного охлаждения составила 9,7 ± 1,0 г на 100 г массы тела. Результаты согласуются с данными, полученными в экспериментах с аналогичным режимом охлаждения, где была отмечена частичная гибель животных [7], и свидетельствуют о том, что используемые воздействия, действительно, являются экстремальными для организма животных и приводят к истощению энергетических и пластических резервов.
В табл. 1 представлены данные содержании тиреоидных гормонов (тироксина — Т4 и трийодти- ронина — Т3) в сыворотке крови крыс после 7-дневного охлаждения. Видно, что содержание Т4 резко снижается, в связи с чем возрастает отношение концентрации Т3/Т4.
В табл. 2 представлены результаты измерения содержания тиреоидных гормонов и тиреоглобулина в ЩЖ крыс. В ткани ЩЖ на фоне экстремального охлаждения животных выявлена противоположная по сравнению с кровью ситуация: достоверно возрастает содержание Т3 и тиреоглобулина, уровень Т4 также имеет тенденцию к увеличению, что свидетельствует об усилении гор- монсинтетической активности в ЩЖ. Увеличение отношения концентраций Т3/Т4 указывает на преобладание образования в железе Т3. Это может быть обусловлено тем, что при охлаждении организма в крови повышается содержание тиреотропного гормона [16], а под его влиянием в ЩЖ усиливается внутритиреоидное дейодирование Т4 в Т3 [И].
Учитывая данные о содержании гормонов в ткани ЩЖ, снижение содержания Т4 в крови можно рассматривать как усиление его периферического дейодирования в Т3 — биологически более активный гормон, опосредующий метаболические эффекты тиреоидных гормонов на перифе-
Таблица 1
Содержание тиреоидных гормонов в сыворотке крови крыс кон трольной и опытной групп
Показатель |
Группа животных |
Р |
|
контрольная |
опытная |
||
Т3, НМОЛЬ/Л |
1,46 ± 0,10 |
1,41 ± 0,01 |
— |
Т4, нмоль/л |
46,4 ± 4,0 |
30,6 ± 2,5 |
< 0,01 |
(Т3 • 100)/Т4 |
3,30 ± 0,42 |
5,11 ± 0,41 |
< 0,01 |
Таблица 2
Содержание тиреоидных гормонов и тиреоглобулина в ткани ЩЖ крыс контрольной и опытной групп
Группа животных
контрольная |
опытная |
г |
|
Т3, пмоль/мг белка Т4, пмоль/мг белка (Т3 • 100)/Т4 Тиреоглобулин, нг/мг белка |
4,67 ± 0,69 72,9 ± 5,0 8,12 ± 1,04 36,7 ± 2,9 |
9,34 ± 1,37 91,8 ± 13,7 12,48 ± 1,24 55,4 ± 7,0 |
< 0,01 < 0,05 < 0,05 |
Таблица 3
Массовый индекс (в мкг/100 г массы тела) и морфометрические показатели (в мм3) ЩЖ крыс контрольной и опытной групп
Показатель
Группа животных
контрольная опытная
Массовый индекс
Объем капсулы и междольковых перегородок
Объем междольковых кровеносных сосудов
Объем фолликулярного эпителия
Объем просвета фолликулов
Объем коллоида в просвете фолликулов
Объем межфолликулярного эпителия
9,02 |
+ |
0,92 |
12,00 ± 0,59 |
< |
0,05 |
0,99 |
± |
0,10 |
1,20 ± 0,13 |
- |
|
0,12 |
± |
0,02 |
0,22 ± 0,02 |
< |
0,01 |
1,70 |
+ |
0,19 |
2,46 ± 0,21 |
< |
0,05 |
0,98 |
± |
0,10 |
0,77 ± 0,07 |
— |
|
0,75 |
± |
0,08 |
0,54 ± 0,04 |
< |
0,05 |
0,35 |
+ |
0,07 |
0,55 ± 0,13 |
— |
рии. Это подтверждается данными литературы о повышении кругооборота тиреоидных гормонов в организме при охлаждении [14].
В табл. 3 представлены результаты морфометрического исследования ЩЖ. Из табл. 3 видно, что достоверно увеличены масса железы и объем фолликулярного эпителия. Тироциты на срезах выглядели гипертрофированными и имели призматическую форму не только в мелких фолликулах центральной части железы, но и в крупных фолликулах ее периферических отделов. Такие изменения свидетельствуют об усилении активности внутриклеточных биосинтетических процессов [8].
Объем коллоида в железе достоверно снижен (см. табл. 3). При морфологическом исследовании видно, что в просвете крупных фолликулов коллоид содержал большее количество вакуолей, а мелкие фолликулы почти не имели коллоида в своем просвете. В результате величина индекса активации ЩЖ — отношение объемных фракций эпителия и коллоида [8] — у подопытных животных по сравнению с контрольными возросла в 2 раза (4,56 и 2,27 соответственно). Структурные преобразования фолликулов сопровождались увеличением объема сосудистого русла железы за счет расширения междольковых венул и капилляров, окружающих фолликулы. Все это указывает на усиление выведения синтезированных гормонов в кровоток.
В соединительнотканной строме ЩЖ увеличилось количество тучных клеток в состоянии дегрануляции. Из данных литературы известно, что тканевые базофилы наряду с парафолликулярными клетками обеспечивают гомеостаз биогенных аминов в ЩЖ. Тучные клетки периферических зон могут выступать в качестве переносчиков серотонина и катехоламинов в функционально более активные центральные зоны органа [2]. Серотонин и катехоламины в свою очередь стимулируют эндоцитоз коллоида фолликулярными клетками и выделение тиреоидных гормонов в кровь, а также регулируют функциональное состояние микроциркуляторного русла железы [15].
Таким образом, выявленные морфологические и функциональные изменения в ткани ЩЖ при экстремальном охлаждении крыс указывают на длительное усиление ее гормонсинтетической и секреторной активности, что отличается от данных, полученных на моделях с другими видами стрессовых воздействий [4, 6].
Из данных литературы известно, что при долговременной адаптации к действию умеренного холода повышенная функциональная активность ЩЖ поддерживается на протяжении всего времени охлаждения [10]. Поскольку холодовой фактор для млекопитающих не является новым, необычным стресс-агентом и с ним животные сталкиваются уже на ранних этапах онтогенеза [1], можно предположить, что существуют нейроэндокринные механизмы, обеспечивающие поддержание функциональных резервов ЩЖ при длительном стрессовом воздействии даже экстремально низких температур. Это согласуется с мнением К. В. Судакова [9] о специфичности видов стрессовых воздействий для деятельности различных функциональных систем организма.
Выводы
- В сыворотке крови крыс при экстремальных охлаждениях организма снижается уровень Т4 и повышается отношение концентраций Т3/Т4.
- В ткани ЩЖ крыс под влиянием холода повышается содержание тиреоидных гормонов (преимущественно Т3) и тиреоглобулина.
- Морфометрическое исследование ткани ЩЖ крыс, подвергавшихся экстремальным охлаждениям, свидетельствует об усилении активности гор- монсинтетических процессов и повышении выведения тиреоидных гормонов в кровоток.
- Под влиянием экстремально низких температур функциональная активность ЩЖ крыс повышается, несмотря на истощение приспособительных реакций организма.
Список литературы
1. Аршавский И. А. Физиологические механизмы и закономерности индивидуального развития. — М., 1982.
2. Виноградов С. Ю., Торишлова И. Ю. Морфофункциональные аспекты биоаминового обеспечения щитовидной железы. — Иваново, 1991.
3. Гаркави Л. X., Квакина Е. Б., Шейко Е. А. // Пробл. эндокринол. — 1987. — № 1. — С. 45—48.
4. Дмитриева Н. И., Лопатина Н. Г. // Там же. — 1991. — № 6. - С. 59-61.
5. Дмитриева Н. И., Идрисова Д. А., Вайдо А. И. и др. // Там же. - 1994. - № 1. - С. 50-52.
6. Красноперов Р. А., Глумова В. А., Трусов В. В. и др. // Там же. - 1992. - № 3. - С. 38-41.
7. Обухова Л. А., Селятицкая В. Г. // Проблемы саногенного и патогенного эффектов экологического воздействия на внутреннюю среду организма: Материалы 2-го международного симпозиума. — Чолпон-Ата, 1995. — Ч. 2. — С. 129-130.
8. Павлов А. В., Александров Ю. К., Доборджгенидзе Т. Р., Миро Т. Л. // Пробл. эндокринол. — 1997. — № 1. — С. 34-36.
9. Судаков К. В. // Бюл. экспер. биол. — 1997. — № 2. — С. 124-130.
10. Ткачев А. В., Беруль И. В. // Нейроэндокринные корреляции. — Владивосток, 1978. — С. 52—64.
11. Туракулов Я. X., Ташходжаева Т. П., Буриханов Р. Б. и др. // Пробл. эндокринол. — 1986. — № 5. — С. 72—76.
12. Туракулов Я. X., Буриханов Р. Б., Патхитдинов П. П., Мыслицкая А. И. // Там же. — 1993. — № 5. — С. 47—48.
13. Фурдуй Ф. И. Физиологические механизмы стресса и адаптации при остром действии стресс-факторов. — Кишинев, 1986.
14. Bozhko А. Р., Gorodetskaya I. V. // Neurosci. Behav. Physiol. — 1993- Vol. 25, N 4. - P. 311-318.
15. Tamir H., Hsiung S.-С., Liu K.-R. et al. // Endocrinology. —1994- Vol. 137. - P. 4475-4486.
16. Zoeller R. T., Kabeer N., Albers H. E. // Ibid. - 1990. - Vol. 127, N 6. - P. 2955-2962.
Об авторах
В. Г. СелятицкаяНИИ общей патологии и экологии человека СО РАМН; НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН
С. В. Одинцов
НИИ общей патологии и экологии человека СО РАМН; НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН
Россия
Л. А. Обухова
НИИ общей патологии и экологии человека СО РАМН; НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН
Россия
Н. А. Пальчикова
НИИ общей патологии и экологии человека СО РАМН; НИИ клинической и экспериментальной лимфологии СО РАМН
Россия
Рецензия
Для цитирования:
Селятицкая В.Г., Одинцов С.В., Обухова Л.А., Пальчикова Н.А. Морфофункциональные изменения щитовидной железы у лабораторных животных при действии холода. Проблемы Эндокринологии. 1998;44(4):40-42. https://doi.org/10.14341/probl199844440-42
For citation:
Selyatitskaya V.G., Odintsov S.V., Obukhova L.A., Palchikova N.A. Morphofunctional changes in the thyroid gland in laboratory animals under the action of cold. Problems of Endocrinology. 1998;44(4):40-42. (In Russ.) https://doi.org/10.14341/probl199844440-42

Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International License (CC BY-NC-ND 4.0).